◎ 袁 平 ,汪恩婷, 赵壮志, 沈 锐, 赵旭东, 李庭行,覃馨玉
(1.重庆市永川食品药品检验所,重庆 402160;2.重庆市计量质量检测研究院,重庆 402160)
样品50 g放入烧杯,分别加入乙酸锌溶液及亚铁氰化钾溶液各5 mL摇匀,沉淀静置1 h过滤,用快速滤液来分别进行鉴别。
用蘸有浓盐酸的玻璃棒靠近加热分解的样品,如果样品含有尿素,则会发出NH4Cl白烟。
滤液加浓硝酸 50滴,混匀放置 5~10 min,若有白色结晶产生就证明存在尿素。
滤液20~50 mL放入烧杯,用水20 mL溶解之后过滤,滤液放在电炉上加热,冷却之后,加入100 g /L 氢氧化钠溶液10滴,搅拌均匀,接着加入100 g /L的硫酸铜溶液1滴,若出现紫色,证明含有尿素[1]。
取5 mL滤液加100 g /L氢氧化钠溶液5 mL,用电炉加热沸腾1 min,如果出现氨味,则证明含有尿素。
试样采用蛋白质沉淀剂去蛋白,用活性炭脱色,二乙酰一肟与尿素在酸性条件下,经过催化进行缩合,在硫氨脲作用下,生成4,5-二甲基-2-1咪唑化合物,于525 nm的吸光度与尿素含量成正比,用分光光度计进行检验,外标法定量。
除特殊注明外,所有试剂均为分析纯,水为超纯水。冰乙酸;浓硫酸;磷酸:85%;乙酸锌;亚铁氰化钾;硫氨脲;硫酸高铁铵;二乙酰一肟;乙酸锌溶液(106 g/L),亚铁氰化钾溶液(106 g/L):酸性试剂;二乙酰一肟溶液(20 g/L);二乙酰一肟显色液;尿素标液(1 g/L); 尿素工作标液:分別为0、20、40、80、100、150、200、300 μg/mL的工作标液,现配现用。
分光光度计;振荡器;水浴锅。
2.4.1 样品前处理
根据尿素含量称取试样1~10 g(精确到0.0002 g)于100 mL烧杯之中,加入2.5 g活性炭,再加入乙酸锌溶液及亚铁氰化钾溶液各5 mL,用250 mL容量瓶定容至刻度,搅拌均匀,用快速滤纸过滤,收集滤液作为样品处理液[2]。
2.4.2 样品测定
吸取不同浓度尿素工作标液各10 mL,分别置于50 mL比色管中,加入10 mL二乙酰一肟显色液,于95 ℃水浴中加热20 min(小心摇动4~5次),用中速滤纸过滤,以尿素浓度为零的标准工作溶液作参比,于波长525 nm处测定吸光度值,绘制标准曲线。吸取样品处理液供试溶液10 mL于50 mL比色管中,操作步骤同上。
2.4.3 结果计算和表述
式中:X1为试样中尿素的含量,mg/kg;c为由试样吸光度按标准曲线求得尿素的量,mg;m1为取5 mL试样液相当试样的质量,g。
对二甲胺基苯甲醛与尿素可形成有颜色的复合物,该复合物420 nm处可用紫外分光光度进行定量比色,从而计算出尿素的含量[3]。
同2.3。
DMAB(对二甲胺基苯甲醛)显色剂,称取16 g DMAB于1000 mL甲醇中,再加入100 mol/L盐酸;参比溶液 2 mg尿素/10 mL。
3.4.1 样品前处理
同2.4.1。
3.4.2 样品测定
吸取不同浓度尿素标准工作溶液各5 mL,分别置于25 mL比色管中,加入5 mL DMAB显色剂。制备一空白对照液,吸取5 mL 溶液和5 mL磷酸缓冲液于25 mL比色管中。将所有比色管轻轻充分摇动并置于25 ℃水浴中放置10 min。用空白对照调节吸光度0点。用1 cm比色杯于420 nm处读取各溶液的吸光度值。用吸光度对尿素浓度做谱图,得出一条直线,准确吸取样品处理液供试溶液5 mL于20 mL比色管中,余下操作同上述步骤。每组样品均应带一参比标准(5 mL参比溶液和5 mL 溶液)及一个空白对照液,并于25 ℃水浴中放置100 min。接着,以空白对照液为对照,读取420 nm的吸光度[4]。
3.4.3 结果计算和表述
式中:X2为试样中尿素的含量,mg/kg;c为由试样吸光度按标准曲线求得尿素的量,mg;m2为取5 mL试样液相当试样的质量,g。
试样用1%乙酸提取,占顿醇荧光衍生化,液相色谱-荧光检测器测定,外标法定量。
甲醇,色谱纯;三氯甲烷,色谱纯;乙酸,色谱纯;盐酸;辛烷基磺酸钠;占顿醇(CAS号90-46-0,纯度大于99%);1%乙酸溶液;1%盐酸溶液;20 mmol/L辛烷基磺酸钠水溶液;占顿醇衍生剂;尿素标准品,纯度大于99%;标准贮备溶液,1 g/L的标准;标准工作溶液,现配现用。
高效液相色谱仪,配有荧光检测器;组织捣碎机;均质器;涡旋混合器;离心机。
样品约500 g,捣碎,混匀,分为2份,装入洁净容器,密封,并注明标记,于-18 ℃冷冻保存。
4.5.1 提取
称取试样5 g于50 mL具塞离心管之中,加入20 mL 1%乙酸溶液,均质2 min,以3000 r/m离心3 min,提取上清液,过滤。在盛有残渣的离心管中加入20 mL 1%乙酸溶液,均质2 min,再离心过滤。合并提取液用水定容50 mL,混匀,待衍生。
4.5.2 衍生化
准确吸取0.5 mL提取液和各级标准工作液(0. 2、2、20、200、l 000 mg/L),分 别加入2 mL进样瓶中,依次加入0.4 mL甲醇,50 μL 占顿醇衍生剂和50 μL 1%盐酸溶液,盖紧瓶盖,混匀,衍生5 min,过0.22滤膜后,供HPLC测定。
4.5.3 测定
4.5.3.1 色谱条件
色谱柱C18柱,长250 mm,内径4.6 mm,粒径5 mm;柱温:35 ℃;流动相:20 m辛烷基磺酸钠水溶液+乙腈;流速:1 mL/min;进样量:20 μL;检测波长:激发波长213 nm,发射波长308 nm。
4.5.3.2 定量测定
将衍生后的标准工作液按浓度由低到高依次进样,以浓度为横坐标,峰面积为纵坐标,绘制标准工作曲线,用标准工作曲线对样品进行定量。在上述色谱条件下,尿素衍生物的参考保留时间约为8.0 mm[5]。
4.5.3.3 空白实验
除不加试样外,按上述测定步骤进行。
4.5.4 结果计算和表述
用色谱数据处理机或按下列计算试样中尿素的残留量:
式中:X3为试样中尿素含量,mg/kg;A为样液中尿素衍生物的峰面积;Cs为标准工作液衍生物的浓度,μg/mL;V为样液最终定容体积,mL;As为标准工作液衍生物的峰面积;m4为称样量,g;20为稀释倍数。
样品在偏酸性的条件下,所含尿素被尿素酶分解为铵盐,用酸滴定,从而得出尿素的含量[5]。
尿素酶,0.25 g尿素于40~45 ℃在1 h之内完全分解,按照产品说明保存; 0.02 mol/L及0.1 mol/L盐酸;0.1 mol/L氢氧化钠。
称取样品0.5 g于高型烧杯之中,加入50 mL水,用塑料薄膜封口,超声提取20 min。将高型烧杯放在磁力搅拌器上,边搅拌边滴加0.1 mol/L盐酸(或者氢氧化钠溶液)中和至pH=4.0,加入0.2 g粉碎较细的尿素酶,立即用薄膜封口,置于50 ℃水浴中不时摇晃,30 min后取出冷却到室温,边搅拌边用0.1 mol/L盐酸滴定至pH=4.0,记录0.1 mol/L盐酸消耗体积V1,同时做空白试验,记录消耗的0.1 mol/L体积V0。
式中:60.06为尿素的相对分子质量;X4为试样中尿素含量,g/kg;V1为样品滴定消耗盐酸体积,mL;C2为盐酸标液的浓度,mol/L;V0为空白消耗盐酸体积,mL;m5——称样量,g。