羊传染性胸膜肺炎的诊断及治疗探讨

张义双，金振华，王丽坤，张国华，张备，兰世捷，苗艳，史同瑞

（1．黑河市红色边疆农场有限公司，黑龙江黑河 164300；2．黑龙江省农业科学院畜牧兽医分院，黑龙江齐齐哈尔 161005）

1 羊传染性胸膜肺炎的流行病学

羊传染性胸膜肺炎又称“烂肺病”，是一种由支原体所引起的高度接触性传染病，多见于饲养山羊的地区。羊传染性胸膜肺炎的病原有两种，一种是引起绵羊发病的绵羊肺炎支原体（Mycoplasma ovipneumoniae，Mo）；另一种为引起山羊传染性胸膜肺炎的病原体丝状支原体山羊亚种（Mycoplasma mycoidessubsp.capri，Mccp）。Mccp属柔膜细菌类，无细胞壁，但含有半乳聚糖；呈革兰氏阴性，采用姬姆萨氏法、卡斯坦奈达氏法或美蓝染色法着色良好；Mccp对培养基的要求苛刻，在低浓度（0.7%）琼脂培养基上菌落呈“煎蛋”状。自然条件下，Mccp只感染山羊，以3岁以下的山羊最易感。但也有研究在绵羊以及多种野生反刍动物体内分离出Mccp，表明Mccp也可对绵羊和野生动物产生威胁[1]。患病羊和带菌羊是羊传染性胸膜肺炎的主要传染源。羊传染性胸膜肺炎常呈地方性流行，传染性强，主要通过空气-飞沫途径经呼吸道传染，低温高湿环境、羊群饲养密度高等因素利于支原体传播。羊传染性胸膜肺炎主要见于冬季和早春枯草季节，此时羊群营养缺乏，机体对疾病的抵抗力较低，易发病，发病后的病死率也较高[2-4]；冬季流行期平均为15 d，夏季可维持2个月以上。

2 羊传染性胸膜肺炎的临床症状及病理变化

2.1 临床症状

根据患病羊病程发展及临床表现，可将羊传染性胸膜肺炎分为3种类型，包括最急性型、急性型以及慢性型[5-8]。最急性型表现为羊体温显著升高，可达42℃，食欲废绝，呼吸急促且异常痛苦，伴有剧烈咳嗽，鼻腔中流出浆液状带血鼻液；发病后期，患病羊倒地不起，全身肌肉震颤，结膜充血，神情呆滞，最终因窒息死亡，病程最短为1 d，一般为2～3 d。急性型患病羊发病初期高热、气喘，短暂出现咳嗽，流浆液状鼻涕；3～4 d后干咳加剧，鼻液转为脓状伴有血丝，患病羊不采食、精神沉郁，眼睑肿胀伴有脓性分泌物，按压胸腔疼痛感明显；发病后期，患病羊呼吸困难、头颈伸直，身体极度衰弱，病程一般为7～10 d。慢性病例多由耐过急性的病羊转变，临床症状相对较轻，体温可达39.5～40.0℃，被毛杂乱无光泽，间歇咳嗽，偶尔发生腹泻，皮肤苍白，渐进性消瘦，若接触急性病羊或在潮湿阴冷等不良因素作用下将加重病情。

2.2 病理变化

羊传染性胸膜肺炎病变主要表现在胸腔、肺部，具体表现为胸腔积聚大量淡黄色液体，肺部纹理变厚、变粗、间隙变大，变为酒红色；病变胸腔受炎症刺激，隔膜增厚并出现出血点，与体内器官粘连；气管、支气管肿大，心包积液，心肌松弛、变软。肝变区凸出于肺表，颜色由红至灰色不等，切面呈大理石样；急性病例还可见肝、脾肿大，胆囊肿胀，肾肿大和膜下小点溢血，逐渐出现各器官衰竭[9]。

3 羊传染性胸膜肺炎的诊断

目前，针对羊传染性胸膜肺炎最常用的诊断方法仍为采集胸腔渗出液及急性病例肺组织等的病料，进行染色镜检、分离培养及动物接种试验[10-11]。病料接种于血清琼脂培养基，37℃培养3～6 d，观察菌落形态；染色镜检可见革兰氏阴性、极细小的多形状菌体；若着色不佳须再进行染色，可采用姬姆萨氏法、瑞氏法等。还可取液体培养基分离培养，进行生长抑制试验明确病原[12-14]。山羊胸腔或气管内接种适量病料，监测3～7 d，观察症状和病变特性是否符合自然发病病例。

因巴氏杆菌病的病理变化及临床症状与此病相似，故临床上一般将Mccp重点与巴氏杆菌进行比较鉴别。通过病料染色镜检可见，Mccp的细小菌体非常丰富，巴氏杆菌则为卵圆状杆菌；分别在家兔以及小鼠身上接种病料，巴氏杆菌可导致动物死亡，Mccp不会导致动物死亡[14-17]。

诊断羊传染性胸膜肺炎所引起的肺、胸膜、胸腔以及相关结构病变的方式之一是超声检查。Tharwat等[18]利用超声波对患病山羊的超声图像变化进行了研究，结果表明，X线片可显示肺的实变区域内所有情况，如肺叶实变、胸膜腔积液、间质混浊等或致密的白色区域进而诊断。

赵文华等[19]基于Mccp的16S rRNA基因设计合成了特异性引物及探针,采用5'FAM-TAMRA3'标记物进行标记，建立的CCPP-16S实时荧光定量PCR方法可快速特异性检测山羊传染性胸膜肺炎。有研究以Mccp的92.1基因序列为靶序列，分别建立了Mccp可视化环介导恒温扩增（V-LAMP）和实时荧光环介导恒温扩增（RF-LAMP）检测方法，两种检测方法结果一致，且与实时定量PCR检测结果一致[20]。林裕胜等[21]建立了一种可同时检测Mo和Mccp的双重TaqMan探针荧光定量PCR检测方法，并对该方法的特异性、敏感性和重复性进行了验证，表明该方法可用于临床上Mo和Mccp准确、快速检测。

4 羊传染性胸膜肺炎的预防与治疗

4.1 预防

4.1.1 饲养管理

养殖户应及时清理羊舍内的粪便和腐烂堆积物，定期检查羊舍的通风系统，防止出现细菌滋生或病菌传播现象。羊舍内的饲养工具和设备应做好消毒工作，为羊群构建安全的生长环境[22]。山羊的日常饲养管理工作需进行不断加强，需要对养殖密度进行科学掌控，以免太过拥挤。还应注意防寒、保暖，以免发生应激反应引起其他症状。养殖户需要根据羊群的生长阶段和体征状态等灵活调整饲料配比方案，保证羊群能够摄取足够的营养物质，满足生长需要。可在日粮中适当加入维生素、中草药[23]及微量元素，提升山羊免疫力，降低发病率。此外，严格禁止饲喂发霉变质的饲料和被污染的水[24-25]。

4.1.2 免疫接种

免疫接种是防治本病的主要方法，可为羊群各生长阶段的稳定性打下可靠基础。接种疫苗时，防疫人员应根据羊的年龄控制疫苗用量，如年龄不超过半年的羊可通过皮下注射3 mL左右疫苗的方式进行防疫；年龄在半年以上的羊注射5 mL左右的疫苗。注射方式除了皮下注射外，也可采用肌肉注射方式[26-27]。注射过疫苗的羊群，最长可在1年内对羊传染性胸膜肺炎具有免疫效果，养殖户应把控好疫苗接种周期。

4.1.3 封锁、隔离、消毒

养殖过程中，应时刻留意山羊健康情况，发现异常须在第一时间隔离、诊断，对症治疗确诊的羊。须对疫区进行封锁，对患病羊接触的物品进行全面消毒。无害化处理病死羊和被污染的饲料，避免扩大疫病传播及污染面积。

4.2 治疗

4.2.1 西药治疗

胸腔注射使用10 mL 5%的恩诺沙星，或使用林可霉素、多西环素等药物均具有良好效果，每日1次，连续用药5～7 d[28]。肌肉注射10 mg/kg阿奇霉素，每日1次，连续注射5～6 d；或肌肉注射10 mg/kg泰乐菌素注射液，每日2次，连续注射6 d；磺胺制剂、头孢菌素、阿米卡星、卡那霉素、等药物也具有较好的治疗效果。此过程中，注意支原体易产生耐药性，药物治疗应交替使用，避免长期用药。

内服1～5 g氯化铵片、15 mL复方甘草合剂、0.3 g氨茶碱片可起到止咳平喘的效果[29]。静脉注射80 mL葡萄糖酸钙或7%氯化钙注射液、3 g维生素C可制止渗出。针对呼吸困难的病例，可肌肉注射0.03 g盐酸麻黄碱注射液。减轻炎症、缓解中毒可肌肉注射或静脉注射6 mg地塞米松，禁止妊娠羊注射。

4.2.2 中药治疗

黄芩与黄连各9 g，赤芍、甘草以及玄参各5 g，竹叶、丹皮、知母、桔梗、贝母以及栀子各6 g，添入清水煎煮，灌服或拌料喂服。若病羊鼻涕黄稠、喘气粗重、咳嗽加剧，可使用9 g板蓝根，6 g桔梗、6 g黄芪、6 g葶苈子，瓜蒌、川贝母以及甘草各5 g，添入清水煎煮后灌服或拌料喂服[30-31]。

5 结论

羊传染性胸膜肺炎是一种严重威胁羊群健康及养殖效益的传染病。为推动羊养殖产业的健康可持续发展，应掌握简单有效的羊传染性胸膜肺炎诊断、治疗方法，出现疑似病例时能够及时确诊、处理，在短时间内控制疫病传播情况，保证羊群健康生产发育，创造更高的经济收益。