徐庆波 徐建华 杨丽娟
丙型肝炎病毒(HCV)是引起丙型肝炎的病原体。HCV感染是一个世界性的健康问题,其发病率逐年增高,且致病性强,病情隐匿,若不进行合理治疗极易转为慢性,甚至发展成肝硬化和肝细胞癌。这些病变的形成与其病原HCV的某些重要生物学特性相关[1-3]。HCV是RNA病毒,其基因组为单股正链RNA,其基因组分为5'非编码区(5'untranslated region,5'UTR)、编码区以及3'非编码区(3'UTR),其中5'UTR区、编码区中的核心区最保守,E1区、E2区最易变异,HCV高度变异性导致HCV存在不同的基因型和基因亚型[4-5]。HCV基因型可能与初始感染剂量、病毒复制效率、感染期限、宿主免疫反应、感染物的异质性有关[6-7]。
本研究收集了一汽总医院自2010年8月—2017年6月共76例抗-HCV和HCV-RNA均为阳性的患者的实验室HCV基因分型结果以及患者的临床资料进行分析,现将结果报告如下:
1.1 标本来源
标本来源于一汽总医院2010年8月—2017年6月76例住院患者,其中男47例,女29例,年龄10~78岁;患者抗-HCV和HCV-RNA均为阳性,并收集患者的临床资料。
1.2 方法
1.2.1 试剂 丙型肝炎病毒(HCV)基因分型检测试剂盒由上海之江生物科技股份有限公司提供。
1.2.2 仪器 核酸扩增仪采用美国Applied Biosystems 公司的ABI7500实时荧光定量PCR仪。
1.2.3 检测方法 采用丙型肝炎病毒分型特异性引物及荧光探针,应用一步法聚合酶链式反应(PT-PCR)结合Taqman技术对丙型肝炎病毒(HCV)进行Ⅰ型和非Ⅰ型的荧光PCR分型检测;循环条件:45℃×10 min;95℃×15 min;再按 95℃ ×15 s→58℃×60 s,循环40次,单点荧光检测在58℃,反应体系为25 μl反应体系,荧光通道检测选择:选用FAM通道。
1.3 统计学方法
采用Microsoft Excel表格,计数资料利用χ2检验。P<0.05,为差异有统计学意义。
2.1 HCV RNA基因分型情况
检测76例样本,共检出Ⅰ型基因30例,构成比39.5%;非Ⅰ型基因46例,构成比60.5%。
2.2 不同性别各基因型分布比较
其中Ⅰ型例数男性21例,非Ⅰ型例数男性26例,Ⅰ型男性占有率为44.7%。其中Ⅰ型例数女性9例,非Ⅰ型例数女性20例,Ⅰ型女性占有率为31.0%。χ2=1.35,P=0.246。
2.3 HCV感染病例与输血情况
在76例HCV感染者中,男性有输血史者25人,无输血史者22人,男性中有输血史者占感染者比例的53.2%;女性有输血史者15人,无输血史者14人,女性中有输血史者占感染者比例的51.7%。χ2=0.02,P=0.887。
许多研究表明,HCV基因分型对丙肝临床表现及肝病严重程度有影响,I型基因比非I型基因致病性强,尤其是Ib型基因致病性更强,导致I型患者的肝功能损害较非I型严重,I型患者HCV RNA含量、丙氨酸氨基转移酶均高于非I型患者[8]。不同基因型对治疗的反应存在差异。丙型肝炎防治指南中已明确指出丙型肝炎治疗前需要基因分型。本研究对76例样本进行准确的基因分型,为临床医生实行针对性的个体化用药提供参考。
3.1 通过结果2.1可以看出,76例HCV染者HCV基因型以非Ⅰ型为主(60.5%),其次为Ⅰ型(39.5%)。这与文献中关于HCV感染中,欧美国家多数为Ⅰ型感染,而亚洲国家以非Ⅰ型为主的结论是相吻合的[9]。也与我国HCV基因型以Ⅱ型为主,多种基因并存,混合型比例亦较高的结果一致[10]。
3.2 通过结果2.2可以看出男女各基因型分布差异无统计学意义。这与黄雪琼等[11]的报道是相一致的。
3.3 通过结果2.3可以看出,在76例HCV感染者中,40例患者既往有输血史,占感染人数的52.6%,说明HCV感染与输血有极大关系。HCV是引起输血后慢性肝炎及肝硬化的主要原因之一,50%~70%肝癌患者的抗-HCV呈阳性,我国肝癌患者肝组织中约10%可检测到有HCV RNA。丙型肝炎和乙型肝炎不同,HCV只感染黑猩猩,疫苗研制模型受到限制,目前仍然没有预防丙肝的疫苗,因此,我国预防丙型肝炎的重点应放在对献血员的管理上。严格筛选献血员:严格执行《中华人民共和国献血法》,执行无偿献血。通过检测血清抗-HCV、ALT和HCV RNA,严格筛选献血员;加强消毒隔离制度,防止医源性传播。这些与谢风[12]等人报道的输血是HCV感染的主要途径相一致。
通过结果2.3还可以看出男女两组丙肝患者有输血史的概率分别为53.2%和51.7%,两者的差别可能是抽样误差所致,亦可能是两组输血概率确有所不同。在结果2.3中通过χ2检验计算出来χ2=0.02,P>0.05,差异无统计学意义,可以认为有输血史者感染HCV的概率无性别差异。