中国荷斯坦牛TLR2基因SNPs的快速筛查及等位基因频率的估算

2018-08-24 08:52杨永江吴恩芸任稳稳马博妍高成宏李宏旭刘丽霞臧荣鑫杨具田
浙江农业学报 2018年8期
关键词:荷斯坦外显子等位基因

杨永江,吴恩芸,任稳稳,马博妍,高成宏,李宏旭,刘丽霞,曹 忻,臧荣鑫,杨具田,张 丽

(西北民族大学 生命科学与工程学院, 甘肃 兰州 730030)

Toll样受体(toll-like receptors,TLRs)是一类在生物进化过程中较保守的模式识别受体,能对感染机体的病原微生物直接做出免疫防御,在天然免疫防御中发挥重要作用[1]。TLRs能够直接识别不同微生物表面的病原相关分子模式,激活先天免疫应答[2]。作为TLRs家族成员,TLR2通过识别多种病原微生物及其产物,介导天然免疫,并且通过细胞内信号转导,启动获得性免疫,其在巨噬细胞、树突状细胞、单核细胞和T淋巴细胞等多种免疫细胞表面均有表达[3]。研究证实,TLR2受体能够识别大多数病原微生物及其产物,能够识别革兰阳性菌的肽聚糖和脂磷壁酸,革兰阴性菌的类脂A、分支杆菌和脂蛋白与脂肽和细菌DNA等[4],但TLR2不直接识别病原相关分子模式(pathogen associated molecular patterns,PAMPs),而是和TLR6形成异源二聚体来提高TLR6对PAMPs的识别能力[5]。有研究显示,荷斯坦牛TLR2基因含有丰富的多态性,并与乳腺炎抗性显著相关[6]。

牛TLR2基因位于17号染色体[7],基因全长13 226 bp,mRNA序列全长3 513 bp,编码784个氨基酸,共有2个外显子,其中第2外显子为TLR2蛋白的编码区。牛TLR2基因多集中于该基因与奶牛乳腺炎的相关性研究。研究发现,TLR2基因通过识别金黄色葡萄球菌和链球菌,激活NF-kB通路,释放炎性因子,从而导致乳房炎的发生。患病牛乳腺区域TLR2 mRNA的表达量显著高于正常牛乳腺区域mRNA的表达,TLR2基因表达量可增至4~13倍[8-9]。另外,乳房炎作为奶牛常见病之一,严重影响了我国乳业的发展。TLR2基因单核苷酸多态(single nucleotide polymorphisms,SNPs)可作为荷斯坦牛乳房炎抗性的候选功能性SNP位点[10-12]。本研究利用DNA池测序对中国荷斯坦牛TLR2基因SNP进行快速筛查,旨在寻找奶牛TLR2基因的新型分子标记,以开发奶牛抗乳房炎的候选功能性SNP。

1 材料与方法

1.1 血样采集及DNA池的构建

血样采自宁夏农垦贺兰山奶业有限公司的350头荷斯坦牛,采集尾静脉血10 mL。以苯酚-氯仿法抽提基因组DNA[13],1%琼脂糖凝胶电泳检测基因组DNA完整性,紫外分光光度计测量每个DNA样品浓度3次,取平均值,加双蒸水调整DNA样品浓度至100 ng·μL-1,各DNA样品吸取2 μL构建DNA池。

1.2 引物设计和PCR扩增

使用Primer6.0软件在牛TLR2基因(NM_174197)上设计4对特异性引物(表1),交由苏州金唯智生物有限公司合成。PCR扩增体系为40 μL,含DNA池模板2.0 μL,0.25 μmol·L-1上下游引物各0.8 μL,2×TaqPCR Master Mix 22.0 μL,蒸馏水14.8 μL。扩增条件为:94 ℃预变性5 min;95 ℃变性30 s、退火30 s、72 ℃延伸30 s,35个循环;72 ℃延伸10 min,4 ℃保存,2%琼脂糖凝胶对扩增产物进行检测。

1.3 等位基因频率估算

1.4 生物信息学分析

对中国荷斯坦牛TLR2基因编码区生物信息学分析按照参考文献[15]的在线软件进行。

表1 牛TLR2基因SNP检测用引物列表Table 1 The information of primers

2 结果与分析

2.1 荷斯坦牛TLR2基因DNA池PCR扩增结果

DNA池P1、P2、P3、P4引物扩增产物的琼脂糖凝胶电泳检测结果显示(图1),扩增产物条带清晰明亮,条带单一,扩增产物大小与预期目的片段长度相符。

M,DNA marker 600 bp;1,P1引物扩增结果;2,P2引物扩增结果;3,P3引物扩增结果;4,P4引物扩增结果。M, DNA marker 600 bp; 1, P1 primer amplification results; 2, P2 primer amplification results; 3, P3 primer amplification results; 4, P4 primer amplification results.

2.2 DNA池扩增产物序列测定

中国荷斯坦牛DNA池P1、P2、P3和P4引物PCR扩增产物测序结果与牛TLR2基因标准序列(NM_174197)进行比对后共发现6个SNPs(图2),其中P1引物检测到TLR2基因第2内含子602 bp处发生T→A的突变(命名为T602A); P3引物检测到TLR2基因第2外显子10 634 bp处发生T→G的突变(T10634G),10 900 bp处发生G→C的突变(G10900C),T10634G为错义突变(Gly63Asp);P4引物检测到中国荷斯坦牛TLR2基因第2外显子11 047、11 096、12 077 bp处发生G→C、G→C、A→T和C→T的突变,分别命名为G11047C、A11076T、C12077T,均属于同义突变。其中T602A、T10634G、G10900C为牛TLR2基因首次发现的SNP位点。

2.3 SNPs筛查及等位基因频率估算

利用MWSnap软件标尺测量中国荷斯坦牛测序峰图中各SNPs等位基因峰图高度,并估算各突变位点的等位基因频率(表2)。由表2可知,等位基因频率在突变前后有明显差异。

图2 TLR2基因6个SNP测序结果Fig.2 Sequencing results of six SNP of TLR2 gene in Holstein cattle

表2 牛TLR2基因6个SNP等位基因频率估算Table 2 Estimation of 6 SNP alleles in the cattle TLR2 gene

2.4 中国荷斯坦牛TLR2基因SNPs对mRNA二级结构的影响

外显子2处的突变位点T10634G进行mRNA二级结构预测分析表明,SNPs突变前后引起mRNA二级结构改变,并导致mRNA二级结构的最小自由能发生改变,如图3所示。T10634G位点突变前后的自由能由-677.00 kcal·mol-1变为-683.60 kcal·mol-1,影响mRNA二级结构稳定性,可能影响随后蛋白质的翻译过程。

2.5 突变前后荷斯坦牛TLR2蛋白质二级结构和三级结构预测分析

使用在线软件http://npsa-pbil.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html分析荷斯坦牛TLR2基因SNPs对蛋白二级结构的影响结果如图4所示。其中T10634G野生型α-螺旋(Hh)、β-折叠(Ee)、β-转角(Tt)和无规则卷曲(Cc)比例分别为46.30%、17.86%、7.02%和28.83%,突变型则为45.79%、18.49%、7.02%和28.70%。

通过ESypred3D Web Server 1.0同源建模对TLR2蛋白进行三维结构预测,得到预测的TLR2膜外区的立体三维结构(图5)。预测结果表明,TLR2膜外区蛋白由背面多个α-螺旋和内面多个β-折叠构成,α-螺旋和β-折叠平行交替排列,构成一个弯曲状螺旋结构;突变前后TLR2蛋白三级结构无明显改变。

h, α螺旋; e, β折叠; t, β-转角; c, 无规则卷曲。h, Alpha helix; e, Extended strand; t, Beta turn; c, Random coil.

图中黑色代表α螺旋(Alpha helix),深灰色代表β折叠(Extended strand),浅灰色代表β-转角和无规则卷曲(Beta turn and Random coil)。Black represents alpha helix; Dark grey represents beta folding; Light grey represents Beta turn and random coil.图5 荷斯坦牛TLR2 蛋白三级结构模型预测Fig.5 Putative result of TLR2 protein tertiary structure in Holstein cattle

3 讨论

3.1 中国荷斯坦牛TLR2基因SNPs快速筛查及等位基因频率分析

Toll样受体(TLRs)是一类病原模式识别受体基因,是连接特异性免疫和非特异性免疫的桥梁。鸡体内已发现10种TLRs,可识别广泛的病原微生物及其代谢物,与禽类的抗病力显著相关[16]。哺乳动物及人类中已经发现的TLRs家族成员有11个,其中TLR2可以促进细胞因子的合成与释放,引发炎症反应。在一定的条件下,脂多糖结合蛋白(lipopolysaccharide-binding protein,LBP)可激活TLR2信号途径,产生促凋亡蛋白(Fas-associated death domain protein,FADD)和Caspase-8,导致表达TLR2的细胞发生凋亡,从而可降低过度的免疫应答,调控机体对入侵病原体的免疫应答在适度的水平[17]。

SNP是染色体基因组中单个核苷酸碱基以颠换、转换、插入和缺失等形式突变所引起的DNA序列的多态性,哺乳动物基因组平均每300~1 000 bp就有1个SNP,SNP不仅是基因组水平上最常见的遗传变异类型,还具有多态性丰富和遗传稳定性高等优点。

目前对牛TLR2基因的SNP研究多集中于该基因外显子2区域,刘利等[12]在荷斯坦牛TLR2基因的外显子2区域发现5个SNP位点,其中G11047C、A11076T也在本次多态性筛查中出现;白杰等[19]在荷斯坦牛TLR2基因的外显子2区域上发现T10634G突变,为错义突变,氨基酸由天冬氨酸(Asp)突变为谷氨酸(Gly)。

另外,不同群体的牛TLR2 SNP研究也呈现不同的研究结果,Pant等[20]在加拿大荷斯坦公牛群体中没有检测到TLR2基因的多态位点;白杰等[19]在新疆褐牛和中国荷斯坦奶牛群体中发现3个SNPs,其中A12705T位点为本研究未发现位点,而A11076G位点发生的三等位基因错义突变在本研究中为A11076T为双等位基因位点,且为同义突变。本研究发现的结果与白杰等[19]的研究结果存在较大差异。本研究显示,DNA池测序法可用于SNP的高效筛查[18],利用DNA池测序法,我们在荷斯坦牛TLR2基因内发现了6个SNPs,分别为T602A、G10900C、G11047C、A11076T、C12077T和T10634G,其中T602A、T10634G、G10900C为牛TLR2基因首次发现的SNP位点,T10634G为错义突变,氨基酸由原来的谷氨酸(Gly)转变为天冬氨酸(Asp),这与白杰等[19]的研究结果不同,造成差异过大可能是所选择的奶牛群体不同所造成的,宁夏和新疆、加拿大地区的环境、管理和选育模式的差异在一定程度上也会影响奶牛的遗传背景。

同义突变对基因功能的影响要比错义突变影响小,同义突变虽然不影响编码的氨基酸序列,但同义突变可能引起外显子的拼接增强,从而影响蛋白质的表达量,在一定程度上会改变蛋白质的空间结构,进而影响该蛋白质的正常功能[21]。错义突变能显著引起氨基酸的改变,通过影响编码的氨基酸序列来影响蛋白质的功能。

3.2 中国荷斯坦牛TLR2蛋白质及SNPs生物信息学分析

基因外显子的核苷酸突变可能引起 mRNA二级结构的改变,从而引起蛋白质结构的改变,进而影响其生物学功能。荷斯坦牛TLR2基因mRNA二级结构预测结果表明,SNP位点可影响基因mRNA二级结构和自由能,影响mRNA结构的稳定性,如T10634G突变前后的自由能降低了6.60 kcal·mol-1,T10634GT→G的变异可增加mRNA结构的稳定性,而这种改变可能引起TLR2基因表达效率的改变,相关结论仍需要实验的进一步证实。

蛋白质二级结构指在它的多肽链中有一些规则重复的构象,主要有α-螺旋、β-折叠、β-转角,有效地对其进行预测和分析有助于研究该蛋白质功能。TLR2蛋白质二级结构中,α-螺旋占主导地位,荷斯坦牛TLR2预测结果显示二级结构中Hh>30%,Ee>15%,由此可推测荷斯坦牛TLR2蛋白为混合型二级结构[27]。T10634G的突变可引起编码氨基酸的改变,使TLR2蛋白α-螺旋(Hh)由46.30%降低至45.79%,β-折叠(Ee)由17.86%增加至18.49%,无规则卷曲(Cc)由28.83%降低至28.70%。由于α螺旋和无规则卷曲是蛋白质肽链中构成配体受体结合的活性部位,无规则卷曲易受侧链相互影响而改变空间构象[28],因此TLR2基因T10634G突变可能会对蛋白二级结构的稳定性造成影响,具体结论仍需进一步研究。

本研究利用DNA池测序对荷斯坦牛TLR2基因的SNP进行了高效筛查,在此基础上我们将进行各SNPs与奶牛乳房炎的关联分析,以期为荷斯坦牛的抗病育种提供理论基础。

猜你喜欢
荷斯坦外显子等位基因
外显子跳跃模式中组蛋白修饰的组合模式分析
澳州进口与中国本地荷斯坦牛血清抗氧化指标和微量元素含量比较研究
亲子鉴定中Penta E稀有等位基因28的确认1例
亲子鉴定中男性个体Amelogenin基因座异常1例
外显子组测序助力产前诊断胎儿骨骼发育不良
荷斯坦奶牛杂交育种新进展(2020.9.9农科智库)
广东汉族人群Penta D基因座off-ladder稀有等位基因分析
江苏省中型牧场荷斯坦牛产犊间隔的影响因素分析
贵州汉族人群23个STR基因座的OL等位基因研究
影响荷斯坦牛体细胞评分差的因素分析