林 震,郭洁梅,陈 鹏,肖 艳,张 鹏,张英杰,苏友新*
(1.福建中医药大学康复医学院,福建 福州 350122;2.福建卫生职业技术学院,福建 福州 350101;3.福建中医药大学中医学院,福建 福州 350122)
90%膝骨关节炎(knee osteoarthritis,KOA)患者伴有不同程度的滑膜炎症,且滑膜炎症贯穿KOA发病的始终,其炎症进展与KOA的病情发展呈正相关[1]。课题组前期从动物组织层面展开了研究,发现具有“痹痿同治”功效的壮骨健膝方可有效抑制兔KOA滑膜炎症[2-4]。滑膜巨噬细胞作为KOA滑膜炎中的主要参与者[5],可用于壮骨健膝方抗炎功效的研究。血清药理学是以机体含药血清代替药物干预细胞的实验方法,被广泛应用于中药复方的机制研究[6]。然而不同浓度的含药血清对细胞的影响是多样的[7],高浓度血清在起效的同时可能会对细胞产生毒性作用,低浓度血清可能由于药效物质浓度较低,达不到起效浓度,从而出现假阴性结果。因此在开展含药血清干预细胞的相关研究时,有必要对效应浓度进行摸索。故本研究通过CCK8法和ELISA法研究壮骨健膝方含药血清干预LPS诱导兔膝滑膜巨噬细胞炎症反应的效应浓度,为后续相关实验提供依据。
1.1 实验动物与细胞 3月龄普通级新西兰大白兔12只,体质量(2.0±0.25)kg,由上海市松江区松联实验动物场提供,许可证编号:SCXK(沪)2017-0008。委托福建中医药大学实验动物中心代购并饲养,许可证号:SYXK(闽)2014-0006。兔膝滑膜巨噬细胞由上海青旗生物技术发展有限公司提供,货号:BFN2101831。
1.2 实验药物 壮骨健膝方组成:骨碎补15 g,杜仲9 g,川牛膝12 g,生地黄15 g,独活6 g,鸡血藤15 g,秦艽9 g,徐长卿9 g,土鳖虫6 g。上述药材均购于福建中医药大学国医堂,并经福建中医药大学中西医结合研究院曾建伟副研究员鉴定,符合《中华人民共和国药典》要求。全方中药饮片置于600 mL水中浸泡20 min后,用武火煎煮至沸腾,然后转文火煎煮15 min,倒出药液。再次加水400 mL,煎煮30 min。将2次所煎得的药液混合,用旋转蒸发仪浓缩成含生药1 g/mL的壮骨健膝方药液备用。
1.3 实验试剂 DMEM培养基(美国HyClone公司,批号:AE29163339);胎牛血清(澳洲ExCell Bio公司,批号:11G362);乌拉坦(上海源叶生物科技有限公司,批号:Z28N10Y104506);脂多糖(中国Biosharp公司,货号:BS007);兔白介素-1β(IL-1β)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、基质金属蛋白酶-3(MMP-3)和MMP-13 ELISA试剂盒(江苏酶免实业有限公司,批号:2112023、2112015、2112030、2112033);CCK8试剂盒(武汉博士德生物工程有限公司,批号:16J29C60)。
1.4 实验仪器 ELX800型全自动酶标仪(美国Bio-Tek公司);IC-1000型Countstar细胞计数仪(上海睿钰生物科技有限公司);DMIL/DFC295型倒置相差显光学微镜(德国LEICA公司);TDZ4A-WS型低速离心机(湖南湘仪仪器有限公司);E163302型CO2培养箱(美国Thermo Scientific公司);RE-52AA型旋转蒸发仪(上海亚荣生化仪器厂)。
2.1 含药血清与空白血清制备 12只新西兰大白兔,随机分为壮骨健膝方组6只和空白组6只,根据前期研究并参照人与动物体质量折算的等效剂量[8],壮骨健膝方组按4.58 mL/(kg·d)予壮骨健膝方药液灌胃,空白组予等体积生理盐水灌胃,分上下午2次,持续3 d。于末次给药后1 h,应用20%乌拉坦(5 mL/kg)对兔进行腹腔注射麻醉,待角膜反射消失后行腹主动脉采血,全血静置于4℃冰箱4 h后,2 500 r/min离心30 min,分离血清,将同组血清混合,56℃水浴灭活30 min,用0.22μm过滤器过滤,分装即得。
2.2 不同浓度的血清完全培养液制备 取离心管,依次加入细胞培养液、壮骨健膝方含药血清、青霉素/链霉素双抗溶液,配制成5%、10%、15%、20%、25%壮骨健膝方含药血清完全培养液(以下简称含药完培),同法配制相同浓度空白血清完全培养液(以下简称空白完培)和10%胎牛血清完全培养液(以下简称普通完培),于-20℃冰箱保存备用。
2.3 统计学方法 采用SPSS 21.0统计软件进行统计分析,计量资料以(±s)表示,数据符合正态分布,多组间比较采用单因素方差分析,方差齐用LSD检验,方差不齐时采用Games-Howell检验,不符合正态分布,采用非参数检验。
2.4 CCK8法筛选含药血清干预浓度实验 取生长状况良好的兔膝滑膜巨噬细胞,按7×103个细胞/孔的密度接种于96孔板,随机分为对照组、空白血清组及含药血清组,分别采用普通完培、含药完培(5%、10%、15%、20%、25%)和空白完培(5%、10%、15%、20%、25%)培养24 h,弃去原培养液,加入10%CCK8溶液避光孵育2 h,使用酶标仪在450 nm处测定每孔的吸光度。实验结果显示,5%、10%、15%含药血清组细胞活性与同浓度下空白血清组比较,差异无统计学意义(P>0.05),故筛选出对细胞没有毒性的3个含药完培浓度(5%、10%、15%)作为后续实验的干预浓度,见表1。
表1 不同血清培养液干预后兔膝滑膜巨噬细胞活性比较(±s)
表1 不同血清培养液干预后兔膝滑膜巨噬细胞活性比较(±s)
注:与同浓度空白血清组比较,1)P<0.05。
组别对照组空白血清组含药血清组n6 66666 66666含药血清干预浓度/%-5 10 15 20 25 5 10 15 20 25细胞活性/%100.00±0.00 99.86±0.75 98.69±1.28 98.58±1.69 97.32±0.89 99.67±1.12 99.16±1.03 99.68±1.25 98.13±0.87 88.26±0.791)87.79±1.361)
2.5 筛选LPS诱导兔膝滑膜巨噬细胞致炎时间实验 兔膝滑膜巨噬细胞以1×105个细胞/孔的密度接种于24孔板,随机分为空白组和LPS组。空白组加入普通完培,LPS组加入含1.0μg/mL的LPS培养液,分别培养12、24、36、48 h后,收集各组细胞上清液,ELISA法检测IL-1β、TNF-α含量。结果表明各组别上清液中于各检测时间点均可见IL-1β、TNF-α的分泌。与空白组比较,LPS组各时间点的兔膝滑膜巨噬细胞上清液中IL-1β、TNF-α的含量均明显升高(P<0.05);LPS组内各时间点比较,刺激12 h后滑膜巨噬细胞上清液中IL-1β、TNF-α的含量最高(P<0.05),见表2。结合文献[9],以IL-1β、TNF-α含量较高的12 h作为后续实验LPS诱导兔膝滑膜巨噬细胞致炎的时间。
表2 空白组和LPS组不同时间干预后细胞上清液IL-1β、TNF-α含量比较(±s)
表2 空白组和LPS组不同时间干预后细胞上清液IL-1β、TNF-α含量比较(±s)
注:与相同时间的空白组比较,1)P<0.05;与12 h LPS组比较,2)P<0.05;与24 h LPS组比较,3)P<0.05;与36 h LPS组比较,4)P<0.05。
组别空白组LPS组干预时间12 h 24 h 36 h 48 h 12 h 24 h 36 h 48 h IL-1β/(ng/L)12.55±1.01 13.05±1.51 13.90±1.34 11.50±0.33 41.20±1.341)26.70±0.671)2)24.34±0.331)2)19.29±3.371)2)3)4)TNF-α/(pg/L)284.89±10.00 292.90±26.01 280.89±18.01 290.90±4.00 410.99±40.031)356.94±22.011)2)346.94±8.011)2)338.93±12.011)2)
2.6 ELISA法检测各组细胞上清中IL-1β、TNF-α、MMP-3、MMP-13含量 兔膝滑膜巨噬细胞以1×105个/孔接种于6孔板,随机分为空白组、模型组和5%、10%、15%含药血清组,空白组添加10%空白完培,模型组和5%、10%、15%含药血清组经1.0μg/mL的LPS培养液致炎12 h后,模型组添加10%空白完培,5%、10%、15%含药血清组分别添加5%、10%、15%含药完培,24 h后收集各组细胞上清液,ELISA法检测各组上清中IL-1β、TNF-α、MMP-3、MMP-13含量。结果显示,各组均可见IL-1β、TNF-α、MMP-3、MMP-13的分泌,与空白组比较,模型组IL-1β、TNF-α、MMP-3、MMP-13含量明显升高(P<0.05);与模型组比较,10%、15%含药血清组IL-1β、TNF-α、MMP-3、MMP-13含量均明显降低(P<0.05)。见表3。
表3 各组兔膝滑膜巨噬细胞上清液IL-1β、TNF-α、MMP-3及MMP-13含量比较(n=3,±s)
表3 各组兔膝滑膜巨噬细胞上清液IL-1β、TNF-α、MMP-3及MMP-13含量比较(n=3,±s)
注:与空白组比较,1)P<0.05;与模型组比较,2)P<0.05。
组别空白组模型组5%含药血清组10%含药血清组15%含药血清组IL-1β/(ng/L)51.56±2.56 96.43±2.731)93.13±0.87 77.25±1.962)74.43±1.592)TNF-α/(pg/mL)456.88±11.25 587.67±8.561)582.33±15.22 526.94±18.522)519.17±15.892)MMP-3/(μg/L)18.97±1.57 44.35±1.011)41.95±1.67 33.87±0.892)31.86±1.362)MMP-13/(μg/L)130.61±3.49 220.94±4.011)217.18±3.78 173.13±4.212)168.50±2.712)
KOA的发病虽以关节软骨退变为主,但其病理变化并不仅限于软骨局部[10-11]。越来越多的研究发现,滑膜炎症与KOA的发生和发展密切相关,滑膜炎症过程中各种因素反复刺激滑膜组织,促使炎症因子、基质金属蛋白酶等被大量释放,它们在加重滑膜炎症反应的同时,又反复刺激关节软骨,造成软骨的损害,进一步加剧KOA的进展[12-14]。
壮骨健膝方是苏友新教授根据KOA“痹痿同病”病机特点所创立的效验方,该方由骨碎补、杜仲、川牛膝等药物组成,具有补肝肾、强筋骨、祛风湿、止痹痛之功用,临床疗效显著[2-3]。本研究采用血清药理学的方法,通过LPS诱导兔膝滑膜巨噬细胞炎症反应,研究壮骨健膝方含药血清抑制滑膜炎症的效应浓度。结果发现5%、10%、15%壮骨健膝方含药血清对兔膝滑膜巨噬细胞无毒性作用。进一步研究发现,10%、15%壮骨健膝方含药血清可有效抑制LPS诱导的兔膝滑膜巨噬细胞炎性因子IL-1β和TNF-α以及基质金属蛋白酶MMP-3和MMP-13的生成,发挥抑制滑膜炎症的功效,为该方含药血清的效应浓度,且二者抗炎作用相当。而5%壮骨健膝方含药血清无显著的抗炎作用,推测可能是血清浓度较低,血清中的有效成分浓度尚未达到起效水平所致。
综上所述,本实验结果表明10%、15%壮骨健膝方兔含药血清为干预LPS诱导兔膝滑膜巨噬细胞炎症反应的效应浓度,由于二者抗炎作用相近,为节约血清成本,故建议后续研究采用10%含药血清更为适宜。