祁永华,吴 迪,张晏航,吴鹏程,张 宁
(1.黑龙江中医药大学 佳木斯学院,黑龙江 佳木斯 154007;2.东北林业大学,黑龙江 哈尔滨 150040)
皮肤光老化主要机制为中波紫外线(UVB)穿透皮肤表皮层,导致皮肤内活性氧(ROS)的过量产生[1],而ROS 可诱导基质金属蛋白酶(MMPs)活性增加,破坏细胞外基质,导致皱纹等皮肤老化症状的出现[ 7]。
楮实子化学成分主要包括生物碱、氨基酸、多糖等[2]。具有抗衰老、抗氧化等药理作用[3,4]。为了了解楮实子多糖的抗氧化活性,有必要确定合理可行的提取工艺。本研究以正交试验确定多糖的最佳提取工艺后,采用UVB 辐射人皮肤成纤维细胞复制光老化模型,研究楮实子多糖的抗氧化活性,为楮实子多糖在抗皮肤光老化方面提供实验支持。
人皮肤成纤维细胞(ESF-1,北京协和细胞资源中心);楮实子(批号:191003 购自佳木斯市百盛药材公司,经黑龙江中医药大学陈效忠教授鉴定为桑科植物构树Broussoneria papyrifera(L.)Vent.的干燥成熟果实);D-无水葡萄糖对照品(批号:110833-201205,中国食品药品检定研究院);DMEM 培养液、胰蛋白酶、PBS,Gibco 公司;胎牛血清、二甲基亚砜、MTT,Sigma 公司。
YT-SY96 型酶标仪(上海热电仪器有限公司);8-5K 型离心机(上海安亭科学仪器厂);FZ-A 型紫外线辐照计(北京师范大学光电仪器厂);IX-71-21PH 型Olympus 倒置显微镜(日本Olympus 公司);MS-500E 型半自动生化分析仪(四川美生公司)。
1.3.1 楮实子多糖的提取 楮实子干燥后粉碎,称取50g,加入750mL 蒸馏水,浸泡120min,置于水浴锅中升温至80℃,趁热过滤,滤液浓缩至50mL,待冷却后按照醇沉比1∶4 加入无水乙醇,放置过夜,离心,收集沉淀,用无水乙醇、丙酮、乙醚洗涤,即得楮实子粗多糖。
1.3.2 楮实子多糖含量测定 准确称取葡萄糖对照品0.15g,定容至100mL 容量瓶中,制成浓度为1.5mg·mL-1的储备液。取储备液适量,配制成0.02、0.04、0.06、0.08、0.10mg·mL-1的浓度梯度,并分别加入1mL 苯酚和5mL H2SO4后混匀,于沸水浴中加热10min,冷却至室温,测定吸光度(490nm),分别以浓度和吸光度为横、纵坐标绘制标准曲线,得回归方程为Y=6.550X+0.0423(r=0.9997),线性范围为0~0.10mg·mL-1。取楮实子多糖提取液0.5mL,用2mL水稀释,量取稀释液1mL,加入1mL 苯酚和5mL H2SO4后混匀,于沸水浴中加热10min,冷却至室温,测定吸光度并计算楮实子多糖含量。
1.3.3 单因素试验优化楮实子多糖提取工艺
(1)提取温度与楮实子多糖含量的关系 按照“1.3.1”项下的方法提取多糖、“1.3.2”项下的方法测定多糖含量,其他条件不变,比较在40、60、80、100℃的多糖含量,每个试验重复3 次。
(2)提取次数与楮实子多糖含量的关系 按照“1.3.1”项下的方法提取多糖、“1.3.2”项下的方法测定多糖含量,其他条件不变,比较提取1、2、3、4 次的多糖含量,提取次数两次或超过两次的提取液需合并滤液后再浓缩至50mL,每个试验重复3 次。
(3)料液比与楮实子多糖含量的关系 按照“1.3.1”项下的方法提取多糖、“1.3.2”项下的方法测定多糖含量,其他条件不变,比较料液比为1 号(1∶10)、2 号(1∶15)、3 号(1∶20)、4 号(1∶25)、5 号(1∶30)对楮实子多糖含量的影响,每个试验重复3 次。
1.3.4 楮实子多糖提取工艺优化的正交试验 根据单因素试验结果,试验以提取温度、提取次数和料液比例为考察因素,设置每个因素3 个水平,采用四因素三水平正交试验表(L9(34))设计正交试验,以多糖含量为指标筛选最佳工艺。见表1。
表1 L9(34)正交试验因素水平表Tab.1 Factors and levels of L9(34)orthogonal test
1.3.5 多糖提取工艺的验证试验 按照正交试验筛选的最佳试验条件,重复进行3 次试验,测定楮实子多糖含量,评价优化后工艺的合理性。
1.4.1 光老化模型建立 将处于对数生长期的ESF-1 用0.25%胰酶消化后接种于96 孔板,培养24h。待细胞全部贴壁后移除培养液,每孔加入100μL PBS 缓冲液,置于强度为70mJ·cm-2的中波紫外光下进行照射,用紫外线强度检测仪监测强度,空白组不予照射。各试验组移除PBS 缓冲液后,按试验分组加入相应DMEM 培养液或含药DMEM 培养液继续培养。
1.4.2 试验分组 将处于对数生长期的ESF-1 接种于96 孔板,分为空白组、模型组、维生素E 组(阳性组)、给药组,各组均设5 个复孔。空白组给予DMEM 培养48h,模型组、维生素E 组、给药组于70mJ·cm-2的UVB 照射后,分别给予DMEM 培养液、含维生素E 500μg·mL-1DMEM 培养液、含楮实子多糖500μg·mL-1DMEM 培养液继续培养。
1.4.3 指标测定 取各组细胞上清液,按照SOD、MDA、GSH-PX 试剂盒说明书进行操作,分别测定其指标变化,以考察楮实子多糖抗UVB 所致细胞氧化损伤。
1.4.4 数据处理 采用SPSS 21.0 统计软件进行分析。两组间比较用独立样本t 检验,P<0.05 说明差异有显著性意义。
2.1.1 提取温度的影响
图1 为提取温度与楮实子多糖含量的关系图。
图1 提取温度与楮实子多糖含量的关系Fig.1 Relationship between extraction temperature and content of Fructus Broussonetiae polysaccharides
由图1 可见,随着提取温度的升高,楮实子多糖含量亦随之增高,表明升高温度有利于楮实子多糖的提取,然而当温度升至80℃后含量曲线接近与横轴平行,表明随温度升高楮实子多糖含量无明显变化,因此,选择优化温度范围为70~90℃。
2.1.2 提取次数的影响
图2 为提取次数与楮实子多糖含量关系图。
图2 提取次数与楮实子多糖含量的关系Fig.2 Relationship between extraction times and content of Fructus Broussonetiae polysaccharides
由图2 可见,随提取次数增加,多糖含量先大幅度增加后小幅度下降,原因为提取次数增加,提取液的量增加,浓缩时间延长,使少量植物多糖降解。当提取次数为2 次时,楮实子多糖含量最高,因此,选择优化提取次数为1~3 次。
2.1.3 料液比的影响
图3 为料液比与楮实子多糖含量的关系图。
图3 料液比与楮实子多糖含量的关系Fig.3 Relationship between solid-liquid ratio and content of Fructus Broussonetiae polysaccharides
由图3 可见,料液比对多糖含量的影响呈先升高后小幅降低的趋势,虽然料液比例1∶30 比1∶25提取的含量有所降低,但楮实子多糖含量仍高于料液比1∶20,其中料液比为1∶25 时效果最好,因此,选择优化范围为1∶20~1∶30 设计正交试验。
表2 为正交试验设计及结果。
表2 正交试验设计及结果(n=3)Tab.2 Design and result of orthogonal experiment
由表2 可见,极差分析结果表明因素影响的次序为A>C>B,说明提取温度是影响多糖提取的主要影响因素,最优组合为A2B2C3。
方差分析结果见表3。
表3 方差分析结果Tab.3 Result of analysis of variance
温度对多糖提取效果有极显著影响,料液比对多糖提取效果有显著性影响,提取次数对多糖提取效果无显著影响。最终确定的最佳工艺为提取温度80℃,提取次数2 次,料液比1∶25。
按照最优组合平行制备的3 批样品多糖含量分别为:10.35%,10.69%,10.27%,RSD<3,表明工艺合理、可行,重复性好。
由图4 可见,与空白对照组比较,模型组SOD、GSH-PX 水平显著下降,MDA 水平显著升高(P<0.05),表明光老化模型复制成功。与模型组比较,维生素E组与楮实子多糖组SOD、GSH-PX 水平明显升高(P<0.05),MDA 水平明显降低(P<0.05),表明楮实子多糖有抗UVB 致皮肤成纤维细胞氧化损伤作用。
图4 楮实子多糖对皮肤成纤维细胞SOD、MDA、GSH-PX水平的影响Fig.4 Fructus Broussonetiae polysaccharides effect on level of SOD、MDA、GSH-PX
本研究通过单因素试验考察了楮实子多糖提取温度、提取次数及料液比对多糖含量的影响,确定了适宜范围,采用L9(34)正交试验法对多糖的提取方法进行优化,确定最佳提取温度为80℃,提取次数为2 次,料液比为1∶25,多糖平均含量为10.44%,提示优化后的多糖提取工艺合理可行。
人皮肤长期处于UVB 照射下,细胞内ROS 水平显著升高,引发脂质过氧化及DNA 损伤[6]。正常情况下,SOD、GSH-PX、维生素E 等抗氧化剂对ROS 有清除能力,过量的ROS 能使机体自身抗氧化防御系统失衡,细胞遭受氧化应激损伤,MDA 含量升高,最终导致皮肤光老化。本研究通过皮肤成纤维细胞复制光老化模型,对楮实子多糖的抗氧化活性进行了研究,初步证明了楮实子多糖的体外抗氧化活性,有用于抗老化中药化妆品领域的潜力。