万倪彤 王志耕 梅 林 薛秀恒
(安徽农业大学茶与食品科技学院;安徽省农产品加工工程实验室,合肥 230036)
我国猪肉消费量世界第一[1],猪脂肪资源十分丰富。猪脂肪作为我国传统食用油脂,具有风味独特、能值高等特点,深受消费者喜爱。然而,现代营养学认为,长期大量食用动物源油脂,易导致血脂升高,引发肥胖症、脂肪肝、心血管疾病等“富贵病”,对人类的健康产生不利的影响[2-3]。因此,随着人们对健康膳食关注度的提高,猪油的餐饮消费量日渐减少,造成猪油资源的“过剩”[4]。通过现代食品技术可将猪脂肪改性为富含1,3-甘油二酯(1,3-DG)的功能性油脂,因1,3-DG具有降低血脂、控制体重等功效,可以在制作食品时作为食品添加剂或者替换一部分猪脂肪,使之同时具有猪脂的香气和1,3-DG的营养特性,并且不会改变食品的感官特性,因此为猪脂肪资源的升值利用开拓了新的领域[5-9]。
无论化学法还是酶法,改性处理对猪脂肪的理化特性均会产生一定影响。研究猪脂肪1,3-DG功能化改性制备过程中的理化性质变化规律及脂质氧化分解的变化,对评价改性技术的合理性、评估改性产品的安全性、完善制备技术具有理论和实践意义[10-12]。
本实验研究在制备1,3-DG过程中,脂肪酸的组分变化及其氧化变化,为1,3-DG猪脂肪制备技术改进和产品开发应用提供科学依据。
1.1 材料与试剂
猪油:市售;诺维信435酶(Novozyme 435):丹麦诺维信公司;37种脂肪酸甲酯混合标品:美国sigma公司;正己烷、异丙醇、异辛烷、甲醇均为色谱纯:美国阿拉丁工业公司;氢氧化钾、硫酸氢钠、硫代硫酸钠、碘化钾、三氯甲烷、冰乙酸、TBA、1,1,3,3-四乙氧基丙烷、三氯乙酸、EDTA、丙三醇均为分析纯:国药集团化学试剂有限公司。
1.2 仪器与设备
Lambda 35紫外分光光度计:美国Perkin Elmer公司;7890B气相色谱仪:日本安捷伦公司;HP-88气相毛细管柱(100 m×0.25 mm,0.20 μm):日本安捷伦公司;ZD-85气浴恒温振荡器:常州国宇仪器制造有限公司;Allegra 64R型贝克曼台式高速冷冻离心机:美国贝克曼库尔特有限公司;1525系列高效液相色谱仪(配有2414示差检测器):美国Waters公司。
1.3 方法
1.3.1 样品的制备
按“1,3-甘油二酯猪脂肪的制备方法”专利技术(201510391380.0)[13]方法,按照反应温度55 ℃,反应时间16 h,甘油:猪油=44%,加酶量为9%制取富含1,3-DG的猪脂。将制备原料置于150 mL锥形瓶中,于气浴恒温振荡器中,在55 ℃的温度条件下反应,每隔2 h取1次样品,离心取上层1,3-DG混合脂,于-24 ℃下冷藏待测。
1.3.2 HPLC法测定1,3-DG含量[14]
样品用流动相溶解,色谱柱:Luna silica C18(5 μm,250 mm×4.6 mm,Phenomenex),色谱条件:流动相为正己烷/异丙醇/甲酸(20:3:1),流速1 mL/min,柱温35 ℃。使用示差检测器进行检测,检测器温度35 ℃。检测结果使用面积归一化法进行定量。
1.3.3 脂肪酸组成及含量分析
参照GB/T 17376—2008《动植物油脂:脂肪酸甲酯制备》方法略作修改[15-18],对含1,3-DG混合猪脂肪样品进行甲酯化处理。即称取样品1 200 mg(精确到0.1 mg),置于10 mL连盖圆底离心管中,加入25 mL异辛烷振荡溶解,加入0.5 mol/L的氢氧化钾一甲醇溶液4 mL振荡摇匀,待其充分反应后,加入1 g硫酸氢钠中和,静置澄清后,取上清液过0.22 μm有机膜待测。
参照GB/T 17377—2008《动植物油脂:脂肪酸甲酯的气相色谱分析》方法略作修改[19-22],检测样品的脂肪酸组成。色谱柱:HP-88气相毛细管柱(100 m×0.25 mm,0.20 μm);检测器:氢火焰离子化检测器;程序升温:120 ℃保持5 min,以4 ℃/min升至230 ℃,保持10 min;进样量:1 μL;进样口温度:250 ℃;检测器温度280 ℃;分流进样,分流比30:1,99.999%氮气为载气,恒定流量2 mL/min;高纯氢气为燃烧气;空气为助燃气。以标准样品的相对保留时间定性,用峰面积归一化法定量。
1.3.4 脂肪被氧化程度分析
1.3.4.1 AV值的测定
参照GB/T 5009.37—2003《食用植物油卫生标准的分析方法》[23]方法进行测定,结果以mg KOH/g表示。酸值的计算见公式:
式中:V为消耗KOH溶液的体积/mL;c为KOH溶液浓度/mol/L;m为样品质量/g。
1.3.4.2 POV值的测定
参照GB/T 5009.37—2003《食用植物油卫生标准的分析方法》[23],按滴定法进行测定,结果以g/100 g表示。过氧化值的计算见公式:
式中:V为用于测定的硫代硫酸钠溶液的体积/mL;V0为用于空白的硫代硫酸钠溶液的体积/mL;c为硫代硫酸钠溶液的浓度/mol/L;m为样品质量/g。
1.3.4.3 丙二醛值的测定
参照GB 5009.181—2016《食品安全国家标准 食品中丙二醛的测定》[24]进行测定,结果以mg/100 g表示。丙二醛含量的计算见公式:
式中:c为从标准系列曲线中得到的试样溶液中丙二醛的质量浓度/μg/mL;V为试样溶液定容体积/mL;m为最终试样溶液所代表的试样质量/g;1 000为换算系数。
2.1猪脂肪酶法改性制备过程中1,3-DG含量的变化
猪脂肪在酶法改性制备1,3-DG过程中甘油三酯(Triglyceride,TG)、1,3-DG、1,2-DG、1(3)-单甘酯(monoglyceride,MG)和2-MG的含量变化参见图1。最终产品中1,3-DG的质量分数为44.63%。
图1 酶法改性制备1,3-DG过程中各脂肪分子的含量变化
由图1可知,在整个制备过程中,样品中1,3-DG的含量随着制备时间的增加而增加,相应的TG的含量则随着制备时间的增加而降低。在开始的2 h内,1,3-DG的含量直线增加,之后增幅减缓,于16 h达到最大值。相应的TG的含量在2 h呈内直线下降变化,表明在本制备体系条件下,TG转化为1,3-DG的反应速率在2 h内较高,之后显著减缓,且在制备时间内,转化量随着时间的增加不断累积,表明2~4 h是实现高效制备的工艺时间节点,这与吴克刚等[25]的研究结果相似。1,2-DG的转化在6 h后趋于平缓。样品中1(3)-MG和2-MG的含量随着制备时间的增加也略有增加,且增加的幅度大致相同。
2.2 酶法改性制备1,3-DG猪脂过程中脂肪酸变化
酶法改性制备1,3-DG猪脂肪过程中其脂肪酸组成变化参见表1。
表1 酶法改性制备1,3-DG过程中脂肪酸组成及相对含量
由表1可知,从猪脂肪中共鉴定出20种脂肪酸,用峰面积归一法求得,SFA、MUFA和PUFA分别占TFA的32.78%、40.66%和24.33%,SFA:MUFA:PUFA的比值为1.35:1.67:1。其中SFA 8种、MUFA 7种、PUFA 5种,主要为肉豆蔻酸(C14:0)1.16%,棕榈酸(C16:0)20.74%,棕榈油酸(C16:1n6)1.31%,硬脂酸(C18:0)10.25%,油酸(C18:1n9)37.62%和亚油酸(C18:2n6)22.01%。反应16 h后的1,3-DG成品中,SFA、MUFA和PUFA分别占TFA的32.73%、40.82%和24.20%。SFA:MUFA:PUFA的比值为1.35:1.69:1。其中SFA 8种、MUFA 7种、PUFA 5种,主要为肉豆蔻酸(C14:0)1.10%,棕榈酸(C16:0)20.69%,棕榈油酸(C16:1n6)1.29%,硬脂酸(C18:0)10.33%,油酸(C18:1n9)37.89%和亚油酸(C18:2n6)21.99%。结果表明,酶法改性制备1,3-DG猪脂肪过程中各脂肪酸占TFA的百分含量无显著差异(P>0.05),且其总SFA、MUFA、PUFA的含量也较稳定。说明酶法改性制备1,3-DG猪脂的处理对猪脂中的脂肪酸组成无影响,这与Debnat等[26]、Malheiro等[27]的研究结果类似,他们发现不管用植物油还是动物油煎炸猪肋排,煎炸油脂中的脂肪酸组成和猪肋排的脂肪酸组成都没有显著的变化。
2.3 酶法改性制备1,3-DG猪脂过程中酸价的变化
酶法改性制备1,3-DG猪脂肪过程中AV值的变化见图2。由图2可知,制备过程中随着酶解的进行,猪脂肪中游离脂肪酸量不断增加,使得混合脂中的AV值呈升高变化,14 h时达到最高值11.18 mg KOH/g。但16 h时的检测数值已回落至8.72 mg KOH/g,表明在实验体系下,14 h左右是三酸甘油酯水解反应的最大区间。AV值升高变化趋势与1,3-DG含量的增长趋势大致相同。按《食用动物油脂卫生标准》中猪油AV值≤1.5 mg KOH/g之要求,制备2 h时混合脂的AV值(5.47 mg KOH/g)就已超标,表明控制AV值于安全范围内是酶法改性制备1,3-DG猪脂肪技术应用必须解决的问题。
图2 酶法改性制备1,3-DG过程中酸值、过氧化值和丙二醛值的变化
2.4酶法改性制备1,3-DG猪脂过程中过氧化值的变化
由图2可知,制备过程中样品的POV值呈下降趋势,于6 h后呈平缓波动变化,而且各检测阶段的POV值均小于《食用动物油脂卫生标准》之限定值(0.10 g/100 g)。表明,酶法改性制备1,3-DG猪脂肪技术方法,对混合脂的POV值的影响较小,该项指标在制备过程中能保持较好的稳定性。
2.5 酶法改性制备1,3-DG猪脂过程中丙二醛的变化
由图2可知,制备过程中,混合脂中的丙二醛含量均小于《食用动物油脂卫生标准》中的0.25mg/100 g安全值,表明混合脂中氧化产物的生成量在可接受范围。但不同制备阶段,混合脂中氧化产物的生成量呈不规则变化,其原因有待深入探讨。
POV值反映的是油脂氧化酸败初期所形成的极不稳定的过氧化产物量,极易分解产生醛、酮等有害物质。而丙二醛值反映的是油脂酸败产物醛、酸等化合物的形成量。结合两项指标分析可知,酶法改性制备1,3-DG猪脂过程中,脂肪的氧化变化主要是脂肪的过氧化物形成醛、酸的过程。6 h后,丙二醛含量快速下降,表明制备获得的1,3-DG混合油脂体系中油脂的氧化分解产物除醛、酮、酸外,还有进一步反应后的产物,这些物质的类型及特性尚有待进一步分析探明。
酶法改性制备过程中,制备各阶段对脂肪酸含量占比影响不显著(P>0.05),获得的1,3-DG猪脂肪其各脂肪酸含量及占比与原料猪脂肪间差异不显著(P>0.05),酶法改性制备1,3-DG猪脂肪工艺过程不影响脂肪酸组分。
酶法制备1,3-DG猪脂肪的工艺过程中,反映油脂被氧化的POV、丙二醛指标均符合国家卫生标准。但酶法制备工艺导致产物的AV值升高,如何控制终产物的AV值是该工艺技术亟待改进完善的。
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