黄旭东,吴广礼
补体作为机体重要的防御体系,与细胞凋亡一起维持着内环境的稳定,而补体的部分作用是通过影响细胞凋亡而实现的。补体系统活化后生成的很多补体蛋白与细胞凋亡有着相互促进作用。由于补体家族及细胞凋亡相关蛋白成分众多,作用机制复杂,对其作用尚缺乏认识。现将补体对细胞凋亡的作用研究进展综述如下。
补体广泛存在于人体血液、组织液及细胞膜表面,是机体精密调控的防御体系。既往有研究报道,补体系统由30多种蛋白组成,随着研究的深入,不断有新成员加入,新近报道补体蛋白达50多种,包括可溶性蛋白和膜结合蛋白[1-2]。补体主要生理功能为免疫防御功能,其在体内具有强化吞噬、增强吞噬细胞的趋化性、免疫复合物的溶解、中和病毒、免疫反应的调节等作用,是机体免疫防御机制重要部分,对消除外来因素,特别是抗原侵害,维护机体内环境平衡具有重要作用[3]。补体系统由补体固有蛋白、补体调节蛋白、补体受体组成[4]。固有成分包括:C1~C9、甘露糖结合凝集素、相关丝氨酸蛋白酶、B因子、D因子等。调节蛋白包括:Cl INH、Factor I、C4BP、H因子、备解素等,为可溶性或以膜结合形式存在的一类蛋白,补体激活各环节均受到补体调节因子的精细调节。补体受体包括:CR1-CR5、C3aR、C5aR、fH受体等,表达于细胞膜,主要是免疫细胞膜表面,可与补体成分特异性结合发挥招募白细胞、吞噬清除病原微生物、清除免疫复合物等作用。补体系统在正常生理状态下以无活性酶前体形式存在,而当补体系统激活后产生级联放大反应,发挥不同生物学效应。目前明确的补体活化途径有3条,即经典途径、旁路途径和甘露聚糖结合凝集素途径[5]。经典途径因最早被发现而被命名,其通过抗原抗体复合物结合至C1q上启动,启动顺序为:C1qrs-C4-C2-C3-C5-C6-C7-C8-C9,活化过程需要两个关键转化酶,分别是活化C3的转化酶C4b2b,活化C5的C4b2b3b。旁路途径激活物为微生物或生物物质上的多糖、变性坏死组织细胞、变性蛋白聚集物、破坏后细胞碎片等,活化顺序为:C3-B-C3-C5-C6-C7-C8-C9,关键转化酶分别是活化C3的转化酶C3bBbp,活化C5的C3bBb3b。旁路途径又被称为第二途径、替代途径或者备解素途径,可以识别自己与非己,是机体补体系统重要的放大机制。MBL途径则是通过MBL蛋白结合到细菌细胞壁上MASP-1/MASP-2相关联的甘露糖或葡糖胺残基而活化,顺序为:MBL-MASP-C4-C2-C3-C5-C6-C7-C8-C9,关键转化酶分别是活化C3转化酶C4b2b,活化C5的C4b2b3b[6]。近来发现,凝血酶、凝血因子XIa、Xa、IXa、纤溶酶可以裂解C3、C5,产生C3a、C5a[7],因为在该通路中,凝血酶起着决定性作用,故被命名为凝血酶途径。补体系统激活机制复杂,被不同的刺激因素启动,在不同器官、不同条件下经过不同途径激活。
细胞凋亡是指机体正常细胞在一定的生理或病理条件下,遵循自身程序,由基因控制,自主、高效、有序的细胞自主性死亡方式。当机体产生新生细胞的同时,突变和衰老的细胞必须启动凋亡机制而被清除,使组织和器官得以正常发育和代谢,在多细胞生物器官发育与组织分化,及维持机体内环境稳定和免疫调节中发挥极其重要的作用[8-9]。与补体系统活化一样,很多因素可以诱导细胞凋亡发生,主要有:物理性诱导因素,包括温度变化(超过机体体温的高温或者低温)、放射线照射(如紫外线、γ射线等);化学因素,包括各种毒素、药物等;生物性因素,包括各种原因造成的缺血缺氧、外来微生物、DNA和蛋白质合成的抑制剂、活性氧、钙离子过载、视黄酸、正常生理因子的失调等[10]。这些诱导因素也如补体一样,通过不同信号转导途径启动凋亡程序。细胞凋亡信号转导途径包括:死亡配体途径、线粒体途径、内质网途径[11]。死亡配体途径也称为细胞外信号通路,由细胞外的配体通过与细胞上的死亡受体,主要是Fas、TNFRI结合,生成死亡诱导信号复合体,催化Caspase-8裂解成具有活性的Caspase-8,进而激活下游效应Caspase,特别是Caspase-3,造成细胞凋亡[12]。线粒体途径又称细胞内通路,各种诱因导致线粒体内线粒体通透性转运通道复合体开放,导致细胞色素C等物质释放,催化Caspase-9裂解成具有活性的Caspase-9而激活下游效应Caspase,而这一过程往往受Bcl-2家族调控[13-14]。内质网途径由内质网应激(ERS)引起,持续时间过长或严重的ERS都可促发凋亡发生。内质网主要通过Caspase-12介导ERS影响细胞凋亡[15]。
研究发现,细胞凋亡产生的凋亡小体是补体经典活化途径的强激活剂[16]。
3.1MAC与细胞凋亡 攻膜复合物(Membrane Attack comPlexes, MAC)是补体活化后的终末产物,即C5b-9,有全溶解型和亚溶解型两类。前者可在细胞膜上形成非选择性亲水跨膜通道,小的可溶性分子、离子及水分子可自由透过胞膜,而蛋白质等大分子难以从胞浆中逸出,导致胞内渗透压降低,造成细胞溶破死亡。补体最早被认识,即因其介导细胞、细菌和病毒溶解,调理吞噬,在机体抵御病原体感染时发挥防御作用,该功能主要靠全溶解型MAC实现。现在发现MAC除了可“杀细胞”外,还有多种生物学效应,包括诱导产生氧自由基、细胞因子、黏附分子等,这些效应统称为MAC细胞非致死效应,这时MAC也被称为亚溶破MAC。
全溶解型MAC可插入细胞膜形成跨膜通道,诱导细胞裂解死亡,当MAC数量不足以引起细胞死亡时,仍伴有钙离子内流,细胞内钙超载,激活细胞凋亡程序。而sMAC已经在不同疾病证实可导致细胞凋亡[17],经溶破剂量的C5b-9,即sMAC,诱导组织损伤,发现C5b-9上调ERK-1和ERK-2的活性,增强p21和DNA损伤因子的表达,DNA出现损伤,凋亡加速,并发现sMAC主要通过Caspase途径诱导靶细胞凋亡[18]。在Thy-1肾炎病变的前期,肾小球部分GMC表面可见补体C5b-9复合物的沉积,而此时细胞形态完好并未溶解,但有些细胞却发生了凋亡,推测sMAC参与了大鼠Thy-1肾炎GMC的凋亡病变,进一步研究发现,sMAC可以上调P300及干扰素调节因子-1的表达,通过X染色体连锁的凋亡抑制蛋白相关因子1(XAF1)导致Thy-1肾炎GMC凋亡[19-20]。另有研究认为,MAC可同时诱导细胞死亡和凋亡。
3.2C5a与细胞凋亡 C5a是补体激活的中间产物,人类的C5a包含74个氨基酸,由C5转化酶切除C5的a链释放而来。C5a、C4a、C3a均为补体裂解片段中的过敏毒素,但C5a是作用最强的过敏毒素,分别为C3a和C4a作用的20倍和2500倍。C5a还可释放组胺,这一作用可不依赖于肥大细胞,而是通过直接作用于血管内皮细胞而增加血管的通透性,刺激平滑肌收缩。高浓度的C5a还是中性粒细胞、嗜酸性粒细胞和单核细胞的趋化剂,可诱导这些细胞顺浓度梯度方向移动[21-22],并刺激中性粒细胞和单核细胞的氧化代谢,提高其cGMP水平,促进溶酶体与细胞膜融合,释放大量溶酶体酶,同时刺激中性粒细胞黏附及增强其产生超氧化物的能力。另外,C5a对免疫应答有增强作用,诱导单核细胞分泌白介素-1(IL-1)、IL-6、IL-8及肿瘤坏死因子-α(TNF-α),促进T细胞增殖及B细胞产生抗体[23]。
C5a对细胞凋亡也有影响[24]。C5a必须与C5aR结合才能发挥作用,C5a诱导细胞凋亡的作用也始于其与胞膜上C5aR的结合。有研究发现,C5a与胸腺细胞上的C5aR结合后诱导脓毒症大鼠胸腺细胞凋亡,但不能诱导正常大鼠胸腺细胞凋亡[25]。Guo等[26]在CLP致脓毒症大鼠模型中,给予抑制剂阻断C5a的作用,发现胸腺细胞的凋亡几乎消失,Bcl-XL水平基本保持正常,而胸腺细胞中Caspase的激活几乎完全被抑制,提示C5a可能通过线粒体通路促进胸腺细胞凋亡。Calpain是钙依赖性的半胱氨酸蛋白酶,可以将Bcl家族成员、AIF、转录因子、Caspase-12等裂解而参与凋亡的调节[27-28]。有研究使用C5a刺激肺泡Ⅱ型上皮细胞(AT-Ⅱ)后,胞浆m-calpain的含量增加,并包含很多活性片段,其时相性变化与该细胞凋亡率一致,而calpain特异性抑制剂PD150606可通过抑制m-calpain的激活降低AT-Ⅱ的凋亡率[29]。但C5a对细胞凋亡的影响是双向的,既可促进细胞凋亡又可延迟细胞凋亡,涉及的凋亡信号转导十分复杂,并认为这与不同细胞、不同条件有关。C5a与C5aR结合可以延迟中性粒细胞的凋亡,且跟C5a的浓度及作用时间呈正比[30],并发现中性粒细胞凋亡被不同通路抑制[31]。C5a可通过PI3K、ERK路径使X-linked inhibitor of apoptosis (XIAP)表达及Bad磷酸化而抑制PMN的凋亡[23,32],还能够增加细胞中cAMP的水平导致PMN凋亡延迟[33]。Knepper-Nicdai等[34]报道,calpains可协同Caspases促进中性粒细胞凋亡,且处于PMN多种功能及细胞凋亡的核心,而C5a可通过调节calpains活性并延迟 PMN的凋亡。
3.3C3a与细胞凋亡 C3a也为补体过敏毒素C3a,是补体活化过程中产生的活性片段,通过与其特异的受体C3aR结合而发挥功能[35]。C3aR作为补体系统的成员,在血液细胞巨噬细胞、T淋巴细胞及内皮细胞和血管平滑肌细胞都有表达。研究发现,C3a同样可以诱导细胞凋亡。将C3a作为刺激物加入人巨噬细胞共培养,结果显示随着补体C3a作用浓度的增加,时间的延长,人巨噬细胞凋亡率下降[36],其对细胞凋亡也具备双向调节作用。有研究发现,补体C3是脑内具有生物活性的补体,激活后变为C3a,抑制巨噬细胞凋亡,释放更多IL-1β、TNF-α、前列腺素等,导致内皮细胞发生凋亡[37]。
3.4CD59与细胞凋亡 补体激活过程伴随补体蛋白的调控,包括可溶性及膜结合性,其中膜结合性补体蛋白能够与不同补体成分作用,使补体激活和抑制处于平衡状态。CD46、CD55及CD59是目前研究最多的膜结合蛋白,其中CD59作用尤其重要。CD59是目前发现的唯一作用于补体终末阶段的补体调节蛋白,通过干扰C8和C9相互作用、C9多聚化或C9插入到细胞膜内,从而阻止MAC形成;另外可以作为CD2的天然配体,参与T细胞的激活与黏附。
CD59作为补体调节蛋白,近年发现在很多肿瘤中高表达,认为高表达的CD59可以促进肿瘤细胞增殖,抵抗补体防御功能。进一步研究发现肿瘤的失控性生长与肿瘤细胞的抗凋亡有关,其中CD59分子对肿瘤细胞的凋亡发挥重要调节作用[38]。有研究将CD59特异位点的短肽封条作用于HeLa细胞和转CD59基因的HeLa细胞,24 h后检测Survivin、Caspase-3及其Bax的表达水平[39]。Survivin基因是目前已经发现的被认为最强的凋亡抑制基因。有研究显示,Survivin表达降低,而Caspase-3表达水平增高,Bax的表达无明显变化,提示抑制CD59可通过下调Survivin的表达并活化Caspase-3促进HeLa细胞的凋亡,证实其能抑制HeLa细胞的凋亡。另有研究将CD59的活性位点,第40位氨基酸进行突变,使之失掉第40位色氨酸密码子UUG,并将重组质粒成功转染至Hela细胞,发现Hela细胞凋亡增加,Caspase-3表达量也增加,提示CD59引起肿瘤逃逸的可能途径是通过抑制凋亡相关因子Caspase-3,通过封闭或敲除CD59的活性位点,Caspase-3活性增强,促使肿瘤细胞凋亡[40]。还有研究认为,CD59作为补体调节蛋白,可通过调控MAC的生成间接抑制凋亡,通过下调MAC的合成及TNF-α等的释放,抑制靶器官细胞凋亡。但是也有研究发现CD59可以促进一些细胞的凋亡,研究发现CD59可以与特异的单克隆抗体交联,导致钙离子内流,造成胞浆内钙超载,钙离子浓度升高,线粒体摄取过量钙离子导致线粒体损伤,细胞色素C释放,活化Caspases,诱导细胞凋亡[41]。
3.5C1 INH与细胞凋亡 C1酯酶抑制剂(C1 Inhibitor ,C1 INH)是丝氨酸蛋白酶抑制剂家族成员,为高度糖基化的单链糖蛋白,由478个氨基酸残基组成,分子量约为104 kDa,在体内主要由肝脏合成,其他细胞(如单核细胞、巨噬细胞、血小板等)也可以合成[42]。C1 INH是目前发现的补体蛋白C1唯一抑制剂,通过与丝氨酸蛋白酶C1 s和C1r作用而抑制补体活化,从而调节补体经典活化途径,另外还发现其还可以抑制C3b与B因子结合,从而调节补体的旁路途径[43]。C1 INH还能够抑制缺氧状态下内皮细胞凋亡,研究证实C1 INH可通过抑制心肌细胞补体C3表达,抑制过氧化氢导致的培养心肌细胞凋亡[44]。体内研究也发现其对缺血后再灌注心肌细胞凋亡有明显抑制作用。在结扎大鼠冠状动脉前5 min尾静脉注射C1 INH,发现心肌细胞凋亡明显减少,认为其抑制了补体系统激活而减少心肌梗死面积,改善心功能[45]。
补体激活及细胞凋亡是机体正常生理活动,对维持机体内环境稳态发挥重要作用,如果补体过度激活,细胞不受限制凋亡则引发病理生理过程,导致疾病发生。已有研究证实二者相互影响,共同参与疾病的进程。
[1] Merle N S, Noe R, H albwachs-M ecarelli L,etal. Complement system part Ⅱ: role inimmunity[J].Front Immunol, 2015,6:257.
[2] Merle N S, Church S E, Fremeaux-Bacchi V,etal. Complement system part Ⅰ-molecular mechanisms of activation and regulation[J].Front Immunol, 2015,6:262.
[3] Melis J, Strumane K, Ruuls S R,etal. Complement in therapy and disease: Regulating the complement system with antibody- based therapeutics[J].Mol Immunol, 2015,67(2 Pt A):117-130.
[4] Gal P, Dobo J, Beinrohr L,etal. Inhibition of the serine proteases of the complement system[J].Adv Exp Med Biol, 2013,735:23-40.
[5] Degn S E, Thiel S. Humoral pattern recognition and the complement system[J].Scand J Immunol, 2013,78(2):181-193.
[6] Dobo J, Pal G, Cervenak L,etal. The emerging roles of mannose-binding lectin-associated serine proteases (MASPs) in the lectin pathway of complement and beyond[J].Immunol Rev, 2016,274(1):98-111.
[7] Berends E T, Kuipers A, Ravesloot M M,etal. Bacteria under stress by complement and coagulation[J].FEMS Microbiol Rev, 2014,38(6):1146-1171.
[8] Tower J. Programmed cell death in aging[J].Ageing Res Rev, 2015,23(Pt A):90-100.
[9] Galluzzi L, Bravo-San Pedro J M, Vitale I,etal. Essential versus accessory aspects of cell death: recommendations of the NCCD 2015[J].Cell Death Differ, 2015,22(1):58-73.
[10] Tare R S, Townsend P A, Packham G K,etal. Bcl-2-associated athanogene-1 (BAG-1): a transcriptional regulator mediating chondrocyte survival and differentiation during endochondral ossification[J].Bone, 2008,42(1):113-128.
[11] Takano-Murakami R, Tokunaga K, Kondo N,etal. Glucocorticoid inhibits bone regeneration after osteonecrosis of the femoral head in aged female rats[J].Tohoku J Exp Med, 2009,217(1):51-58.
[12] Asgeri M, Pourafkari L, Kundra A,etal. Dual effects of tumor necrosis factor alpha on myocardial injury following prolonged hypoperfusion of the heart[J].Immunol Invest, 2015,44(1):23-35.
[13] Czabotar P E, Lessene G, Strasser A,etal. Control of apoptosis by the BcL-2 protein family: implications for physiology and therapy[J].Nat Rev Mol Cell Biol, 2014,15(1):49-63.
[14] Opferman J T. Attacking cancer's Achilles heel: antagonism of anti- apoptotic BcL-2 family members[J].FEBS J, 2015,283(14):2661-2675.
[15] Ron D, Walter P. Signal integration in the endoplasmic reticulum unfolded protein response[J].Nat Rev Mol Cell Biol, 2007,8(7):519-529.
[16] Mihlan M, Blom A M, Kupreishvili K,etal. Monomeric c-reactive protein modulates classic complement activation on necrotic cells[J].FASEB J, 2011,25(12):4198-4210.
[17] Magro C M, Wang X. Cocaine-associated retiform purpura: a C5b-9- mediated microangiopathy syndrome associated with enhanced apoptosis and high levels of intercellular adhesion molecule-1 expression[J].Am J Dermatopathol, 2013,35(7):722-730.
[18] Nauta A J, Daha M R, Tijsma O. The membrane attack complex of complement induces Caspase activation and apoptosis[J].Eur J Immuno, 2002,32(3):783-792.
[19] Triantafilou K, Hughes T R, Triantafilou M,etal. The complement membrane attack complex triggers intracellular Ca2+fluxes leading to NLRP3 inflammasome activation[J].J Cell Sci, 2013,126(Pt 13):2903-2913.
[20] Qiu W, Zhou J, Zhu G,etal. Sublytic C5b-9 triggers glomerular mesangial cell apoptosis via XAF1 gene activation mediated by p300-dependent IRF-1 acetylation[J].Cell Death Dis, 2014,5:e1176.
[21] Huber-Lang M, Sarma J V, Zetoune F S,etal. Generation of C5a in the absence of C3: a new complement activation pathway[J].Nat Med, 2006,12(6):682-687.
[22] Monk P N, Scola A M, Madala P,etal. Function, structure and therapeutic potential of complement C5a receptors[J].Br J Pharmacol, 2007,152(4):429-448.
[23] Xu G L, Chen J, Yang F,etal. C5a/C5aR pathway is essential for the pathogenesis of murine viral fulminant hepatitis by way of potentiating Fgl2/fibroleukin expression[J].Hepatology, 2014,60(1):114-124.
[24] Guo R F, Riedemann N C, Ward P A. Role of C5a-C5aR interaction in sepsis[J].Shock, 2004,21(1):1-7.
[25] Riedemann N C, Guo R F, Laudes I J,etal. C5a receptor and thymocyte apoptosis in sepsis[J].FASEB J, 2002,16(8):887-888.
[26] Guo R F, Huber-Lang M, Wang X,etal. Protective effects of anti-c5a in sepsis-induced thymocyte apoptosis[J].J Clin Invest, 2000,106(10):1271-1280.
[27] Smith P D, Mount M P, Shree R,etal. Calpain-regulated p35/CDK5 plays a central role in dopaminergic neuron death through modulation of the transcription factor myocyte enhancer factor 2[J].J Neurosci, 2006,26(2):440-447.
[28] Tan Y, Dourdin N, Wu C,etal. Ubiquitous calpains promote Caspase-12 and jnk activation during endoplasmic reticulum stress-induced apoptosis[J].J Biol Chem, 2006,281(23):16016-16024.
[29] Nuzzi P A, Senetar M A, Huttenlocher A. Asymmetric localization of Calpain 2 during neutrophil chemotaxis[J].Mol Biol Cell, 2007,18(3):795-805.
[30] Perianayagam M C, Balakrishnan V S, King A J,etal. C5a delays apoptosis of human neutrophils by a phosphatidylinositol 3-kinase-signaling pathway[J].Kidney Int, 2002,61(2):456-463.
[31] Perianayagam M C, Balakrishnan V S, Pereira B J,etal. C5a delays apoptosis of human neutrophils via an extracellular signal-regulated kinase and bad- mediated signalling pathway[J].Eur J Clin Invest, 2004,34(1):50-56.
[32] Guo R F, Sun L, Gao H,etal. In vivo regulation of neutrophil apoptosis by C5a during sepsis[J].J Leukoc Biol, 2006,80(6):1575-1783.
[33] Parvathenani L K, Buescher E S, Chacon-Cruz E,etal. Type Ⅰ camp-dependent protein kinase delays apoptosis in human neutrophils at a site upstream of Caspase-3[J].J Biol Chem, 1998,273(12):6736-6743.
[34] Knepper-Nicolai B, Savill J, Brown S B. Constitutive apoptosis in human neutrophils requires synergy between calpains and the proteasome downstream of Caspases[J].J Biol Chem, 1998,273(46):30530-30536.
[35] Ramaglia V, Hughes T R, Donev R M,etal. C3-dependent mechanism of microglial priming relevant to multiple sclerosis[J].Proc Natl Acad Sci U S A, 2012,109(3):965-970.
[36] 赵海军,张万江,吴芳,等.补体C3a对人中巨噬细胞凋亡影响的实验研究[J].中国现代医学杂志,2010,20(4):548-551.
[37] 沈良贤,李敏,孙黔云,等.脂多糖激活补体诱导内皮细胞释放黏附分子和凋亡[J].中国药理学通报,2011,27(9):1245-1249.
[38] Li B, Lin H, Fan J,etal. CD59 is overexpressed in human lung cancer and regulates apoptosis of human lung cancer cells[J].Int J Oncol, 2013,43(3):850-858.
[39] 李先平,高美华,石学香,等.CD59位点短肽封条对HeLa细胞凋亡相关基因Caspase-3和Survivin作用[J].青岛大学医学院学报,2008,44(3):192-194.
[40] 唐艳,高美华,王秋波,等.肿瘤凋亡相关分子CD59突变体的构建及作用研究[J].免疫学杂志,2008,24(4):396-339.
[41] Kadenbach B, Arnold S, Lee I,etal. The possible role of cytochrome C oxidase in stress-induced apoptosis and degenerative diseases[J].Biochim Biophys Acta, 2004,1655(1-3):400-408.
[42] Rossi V, Bally I, Ancelet S,etal. Functional characterization of the recombinant human c1 inhibitor serpin domain: insights into heparin binding[J].J Immunol, 2010,184(9):4982-4989.
[43] Joseph K, Tholanikunnel B G, Kaplan A P. Factor xii-independent cleavage of high-molecular-weight kininogen by prekallikrein and inhibition by c1 inhibitor[J].J Allergy Clin Immunol, 2009,124(1):143-149.
[44] 吴志伟,林国生,陈敏,等.C1抑制物对过氧化氢诱导培养乳鼠心肌细胞凋亡的影响[J].武汉大学学报:医学版,2007,28(2):151-154,插4.
[45] 付金容,黎明江,周艳丽,等.补体1抑制剂抑制缺血心肌细胞凋亡及其机制[J].武汉大学学报,2014,35(5):670-673.