睡菜环烯醚萜苷类成分及其α-葡萄糖苷酶抑制活性

2021-01-21 07:50陈静文何芷芸张志麒刘呈雄陈剑锋
关键词:类化合物糖苷酶烯烃

陈静文,林 芳,金 冠,何芷芸,张志麒,刘呈雄,陈剑锋,邹 坤,程 凡*

(1.三峡大学生物与制药学院天然产物研究与利用湖北省重点实验室(三峡大学),湖北 宜昌 443002;2.神农架国家公园管理局,湖北 神农架林区 442400)

睡菜(MenyanthestrifoliateL.)为龙胆科睡菜属多年生挺水植物,以全草入药,具“食之令人思睡”的功效,故又称“醉草、瞑菜”.睡菜在我国民间被认为药食两用的药用草本,有养心安神、健脾消食、清热利尿的作用.睡菜中主要的化学成分包括萜类(包括环烯醚萜类、三萜类等)、生物碱类、木脂素类、黄酮类等[1-5].睡菜为龙胆科单属种植物,其药用价值及化学成分研究具有重要价值.环烯醚萜苷类化合物在睡菜草本中含量丰富,报道相较其余成分类型较多,然而睡菜中具体的环烯醚萜苷类成分仍不明确,有待发现的价值.本课题对睡菜全草进行分离纯化,共得到6个化合物,分别鉴定为7-epiexaltoside(1)、6″,7″-dihydro-7-epiexaltoside(2)、獐牙菜苷(3)、断马钱子苷半缩醛内酯(4)、表断马钱子苷半缩醛内酯(5)、马钱子苷(6),均为环烯醚萜苷成分.其中,化合物2~5为首次从该植物中分离得到.糖尿病是一种危害性极大且目前无特效药的代谢性疾病,以持续高血糖为主要特征,并以其各类并发症的危害性严重影响现代人们的生活.何丽华等[6]的研究指出山茱萸中环烯醚萜苷成分降血糖作用类似于α-葡萄糖苷酶抑制剂阿卡波糖的作用.抑制α-葡萄糖苷酶活性是目前糖尿病降血糖研究的热点机制,为了解睡菜中环烯醚萜苷类成分对糖尿病的作用,本文首次对睡菜中分离得到的6个环烯醚萜苷成分进行α-葡萄糖苷酶活性的体外筛选,均表现出良好的α-葡萄糖苷酶活性抑制效果,其中化合物3的抑制效果最佳.

1 材料与方法

1.1 仪器

C18反相色谱硅胶(YMC公司);薄层色谱硅胶GF254(青岛海洋化工有限公司);正相色谱硅胶(烟台化工研究所);AB-8大孔吸附树脂(天津市光复精细化工研究所);Dionex Ultimate 3000型高效液相色谱仪(美国戴安公司);Sephadex LH-20(美国GE公司);Cosmosil MS-II RP-C18色谱柱(250×10 mm,10 μm半制备型;250×4.6 mm,5 μm分析型,日本Cosmosil公司);Waters 2489型高效液相色谱仪(美国Waters公司);AmozonSL+1200液相色谱-双重漏斗传输离子阱质谱仪(德国布鲁克·道尔顿公司);Bruker AV 400核磁共振波谱仪(瑞士布鲁克公司);低温冷冻干燥机(美国Labconco公司,型号:021125535E);BioTek ELx800全自动酶标仪(美国宝特公司);电子天平(上海民桥精密仪器有限公司,型号:FA2004).

1.2 材料与试剂

实验用睡菜采自湖北省神农架,采摘时间为2016年8月,经由三峡大学王玉兵博士(生物与制药学院)鉴定:该植物为龙胆科睡菜属睡菜(MenyanthestrifoliateL.),标本保存于三峡大学生物与制药学院.

α-葡萄糖苷酶(酵母)、阿卡波糖(美国Sigma-Aldrich公司)、4-硝基酚-α-D-吡喃葡糖苷(PNPG,美国Sigma-Aldrich公司).色谱纯甲醇(TEDIA公司)、色谱纯乙腈(TEDIA公司),其他试剂均为分析纯.

1.3 提取与分离

睡菜全草粉碎后置于48 ℃干燥箱中烘干2 h,干重2.3 kg,以95%乙醇浸泡,加热(78 ℃)回流提取2 h,收集滤液,此操作重复3次.滤液混合,经减压加热后,浓缩干燥得到252 g睡菜浸膏,加水混悬均匀,依次用石油醚(PE)、乙酸乙酯(EA)、正丁醇(BA)分级萃取,萃取液分别收集进行减压浓缩干燥.取BA部位(85 g),以蒸馏水对其进行混悬,以AB-8大孔吸附树脂柱色谱进行分离,依次以蒸馏水,30%、60%、90%乙醇水溶液进行洗脱,得到4个洗脱馏分(Fr.B1~Fr.B4).取Fr.B3馏分(18 g),通过C18反相硅胶柱色谱进行分离,以甲醇-水洗脱(梯度为甲醇∶水=1∶9~1∶0),经HPLC分析后,合并得到6个馏分(Fr.B3-1~Fr.B3-6).Fr.3-3馏分(2.0 g)经Sephadex LH-20葡聚糖凝胶柱色谱分离,甲醇-水洗脱(梯度为甲醇∶水=1∶1),再以半制备HPLC(乙腈∶水=26∶74)纯化,得到化合物1(12.4 mg),化合物2(14.7 mg),化合物4(10.7 mg),化合物6(22.4 mg).Fr.B3-5馏分(2.0 g)经Sephadex LH-20葡聚糖凝胶柱色谱分离,甲醇-水洗脱(梯度为甲醇∶水=1∶1),再以半制备HPLC(乙腈∶水=31∶69)纯化,得到化合5(18.8 mg).取Fr.B2馏分(29 g),以C18反相硅胶色谱柱进行分离,以甲醇-水洗脱(梯度为甲醇∶水=1∶9~1∶0),经HPLC分析,合并得到9个馏分(Fr.B2-1~Fr.B2-9).Fr.B2-4流分(4.3 g)经Sephadex LH-20葡聚糖凝胶柱色谱分离,甲醇-水洗脱(梯度为甲醇∶水=1∶1),再以半制备HPLC(乙腈∶水=19∶81)纯化,得到化合物3(18.2 mg).

1.4 α-葡萄糖苷酶活性筛选实验

根据文献[7]的方法,以PNPG为底物,阿卡波糖为阳性对照,在96微孔板上进行活性检测.过程为:1)空板中加 PBS缓冲液(pH=6.8)60 μL;2)加入α-葡萄糖苷酶溶液(浓度为0.8 U·mL-1)20 μL ;3)加入样品溶液(适当浓度)60 μL,37 ℃恒温环境孵育15 min;4)加入 PNPG(浓度为5 mmoL·L-1)20 μL,置于37 ℃恒温环境下反应15 min;5)加入Na2CO3溶液(浓度为0.2 moL·L-1)80 μL终止反应;6)测定吸光度(A)值(波长选定405 nm).同时设样品组(待测化合物+PBS+PNPG+酶),样品空白组(待测化合物+PBS+酶),酶活性组(PBS+PNPG+酶),酶空白组(PBS+酶).抑制率的计算公式:

α-葡萄糖苷酶抑制率(%)=1-[(A样品组-A样品空白组)·(A酶活性组-A酶空白组)-1]×100%.

每组各重复3次,用软件Origin 9.1计算IC50值.

2 结果与分析

2.1 结构鉴定

化合物1:白色无定形粉末.ESI-MSm/z:563 [M+Na]+,分子式C26H36O12.Molish反应呈阳性,推测化合物为苷类化合物;香草醛显色剂加热,化合物显红色.1H-NMR(400 MHz,DMSO-d6)谱与文献[8]比对,可以将化合物分为3个部分,苷元部分有3个烯烃质子信号δH 7.62(1H,d,J=2.4 Hz)、δH 5.48(1H,m)、δH 5.38~5.28(2H,m);取代基部分看到2个烯烃质子信号δH 6.80(1H,td,J=7.4,1.6 Hz)、δH 5.45(1H,m);以及糖的质子信号.13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6)谱中苷元部分有1个羰基碳信号δC(165.2);4个烯烃碳信号δC(153.3)、δC(103.1)、δC(132.0)、δC(120.9).取代基部分1个羰基碳信号δC(162.9);4个烯烃碳信号δC(126.6)、δC(144.3)、δC(134.8)、δC(125.8);2个甲基碳信号δC(12.1)、δC(16.2);糖部分1个端基碳信号δC(98.6).推测化合物为母核为裂环环烯醚萜,带香叶基的苷类化合物,与文献[9]报道对比,数据基本一致,故鉴定化合物1为7-epiexaltoside.其具体的1H-NMR和13C-NMR数据如下,1H-NMR(400 MHz,CD3OD)δH:7.66(1H,d,J=2.5 Hz,H-3),6.85(1H,m,H-3″),6.62(1H,t,J=1.9 Hz,H-7),5.55(1H,s,H-1),5.53(1H,m,H-8),5.41(1H,m,H-7″),5.38-5.29(2H,m,H-10),4.73(1H,J=7.7 Hz,H-1′),4.06(2H,d,J=6.6 Hz,H-8″),3.47~3.35(1H,m,H-5),2.76(1H,m,H-9),2.38(2H,m,H-4″),2.17(2H,t,J=7.4 Hz,H-5″),1.86~1.98(2H,m,H-6),1.86(3H,s,H-9″),1.71(3H,s,H-10″).13C-NMR(100 MHz,CD3OD)δC:98.9(C-1),155.3(C-3),104.4(C-4),23.2(C-5),29.3(C-6),93.8(C-7),133.1(C-8),43.5(C-9),121.2(C-10),167.2(C-11),101.1(C-1′),74.8(C-2′),78.3(C-3′),71.4(C-4′),78.4(C-5′),62.6(C-6′),166.2(C-1″),128.4(C-2″),145.5(C-3″),28.2(C-4″),38.9(C-5″),137.4(C-6″),125.8(C-7″),59.4(C-8″),12.3(C-9″),16.2(C-10″).

化合物2:白色无定形粉末.ESI-MSm/z:563 [M+Na]+,分子式C26H36O12.Molish反应呈阳性,推测化合物为苷类化合物;香草醛显色剂加热,化合物显红色.1H-NMR(400 MHz,DMSO-d6)谱与文献[9]比对,可以将化合物分为3个部分,发现苷元部分有3个烯烃质子信号δH 7.62(1H,d,J=2.4 Hz)、δH 5.48(1H,m)、δH 5.27~5.39(2H,m);取代基部分看到1个烯烃质子信号δH 6.81(1H,td,J=7.6,1.6 Hz)、δH 5.48(1H,m);以及糖的质子信号.13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6)谱中苷元部分有1个羰基碳信号δC(165.2);4个烯烃碳信号δC(153.3)、δC(103.1)、δC(132.0)、δC(120.9).取代基部分1个羰基碳信号δC(162.9);2个烯烃碳信号δC(126.3)、δC(145.0);2个甲基碳信号δC(12.1)、δC(19.3);糖部分1个端基碳信号δC(98.6).推测化合物为母核为裂环环烯醚萜,带香叶基的苷类化合物,与文献[10]报道对比,数据基本一致,故鉴定化合物2为6″,7″-dihydro-7-epiexaltoside.其1H-NMR和13C-NMR数据如下,1H-NMR(400 MHz,CD3OD)δH:7.65(1H,d,J=2.3 Hz,H-3),6.85(1H,m,H-3″),6.61(1H,t,J=2.1,H-7),5.56(1H,d,J=1.7 Hz,H-1),5.49(1H,m,H-8),5.39~5.27(2H,m,H-10),4.71(1H,J=7.8 Hz,H-1′),3.61(2H,m,H-8″),3.44~3.35(1H,m,H-5),2.75(1H,m,H-9),1.98~1.88(2H,m,H-6),2.23(2H,m,H-4″),1.84(3H,s,H-9″),1.61~1.49(2H,m,H-7″),1.59~1.44(2H,m,H-5″),1.41(1H,m,H-6″),0.93(3H,d,J=6.7 Hz,H-10″).13C-NMR(100 MHz,CD3OD)δC:99.2(C-1),155.3(C-3),104.5(C-4),27.2(C-5),30.8(C-6),93.8(C-7),133.0(C-8),43.5(C-9),121.6(C-10),167.2(C-11),100.6(C-1′),74.6(C-2′),78.4(C-3′),71.4(C-4′),78.2(C-5′),62.6(C-6′),166.2(C-1″),127.8(C-2″),146.1(C-3″),27.3(C-4″),40.5(C-5″),23.2(C-6″),36.7(C-7″),61.1(C-8″),12.2(C-9″),19.8(C-10″).

化合物3:白色无定形粉末.ESI-MSm/z:381 [M+Na]+,分子式C16H22O9.Molish反应呈阳性,推测化合物为苷类化合物;香草醛显色剂加热,化合物显红色.1H-NMR(400 MHz,DMSO-d6)谱与文献[11]比对,可以看到苷元3个烯烃质子信号δH 7.49(1H,d,J=2.5 Hz)、δH 5.48(1H,m)、δH 5.25(1H,dd,J=10.1,2.3 Hz,H-10a),δH 5.32(1H,dd,J=17.2,2.2 Hz,H-10b);13C-NMR(100 MHz,DMSO-d6)谱中可以看到一个端基碳信号δC(98.5);1个羰基碳信号δC(165.1);4个烯烃碳信号δC(151.9)、δC(105.3)、δC(132.8)、δC(120.8).推测化合物为裂环环烯醚萜苷类化合物,与文献[11]报道对比,数据基本一致,故鉴定化合物3为獐牙菜苷.其1H-NMR和13C-NMR数据如下,1H-NMR(400 MHz,CD3OD)δH:7.59(1H,d,J=2.5 Hz,H-3),5.60-5.50(1H,m,H-8),5.54(1H,d,J=1.8 Hz,H-1),5.32(1H,dd,J=14.2,1.7 Hz,H-10b),5.25(1H,dd,J=8.6,1.8 Hz,H-10a),4.69(1H,d,J=7.8 Hz,H-1′),4.48~4.32(2H,m,H-7),2.69(1H,ddd,J=9.4,5.4,1.5 Hz,H-9),1.80~1.65(2H,m,H-6).13C-NMR(100 MHz,CD3OD)δC:98.2(C-1),153.9(C-3),106.3(C-4),28.2(C-5),25.7(C-6),69.4(C-7),132.8(C-8),44.0(C-9),120.8(C-10),168.1(C-11),99.5(C-1′),74.6(C-2′),78.8(C-3′),71.5(C-4′),77.8(C-5′),62.5(C-6′).

化合物4:白色无定形粉末.ESI-MSm/z:389 [M+H]+,分子式C17H24O10.Molish反应呈阳性,推测化合物为苷类化合物;香草醛显色剂加热,化合物显红色.1H-NMR(400 MHz,DMSO-d6)中可以看到苷元3个烯烃质子信号δH 7.55(1H,d,J=2.0 Hz)、δH 5.46(1H,m)、δH 5.28(1H,dd,J=10.1,2.3 Hz,H-10a)、δH 5.36(1H,dd,J=17.2,2.0 Hz,H-10b);1个甲氧基质子信号δH 3.46(3H,s).13C-NMR(101 MHz,DMSO-d6)中可以看到1个端基碳信号δC(98.9);1个甲氧基碳信号δC(56.5);4个烯烃碳信号δC(152.2)、δC(104.3)、δC(133.6)、δC(121.4).推测化合物为裂环环烯醚萜苷类化合物,与文献[12]报道对比,数据基本一致,故鉴定化合物4为断马钱子苷半缩醛内酯.其1H-NMR和13C-NMR数据如下,1H-NMR(400 MHz,CD3OD)δH:7.57(1H,d,J=2.4 Hz,H-3),5.55(2H,d,J=1.2 Hz,H-1),5.46(1H,m,H-8),5.32(1H,s,H-7),5.30(1H,m,H-10a),5.26(1H,m,H-10b),4.65(1H,d,J=7.8 Hz,H-1′),3.55(3H,s,—OCH3),3.15(1H,m,H-5),2.64(1H,m,H-9),1.95(1H,m,H-6a),1.45(1H,m,H-6b).13C-NMR(100 MHz,CD3OD)δC:98.1(C-1),154.1(C-3),105.2(C-4),25.0(C-5),31.8(C-6),105.6(C-7),133.0(C-8),43.8(C-9),121.4(C-10),167.6(C-11),99.9(C-1′),74.7(C-2′),77.8(C-3′),71.5(C-4′),78.5(C-5′),62.6(C-6′),57.2(—OCH3).

化合物5:白色无定形粉末.ESI-MSm/z:389 [M+H]+,分子式C17H24O10.Molish反应呈阳性,推测化合物为苷类化合物;香草醛显色剂加热,化合物显红色.1H-NMR(400 MHz,DMSO-d6)中可以看到苷元3个烯烃质子信号δH 7.55(1H,d,J=2.0 Hz)、δH 5.46(1H,m)、δH 5.28(1H,dd,J=10.1,2.3 Hz,H-10a)、δH 5.36(1H,dd,J=17.2,2.0 Hz,H-10b);1个甲氧基质子信号δH 3.46(3H,s).13C-NMR(101 MHz,DMSO-d6)中可以看到1个端基碳信号δC(98.9);1个甲氧基碳信号δC(56.5);4个烯烃碳信号δC(152.2)、δC(104.3)、δC(133.6)、δC(121.4).推测化合物为裂环环烯醚萜苷类化合物,与文献[12]报道对比,数据基本一致,故鉴定化合物5为表断马钱子苷半缩醛内酯.其1H-NMR和13C-NMR数据如下,1H-NMR(400 MHz,CD3OD)δH:5.46(1H,s,H-1),7.53(1H,d,J=2.0 Hz,H-3),3.00(1H,m,H-5),1.59(1H,d,J=12.0 Hz,H-6a),1.83(1H,d,J=13.2Hz,H-6b),5.31(1H,dd,J=9.6,2.0 Hz,H-7),5.46(1H,m,H-8),2.63(1H,dd,J=6.0,1.6 Hz,H-9),5.28(1H,dd,J=10.1,2.3 Hz,H-10a),5.36(1H,dd,J=17.2,2.0 Hz,H-10b),3.46(3H,s,-OCH3).13C-NMR(100 MHz,CD3OD)δC:98.6(C-1),154.4(C-3),105.2(C-4),23.0(C-5),30.3(C-6),103.5(C-7),133.6(C-8),42.9(C-9),121.2(C-10),167.4(C-11),100.2(C-1′),74.6(C-2′),78.2(C-3′),71.5(C-4′),78.3(C-5′),62.5(C-6′),57.1(—OCH3).

化合物6:白色无定形粉末.ESI-MSm/z:389 [M+H]+,分子式C17H26O10.Molish反应呈阳性,推测化合物为苷类化合物.10%浓硫酸—乙醇溶液,加热显紫红色.1H-NMR(400 MHz,DMSO-d6)中可以看到1个烯烃质子信号δH 7.37(1H,d,J=1.0 Hz);1个甲基质子信号δH 1.00(3H,s);1个甲氧基质子信号3.64(3H,s).13C-NMR(101 MHz,DMSO)中可以看到2个烯烃碳信号δC(112.1)、δC(150.6);1个甲基碳信号δC(13.5);1个甲氧基碳信号δC(51.0);1个糖端基碳信号δC(98.6).与文献[11]报道对比,数据基本一致,故鉴定化合物6为马钱子苷.其1H-NMR和13C-NMR数据如下,1H-NMR(400 MHz,CD3OD)δH:7.37(1H,d,J=1.1 Hz,H-3),5.28(1H,d,J=4.5 Hz,H-1),4.62(1H,d,J=7.8 Hz,H-1′),4.01(1H,m,H-7),3.66(3H,s,-OCH3),3.10(1H,m,H-5),2.21(1H,m,H-6b),2.01(1H,m,H-9),1.88(1H,m,H-8),1.60(1H,m,H-6a),1.10(3H,s,H-10).13C-NMR(100 MHz,CD3OD)δC:97.5(C-1),151.8(C-3),114.1(C-4),31.9(C-5),42.8(C-6),75.2(C-7),42.6(C-8),46.7(C-9),13.5(C-10),167.0(C-11),100.1(C-1′),74.6(C-2′),78.3(C-3′),71.5(C-4′),78.5(C-5′),62.6(C-6′),51.7(—OCH3).

化合物1~6化学结构式见图1.

2.2 α-葡萄糖苷酶活性筛选结果

筛选结果如表1所示.化合物1~6均可具有抑制α-葡萄糖苷酶活性的作用,其中化合物3对α-葡萄糖苷酶的抑制表现最为显著,接近于阿卡波糖.

表1 各化合物对α-葡萄糖苷酶的影响Tab.1 The influences of α-Glucosidase

3 讨论

龙胆科植物富含环烯醚萜苷类成分[12],睡菜作为龙胆科植物,同样富含环烯醚萜苷类成分.本研究对睡菜正丁醇部位进行针对性分离纯化,得到6个环烯醚萜苷类化合物.环烯醚萜苷类成分具有降血糖、抗炎、免疫抑制等多种药理活性[13].糖尿病是由高血糖引起的慢性代谢紊乱疾病,控制血糖是治疗糖尿病的基础,以天然产物抑制α-葡萄糖苷酶活性是调节碳水化合物代谢和高血糖的新型口服策略[14],也是目前研究天然药物降血糖治疗的热点方向,常用的α-葡萄糖苷酶抑制剂主要有阿卡波糖和伏格列波糖等.已有研究显示山茱萸、玄参等天然药用植物中环烯醚萜苷类化合物进行糖尿病相关研究,指出天然药物在防治糖尿病及其并发症方面具有安全、有效、毒副作用小、多靶点、多效应、多功能性等优势,环烯醚萜苷类成分对糖尿病极其并发症的调节机制有抑制α-葡萄糖苷酶降低糖尿病血糖水平、减弱胰岛β细胞损伤或改变受损的β细胞、抑制氧化应激减轻肾脏病理性改变等[6,15-16].本实验对睡菜正丁醇部位进行化学成分研究,得到6个环烯醚萜苷类化合物.为了验证这6个环烯醚萜苷类化合物是否具有降血糖作用,对其分别进行了α-葡萄糖苷酶抑制活性筛选,我们对酶促反应可能的影响因素如温度、pH、酶浓度、终止剂浓度、水解时间等进行严格把控排除外界因素干扰以保证实验的可靠性,最终活性筛选结果表明6个环烯醚萜苷类化合物对α-葡萄糖苷酶的抑制作用虽皆不及阿卡波糖,但均表现抑制效果.其中化合物3的抑制作用最为显著,其IC50值为6.63±0.38,效果最为接近阿卡波糖.化合物1、2对α-葡萄糖苷酶相较化合物3效果较弱,化合物4、5、6则抑制效果更弱.上述均提示睡菜中提取的环烯醚萜苷类成分具有降血糖作用,对糖尿病具有一定的干预效果,其机制可能与抑制α-葡萄糖苷酶活性,减缓体内糖类水解,维持体内血糖水平有关.本实验为研究环烯醚萜苷类成分的α-葡萄糖苷酶抑制活性提供了科学参考,同时也提供了防治糖尿病及并发症的天然药物研究素材,也为完善睡菜药理活性方面提供了糖尿病研究基础.

图1 睡菜中化合物的结构式Fig.1 Chemical constituents from Menyanthes trifoliate L.

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