胡 宝 徐子昕 郭金英 王春霞 郑素月
(河北工程大学园林与生态工程学院,河北邯郸056038)
香菇是我国主要的栽培食用菌种类之一,已有800多年的栽培历史[1]。近年来,我国食用菌产业正迎来“精准扶贫”“一带一路”等重大发展机遇,香菇产业成为许多地区农业经济的支柱产业。据中国食用菌协会统计,2019年我国香菇仍以1 151.9万t的产量居各类食用菌产量的首位。随着香菇产业的转型升级以及受菌棒出口利益的推动,我国出现了越来越多的香菇菌棒厂[2-3]。菌种培养是菌棒生产流程中关键环节。常规香菇菌种为固体菌种,存在生产成本高,容易感染杂菌,生长周期过长等缺陷[4-5]。液体菌种相比较固体菌种而言,具有制种简单、生产成本低、生长周期短、菌龄一致性好等优点,适用于工厂化生产菌棒[6]。试验主要研究不同培养基及其他培养条件对液体菌种培养的影响,以期筛选出适合规模生产应用的香菇液体菌种培养基配方,为香菇液体菌种生产提供依据。
香菇0912,河北工程大学园林与生态工程学院食用菌研究室保藏。
试验共设计11个摇瓶培养基配方(均为1 000 mL)。配方①:土豆200 g,KH2PO43 g,葡萄糖20 g,MgSO41.5 g,维生素B 0.01 g;配方②:土豆200 g,葡萄糖20 g,蛋白胨5 g,KH2PO42 g,MgSO41 g,维生素B 2片;配方③:土豆200 g,红糖20 g,葡萄 糖15 g,蛋 白 胨5 g,酵 母 膏3 g,KH2PO41 g,K2HPO41 g,MgSO41 g,维生素B 2片;配方④:土豆200 g,木屑50 g,葡萄糖20 g,蛋白胨6 g,KH2PO40.5 g,维生素B 2片;配方⑤:玉米粉20 g,麸皮20 g,葡萄糖10 g,酵母膏3 g,KH2PO41 g,MgSO41 g,维生素B 2片;配方⑥:玉米粉10 g,豆粉7 g,葡萄糖20 g,酵母浸粉1 g,蛋白胨1 g,KH2PO40.5 g,MgSO40.5 g;配方⑦:土豆200 g,红糖15 g,葡萄糖10 g,蛋白胨3 g,豆粉3 g,玉米粉3 g,KH2PO41 g,K2HPO41 g,MgSO40.8 g,维生素B 2片;配方⑧:土豆200 g,葡 萄 糖20 g,KH2PO43 g,蛋 白 胨3 g,K2HPO43 g,MgSO41 g,维生素B 2片,玉米粉1 g;配方⑨:土豆200 g,红糖10 g,葡萄糖10 g,蛋白胨3 g,KH2PO43 g,K2HPO43 g,豆粉3 g,玉米粉3 g,MgSO41 g,维生素B 2片;配方⑩:土豆200 g,酵母膏3 g,葡萄糖20 g,MgSO41 g,KH2PO41 g。配方⑪:合成培养基12 g,麸皮6 g,玉米粉4 g,白砂糖6 g,蛋白胨1 g,豆油4 mL。
1.3.1 菌种活化
将香菇菌种接种到PDA综合培养基平板上,置25℃恒温箱培养,长满平板后备用。
1.3.2 培养基配制及接种和培养
按上述配方将11种培养基配制好后,装入500 mL摇瓶培养基中,每瓶装液量200 mL,加入10~20粒直径5 mm玻璃珠,封口灭菌。121℃灭菌30 min,冷却后接种。接种时用6 mm的无菌打孔器在活化菌株的菌丝边缘打孔,每个液体摇瓶接种8个菌饼块,静置培养24 h,置恒温震荡培养箱中,25℃,170 r/min恒温震荡培养。
接种后第7天开始,观察测定摇瓶中菌液pH变化、菌丝锁状联合、生物量等指标。锁状联合计数方法是在10×40倍视野下计录每个视野下锁状联合数量,取其平均值。
测定11个香菇发酵配方的初始pH,从接种后的第7天开始,取样检测培养液pH,结果见图1所示。由图1可知,试验培养基配方初始pH有所不同,均6.0~7.0。在液体培养过程中,pH均呈下降趋势,但下降程度不同,说明香菇菌丝在试验培养基中生长和代谢能力有差异。根据香菇液体菌种的生物学特性,在培养过程中,初始pH为6.0~7.0,发酵终点pH3.0~4.0,其中配方⑤和配方⑦,pH变化适度。
图1 不同发酵时间菌液pH的变化
试验培养基初始pH、发酵终点pH及菌丝生物量比较见表1。由表1可见,试验培养基的初始pH、发酵终点pH和生物量均不同。根据菌丝生物量干重并结合菌液培养过程中pH的变化,菌液初始pH均在6.0~7.0,菌液发酵终点pH多数在3.0~4.0,只有配方⑨pH从6.5下降到5.6,但菌丝生物量最低,为2.635 mg/mL。配方⑤菌丝生物量最高,为9.140 mg/mL,其次为配方⑦,为7.695 mg/mL,配方③为7.560 mg/mL,配方④为6.645 mg/mL。依据菌丝生物量干重测定情况,且工厂化生产中要求菌丝量越高越好,配方①、配方⑥、配方⑧、配方⑨和配方⑩五个配方菌丝生物量均在5.0 mg/mL以下,因此并非理想的配方。
表1 试验培养基的p H和菌丝生物量比较
锁状联合是双核菌丝细胞分裂的一种特殊形式,也是结实能力的标志,锁状联合数量的多少直接反映菌丝体活力的强弱。试验配方培养的菌丝每个视野下锁状联合数量见表2(配方⑧和配方⑨未见明显菌丝球,未检测锁状联合)。由表2可知,试验培养基培养菌丝锁状联合数量不同,当摇瓶培养至第10天时,配方①和配方⑥菌丝锁状联合数量最多,平均每个视野中锁状联合数量均超过20个,培养至第11天时,锁状联合数量大部分呈下降趋势,其中,配方①和配方⑥下降最明显,配方②和配方④下降幅度相对较小。
表2 试验培养基培养菌丝球的锁状联合检测
培养基菌液及菌丝生长形态见表3、图2。通过肉眼观察菌液和菌丝形态,结合显微观察可初步判定菌丝是否退化或老化。
不同配方培养基的菌液颜色有明显差异,菌丝球也略有差异。试验多数配方培养基培养菌球呈毛刺球形,形似海胆;试验配方培养液中菌丝球量有一定差异,综合配方⑤、配方⑦,菌球大小比较均匀,量适中(表2、图2)。
香菇液体菌种生产中,随着菌丝的生长,生物量的增加,菌液pH、菌丝锁状联合数量、菌丝形态等都会发生相应的变化,并因培养基不同有所差异,在生产中如何选择适宜的配方及快速的检测发酵终点方法,以便在香菇菌丝最好的生理状态下转接栽培袋,是急需解决的难题。综合11个配方液体培养香菇菌种过程中pH、菌丝球形态、菌液颜色等变化,筛选出较优良的4个配方,分别为配方⑤、配方⑦、配方③和配方④,可在香菇液体菌种工厂化生产上进一步推广应用。试验结果表明,香菇液体培养基初始pH6.0~7.0为宜,发酵终点pH3.0~4.0为宜。
表3 试验培养基中香菇菌液及菌丝球的形态特征
图2 试验培养基中香菇菌丝球的形态
有关菌丝出现退化、老化的特征有待进一步研究。