畜肉中匹莫林的测定

勇艳华

（大连市检验检测认证技术服务中心，辽宁大连 116630）

匹莫林化学名称为2-亚氨基-5-苯基-4-恶唑烷酮，是一种中枢神经兴奋药物。通过提高中枢去甲肾上腺素的含量达到中枢兴奋的作用，其兴奋作用为咖啡因的5倍。虽然农业部176号公告《禁止在饲料和动物饮用水中使用的药物品种目录》中禁止匹莫林在饲料和动物饮用水中使用，但仍有饲养者在牲畜饲养过程中违法使用匹莫林，导致匹莫林在畜肉中残留，对人体健康产生危害。匹莫林的不良反应主要包括对肝功能有损害，从肝酶无症状可逆性升高至肝炎、黄疸、肝功能衰竭；可引发再生障碍性贫血；对中枢神经系统有损伤；刺激胃肠道，导致恶心、胃痛；长时间使用可抑制人体生长[1]。因此，建立一种准确快速检测畜肉中匹莫林残留的分析方法迫在眉睫，不仅可以打击违法使用匹莫林的行为，还可为保护消费者健康提供技术 支撑。

目前，报道的兴奋剂相关检测方法有胶体金试纸条法[2]、酶联免疫法[3-5]、化学发光免疫分析[6]、表面增强拉曼光谱法[7]、毛细管电泳法[8]、高效液相色谱法[9-11]、液相色谱串联质谱法[12-14]、气相色谱法[15]、气质法[16-17]和高分辨质谱法[18-19]，液相色谱串联质谱法是最常用的方法。文献中检测匹莫林的基质为尿液和饲料，但畜肉中匹莫林的检测暂无报道。本文采用乙腈提取，液相色谱串联质谱仪进行检测，建立了畜肉中匹莫林的测定方法。该方法前处理简单，精密度高，定量限低，能满足畜肉中匹莫林的测定。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

标准物质匹莫林（Pemoline），CAS登录号2152- 34-3，中国食品药品检定研究院生产的对照品；甲醇、乙腈、正己烷和甲酸，均为色谱纯；氯化钠，分析纯；实验用水为超纯水。

1.2 仪器与设备

高效液相色谱-串联质谱仪（1290/Agilent 6495， 美国Agilent公司）；均质机（IKA）；涡旋混合器 （IKA）；超声波清洗器（科导）；CR21N立式大容量高速离心机（日本Hiachi公司）；氮吹仪（安谱）赛多利斯全自动超纯水机（德国Sartorius公司）；Agilent poroshell 120 EC-C18色谱柱（50 mm×4.6 mm，2.7 μm，美国Agilent公司）。

1.3 实验方法

1.3.1 样品前处理

称取2.5 g（精确到0.01 g）混合均匀的样品于 50 mL离心管中，加入2 mL水，均质1 min，加入5 mL乙腈，涡旋混匀1 min，超声提取20 min，加入2 mL正己烷，加入1 g NaCl，涡旋混匀1 min，12 000 r/min离心5 min，移取2 mL上层提取液氮吹至近干，准确加入1 mL体积分数为10%乙腈溶解，涡旋混匀1 min，过0.22 μm滤膜，待液相色谱串联质谱仪检测。

1.3.2 标准溶液的配制

称取匹莫林对照品约10 mg（精确至0.1 mg）于小烧杯中，用甲醇溶解并转移至100 mL容量瓶中，定容至刻度，得到浓度为0.1 mg/mL的标准储备液，于-18 ℃冷冻保存。准确移取标准储备液1.0 mL于100 mL容量瓶中，甲醇定容至刻度，得到浓度为1.0 μg/mL的标准工作溶液，于4 ℃冷藏保存。准确移取10 μL、100 μL、500 μL、1 000 μL和2 000 μL标准工作溶液，分别置于10 mL容量瓶中，10%乙腈定容至刻度，得到浓度为1 μg/L、10 μg/L、50 μg/L、100 μg/L和200 μg/L匹莫林系列标准上机溶液。

1.3.3 添加回收实验

以不含匹莫林的空白畜肉为基质，添加适量浓度为1.0 μg/mL的标准工作溶液，涡旋混匀1 min，静置1 h，按1.3.1样品前处理方法进行实验。

1.3.4 仪器条件

（1）色谱条件。色谱柱：Agilent poroshell 120 ECC18（50 mm×4.6 mm，2.7 μm）；柱温：35 ℃；流动相：A为0.1%甲酸水（体积分数），B为0.1%甲酸乙腈（体积分数）；梯度洗脱程序：0～1.0 min， 90%A，1.0～4.0 min，90%～0%A；4.0～5.0 min， 0%A；5.1～7.0 min，90%A。流速：0.3 mL/min；进样体积：2 μL。

（2）质谱条件。电喷雾离子源（ESI）；扫描方式：正离子扫描；毛细管电压：4 000 V；监测方式：多反应监测（Multiple Reaction Monitoring，MRM）；离子源温度：200 ℃；去溶剂气温度：250 ℃；去溶剂气：氮气12 L/min；锥孔气：氮气11 L/min。其他参数详见表1。

表1 质谱检测参数

2 结果与分析

2.1 提取试剂的选择

匹莫林难溶于水、乙醚、氯仿、丙酮、苯和稀盐酸，溶于无水乙醇、丙二醇、甲醇和丙酮，易溶于碱性溶液。本实验考察甲醇和乙腈提取效果，由于畜肉中含有大量蛋白质和脂肪，用甲醇提取还需进一步用固相萃取小柱净化，前处理相对烦琐；但乙腈对蛋白有沉淀作用，用乙腈作为提取试剂，正己烷除脂肪，前处理步骤简单，除蛋白和脂肪效果较好，因此选择乙腈作为提取试剂。

2.2 仪器条件的建立

匹莫林的结构决定了可以在反相色谱上获得分离，故采用C18色谱柱进行分离，流动相乙腈-水-甲酸混合梯度洗脱。优化了质谱检测中碰撞能量、脱溶剂气流速和温度、锥孔气流速等参数，确定灵敏度最高、稳定性和重现性最好的选择性提取离子作为定量离子，次之的作为定性离子。

2.3 线性范围及检出限

匹莫林标准工作溶液在1～200 μg/L浓度与峰面积呈线性相关。匹莫林线性方程为Y=5 594.264 692X- 5 371.773 294，相关系数r=0.999 6。以猪肉、牛肉、羊肉为基质，定量向其中添加匹莫林标准溶液，按1.3.1样品前处理方法提取测定后，质谱峰信噪比≥10 时的添加量确定为本方法的定量限，定量限为2.0 μg/kg。

2.4 回收率和精密度

以不含匹莫林的猪肉、牛肉、羊肉为空白基质，将标准工作溶液按2.0 μg/kg、4.0 μg /kg和10.0 μg /kg 3个添加浓度加入空白基质中，考察平均回收率 及6次平行实验相对标准偏差（RSD），结果如表2所示。平均回收率为70.8%～85.3%，RSD≤5.4%。对猪、牛、羊肉按照本方法进行测试，未发现有本底 干扰。

表2 畜肉中匹莫林的回收率及精密度

3 结论

本文建立了检测畜肉中匹莫林残留的高效液相色谱-串联质谱方法，匹莫林浓度在1～200 μg/L线性良好，相关系数r=0.999 6，定量限为2.0 μg/kg，3个 加 标 水 平2.0 μg/kg、4.0 μg/kg、10.0 μg/kg，平均回收率为70.8%～85.3%，相对标准偏差为3.0%～5.4%，此方法快速、高效、准确且便于操作，可用于畜肉中匹莫林残留的日常检测。