Nrf2蛋白在中波紫外线照射HaCaT细胞中的光保护作用

2020-04-03 10:39林芳马良娟张晓卉柏冰雪
中华皮肤科杂志 2020年2期
关键词:紫外线氧化应激试剂盒

林芳 马良娟 张晓卉 柏冰雪

哈尔滨医科大学附属第二医院皮肤科 150000

林芳现在沧州市中心医院皮肤科,河北 061000

紫外线照射是急性皮肤光损伤、慢性光老化和光致癌作用的主要致病因素。中波紫外线(UVB)照射是造成皮肤光损伤的主要原因[1]。UVB主要作用于表皮角质形成细胞,产生氧化应激反应,并诱发机体皮肤炎症,从而造成角质形成细胞氧化损伤[2]。核转录因子红系2相关因子2(nuclear factorerythroid 2-related factor-2,Nrf2)是一种抗氧化反应的主要调节因子[3],在氧化应激状态下与抗氧化反应元件(antioxidant response element,ARE)结合成为Nrf2/ARE通路,可以清除体内活性氧,抑制炎症,保护细胞免受氧化应激损伤。据报道,一些具有光保护作用的物质能够通过激活Nrf2及Nrf2/ARE通路减轻氧化应激反应,延缓光损伤[4-5]。我们建立UVB光损伤的人永生化角质形成细胞(HaCaT)模型,并对HaCaT细胞感染Nrf2增强基因慢病毒,增强细胞内Nrf2蛋白的表达,在细胞水平上研究Nrf2在皮肤角质形成细胞光损伤中的保护作用。

材料与方法

一、材料与仪器

Nrf2增强基因慢病毒(上海汉恒生物公司)。人永生化角质形成细胞(HaCaT)由哈尔滨医科大学附属第二医院实验室提供。DMEM细胞培养液、胎牛血清、CCK8细胞增殖毒性检测试剂盒(日本同仁化学研究所),DHE超氧化物阴离子荧光探针(上海碧云天公司),超氧化物歧化酶(SOD)测定试剂盒(南京建成生物工程研究所),人肿瘤坏死因子α(TNF-α)和白细胞介素6(IL-6)ELISA 测定试剂盒(欣博盛生物科技有限公司),Nrf2兔抗人抗体、β肌动蛋白抗体、辣根酶标记的山羊抗兔Nrf2抗体(上海碧云天公司),UVB灯管(南京华强电子有限公司)、电泳仪、iMark酶标仪(美国Bio-Rad公司)。

二、方法

1.细胞培养与分组:复苏HaCaT细胞,用含10%胎牛血清的DMEM培养基于37℃、5%CO2下培养,每1~2 d换液,取3~5代HaCaT细胞,分为对照组(不转染,不照射)、UVB组(不转染,照射)、Nrf2组(转染,不照射)、Nrf2+UVB组(转染,照射)。本文所有实验均重复3次。

图1 倒置荧光显微镜下HaCaT细胞转染带有荧光标记的Nrf2增强基因后的荧光情况(×200) 4组细胞的转染效率分别为10%、50%、70%、90%

2.Nrf2增强基因慢病毒转染预实验:取3~5代HaCaT细胞,于96孔培养板中每孔接种3 000~5 000个细胞,加入100 μl培养基,培养箱过夜。细胞分为4组,用不含胎牛血清的完全培养基培养24 h。稀释病毒原液转染细胞,每组细胞的感染复数(MOI,multiply of infection)值(指每个细胞感染的病毒数)分别设为10、20、50、100,转染后培养12 h,观察细胞状态,无明显异常时,继续培养24 h,更换培养基,转染48 h时,观察转染效率。该慢病毒带有绿色荧光蛋白报告基因,可通过荧光显微镜观测绿色荧光蛋白表达效率,得到细胞转染效率。结果显示,MOI值为20时,细胞转染效率约为50%,实验可行性及经济价值最合适。

3.感染Nrf2增强基因慢病毒及UVB照射:取3~5代HaCaT细胞,根据预实验条件,进行慢病毒转染,感染48 h后,观察荧光情况,根据细胞生长情况及时换液、传代及冻存,待用。细胞感染Nrf2增强基因慢病毒或照射UVB后,继续培养24 h进行后续实验,并在非荧光倒置光镜下观察细胞形态、数目及细胞状态。UVB光源距细胞15 cm,照射30 s,总剂量为30 mJ/cm2。对照组、Nrf2组细胞注意避光。

4.CCK8试剂盒检测细胞活力:按试剂盒说明书操作处理上述4组细胞,采用酶标仪于450 nm波长处测定各组细胞的吸光度(A值)。细胞活力=(实验孔A值-空白孔A值)/(对照孔A值-空白孔A值)×100%。

5.TNF-α、IL-6、SOD含量的测定:取上述4组细胞,按TNF-α、IL-6 ELISA试剂盒说明书操作,检测各组细胞培养上清液中TNF-α和IL-6含量。取上述4组细胞,按SOD测定试剂盒说明书操作,测定各组细胞SOD酶活力单位(U/mg)。

6.Western印迹检测Nrf2蛋白水平:取上述4组细胞,冰上裂解后,于4℃下12 000 r/min离心10 min(离心半径7 cm),收集上清液,根据BCA蛋白浓度测定试剂盒说明书操作,测量各组蛋白浓度。各组蛋白样品经电泳、转膜、封闭后,加入Nrf2一抗(1∶1 000稀释),4℃孵育过夜或室温孵育1 h,洗膜3次,加入二抗(1∶10 000稀释)室温孵育1 h,弃二抗,洗膜3次,加适量预混ECL发光液显影,置于Chem Scope 6000系列化学发光成像机器,采集图像。分析条带信息,目的基因相对表达值为目的基因条带与β肌动蛋白基因条带灰度值的比值。

7.细胞活性氧(ROS)的检测:取上述4组细胞,加入含5 μmol/L超氧化物阴离子荧光探针(DHE)2 μl,于37℃细胞培养箱内孵育20 min,采用无血清培养基洗涤3次,除未进入细胞的DHE。设置空白对照组。使用流式细胞仪于535 nm激发波长和610 nm发射波长检测细胞荧光强度。相对ROS含量=处理组荧光强度/空白对照组荧光强度×100%。

结 果

一、细胞转染情况

倒置荧光显微镜下,MOI值10、20、50、100组细胞的转染效率约为10%、50%、70%、90%。见图1。

二、UVB照射前后HaCaT细胞的形态学变化

倒置显微镜下,正常的HaCaT细胞为多角形,呈簇集状生长,生长状态良好;照射30 mJ/cm2UVB后继续培养24 h时,HaCaT细胞出现皱缩、变圆,漂浮细胞数增多,贴壁数量明显减少。见图2。

三、感染Nrf2增强基因慢病毒对HaCaT细胞Nrf2蛋白水平的影响

图2 照射中波紫外线对HaCaT细胞形态的影响(×200)2A:正常细胞为多角形,呈簇状生长,生长良好;2B:照射后继续培养24 h,细胞出现皱缩、变圆,漂浮细胞数增多,贴壁数量明显减少

对照组、UVB 组、Nrf2组、Nrf2+UVB组Nrf2蛋白相对表达水平分别为1.84±0.05、0.63±0.08、2.19±0.17、1.43±0.07,差异有统计学意义(F=64.81,P < 0.05),Nrf2组高于对照组(t=14.82,P <0.05),UVB组水平低于对照组(t=12.49,P < 0.05)和Nrf2+UVB组(t=7.47,P<0.05)。见图3。

四、感染Nrf2增强基因慢病毒及照射UVB对HaCaT细胞活力的影响

对照组、UVB组、Nrf2组、Nrf2+UVB组细胞活力差异有统计学意义(P<0.05),UVB组低于对照组(t=33.34,P < 0.05)和Nrf2+UVB组(t=10.07,P<0.05)。见表1。

五、感染Nrf2增强基因慢病毒及照射UVB对HaCaT细胞SOD水平的影响

对照组、UVB组、Nrf2组、Nrf2+UVB组SOD水平差异有统计学意义(P<0.05),UVB组低于对照组(t=11.25,P <0.05)和Nrf2+UVB组(t=17.52,P<0.05)。见表1。

图3 Western印迹检测感染Nrf2增强基因慢病毒及照射中波紫外线(UVB)对HaCaT细胞内Nrf2蛋白水平的影响 1~4:分别为对照组、UVB组、Nrf2组、Nrf2+UVB组。UVB组Nrf2蛋白相对表达水平低于对照组和Nrf2+UVB组

六、感染Nrf2增强基因慢病毒对UVB照射后HaCaT细胞的炎症因子IL-6、TNF-α的影响

对照组、UVB 组、Nrf2组、Nrf2+UVB组IL-6水平差异有统计学意义(P<0.05),而TNF-α水平差异无统计学意义(P=0.189)。UVB组IL-6水平高于对照组(t=28.48,P<0.05)和Nrf2+UVB组(t=27.82,P < 0.05)。见表1。

七、感染Nrf2增强基因慢病毒对UVB诱导的HaCaT细胞相对ROS含量的影响

对照组、UVB组、Nrf2组、Nrf2+UVB组相对ROS含量差异有统计学意义(P<0.05),UVB组高于对照组(t=33.68,P<0.05)和Nrf2+UVB组(t=12.47,P < 0.05)。见表1、图4。

讨 论

紫外线可导致皮肤损伤,其中UVB能量最高,直接照射于皮肤表皮角质形成细胞时,可产生过多ROS并引起一系列的氧化应激反应,ROS与体内的生物分子如蛋白质、脂质和核酸相互作用,加速皮肤光老化[6],最终导致各种皮肤损伤。研究显示,Nrf2及其通路通过介导细胞氧化应激损伤,降低炎症信号传导,增加DNA修复和抗氧化剂反应[7-8],达到对表皮细胞光保护的作用。本研究也发现,UVB照射可引起HaCaT细胞受损,我们采用UVB照射HaCaT细胞后继续培养24 h,发现贴壁细胞明显减少,细胞出现皱缩、变圆,死亡的细胞增多。我们通过对HaCaT细胞转染慢病毒包装的Nrf2增强基因,发现提高Nrf2表达水平可减轻UVB照射对HaCaT细胞的损伤。

表1 感染Nrf2增强基因慢病毒及照射UVB对HaCaT细胞活力及SOD、IL-6、TNF-α、ROS水平的影响(±s)

表1 感染Nrf2增强基因慢病毒及照射UVB对HaCaT细胞活力及SOD、IL-6、TNF-α、ROS水平的影响(±s)

注:n=3。UVB:中波紫外线;SOD:超氧化物歧化酶;IL-6:白细胞介素6;TNF-α:肿瘤坏死因子α;ROS:相对活性氧

组别对照组UVB组Nrf2组Nrf2+UVB组F值P值细胞活力(%)98.00±2.39 24.40±2.98 71.63±3.39 43.38±3.39 64.81<0.05 SOD水平(U/mg)228.02±15.68 114.04±7.85 321.29±13.96 150.84±9.42 170.76<0.001 IL-6水平(ng/L)758.32±223.30 6 510.12±269.25 1 540.04±90.73 5 592.95±235.47 532.34<0.001 TNF-α水平(ng/L)215.85±31.10 243.73±48.53 178.09±38.70 183.13±27.28 2.02 0.189相对ROS含量(%)1.27±0.10 5.65±0.19 2.10±0.73 3.67±0.19 481.39<0.001

图4 流式细胞仪检测感染Nrf2增强基因慢病毒对中波紫外线诱导的HaCaT细胞活性氧(ROS)水平的影响 UVB组ROS相对水平高于对照组和Nrf2+UVB组

HaCaT细胞在感染Nrf2增强基因慢病毒后,Western印迹显示,细胞内Nrf2水平显著升高,说明Nrf2增强基因的转染成功,UVB组Nrf2水平低于对照组,提示感染Nrf2增强基因慢病毒可缓解UVB照射对降低HaCaT细胞Nrf2水平的影响。Nrf2作为抗氧化反应的主要调节因子,在氧化应激状态下与ARE结合成为Nrf2/ARE通路,两者同时对机体细胞内的氧化应激状态进行调节,可以进行炎症信号传导,DNA修复和抗氧化剂反应。本研究通过CCK8法测得各组细胞生存率显示,UVB照射后细胞生存率低于对照组,但感染Nrf2增强基因慢病毒后,Nrf2+UVB组细胞存活率较UVB组升高,表明感染Nrf2增强基因慢病毒能够提高UVB诱导的HaCaT的生存率。我们还通过检测HaCaT细胞的ROS荧光强度发现,UVB组细胞产生ROS增多,而与UVB组相比,Nrf2+UVB组ROS产生量减少。这些结果提示,转染Nrf2基因通过抑制细胞内ROS的产生,提高UVB照射后HaCaT细胞的存活率。在正常情况下,人体内有诸多受Nrf2/ARE通路调控抗氧化的酶,如SOD、谷胱甘肽硫转移酶、血红素氧合酶1等,可有效地对抗机体内的氧化应激损伤。SOD有特定生物催化功能,可清除自由基及炎症因子,对细胞的光损伤有一定的保护作用。本研究发现,UVB照射可使细胞内SOD活力显著降低,表明UVB照射加快HaCaT细胞的氧化损伤,而转染Nrf2过表达基因后SOD活力上升,提示Nrf2可提高细胞内抗氧化酶水平,增加抗氧化应激能力。

作为重要的免疫器官,皮肤在受外界刺激(如紫外线照射)后会激活一系列氧化应激通路,产生多种炎症因子。紫外线诱发的皮肤炎症过程中主要产生IL-6、IL-8及TNF-α,IL-6可加速基质金属蛋白酶1的分泌,刺激表皮增生,与多种皮肤炎症相关,如特应性皮炎、银屑病和光老化等疾病。TNF-α主要由单核细胞和巨噬细胞产生,且能进一步诱导表皮细胞产生 IL-2、IL-6,加重炎症反应[9]。Saw等[10]对Nrf2基因敲除小鼠和Nrf2基因野生型小鼠使用Nrf2活化剂后照射UVB,发现野生型小鼠比Nrf2基因敲除小鼠更容易将晒伤细胞的数量、炎症因子恢复到它们的基础水平。本研究显示,经UVB照射后,HaCaT细胞培养上清液中的IL-6含量高于对照组,而Nrf2+UVB组的IL-6生成量少于UVB组,提示Nrf2可抑制IL-6的分泌,减轻UVB照射引起的炎症反应及细胞损伤。本研究也检测了另外一种常见的炎症因子TNF-α,发现照射UVB与感染Nrf2增强基因慢病毒对HaCaT细胞TNF-α的分泌无明显影响,其原因仍有待研究。

本实验证实,UVB照射能造成体外培养的HaCaT细胞损伤,而Nrf2在细胞的光损伤中具有保护作用,这种保护作用可能与其抗氧化应激通路密切相关。本实验为Nrf2基因激动剂及激活Nrf2通路对抑制紫外线造成的光损伤的保护作用提供了一定的理论依据,有望用于临床。但本实验结果仅是在细胞及分子水平的体外研究,且部分抗氧化及体内保护机制尚未完全清楚,有待深入研究。

利益冲突所有作者均声明不存在利益冲突

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