2016年广西部分地区猪群五种疫病感染情况监测

韦显凯，闭璟珊，蒋晓霞，苏姣秀，张步娴，韩银华，郑列丰，郑 敏

（1. 广西大学，广西南宁 530004；2. 广西动物疫病预防控制中心，广西南宁 530001；3. 广西科技大学，广西柳州 545006）

2016年广西部分地区猪群五种疫病感染情况监测

韦显凯1，2，闭璟珊2，蒋晓霞3，苏姣秀2，张步娴2，韩银华2，郑列丰2，郑 敏2

（1. 广西大学，广西南宁 530004；2. 广西动物疫病预防控制中心，广西南宁 530001；3. 广西科技大学，广西柳州 545006）

为探明2016年广西猪群主要疫病的感染情况，从发病猪场和屠宰场共采集猪组织样品340份，应用RT-PCR方法检测猪瘟病毒（CSFV）､猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）、猪流行性腹泻病毒（PEDV），应用PCR方法检测猪圆环病毒2型（PCV2）和猪伪狂犬病病毒（PRV）｡结果显示，发病猪场中的CSFV、PRRSV、PEDV、PCV2和PRV感染率分别为1.97%､16.45%､0.00%､34.21%和3.95%，而屠宰场猪的感染率分别为0.53%､11.17%､0.00%､43.09%和0.00%｡对猪群的混合感染情况进行分析发现，PCV2和其它病原的混合感染率最高｡其中，发病猪场二重感染率最高的为“CSFV+PCV2”，为3.95%；其次为“PRRSV+PCV2”，为3.29%｡屠宰场二重感染率最高的是“PRRSV+PCV2”，为2.66%｡结果表明：临床健康屠宰猪群和发病猪群中的PCV2和PRRSV感染率较高，其中PCV2感染率最高，且常与CSFV和PRRSV发生混合感染；PRV和CSFV主要在发病猪中被检出；加强PCV2和PRV的监控，对控制猪群发病具有重要意义；应通过加强生物安全措施来净化PRRSV和PRV｡

猪群；传染病；流行病学；多重感染；调查

猪瘟（Classical swine fever，CSF）､猪繁殖与呼吸综合征（Porcine reproductive and respiratory syndrome，PRRS）､猪流行性腹泻病（Porcine epidemic diarrhea，PED）､猪圆环病毒相关疾病（Porcine circovirus associated diseases，PCVAD）和猪伪狂犬病（Porcine pseudorabies，PR）是近年来流行和危害较为严重的猪群疫病。这5种传染病中的任何一种一旦发生，都会给猪场造成很大的经济损失｡因此，在养猪生产上必须做好这5种传染病的防疫工作[1-3]｡

尽管养殖户对上述疫病的防控都很重视，很多猪场也采取了严格的疫苗免疫措施，但仍不能有效控制上述疫病的发生和流行｡为了解广西猪群主要疫病的流行情况，本研究小组采集了不同地区发病猪场和屠宰场的猪组织样品，应用RT-PCR和PCR方法进行这5种病的病原检测，分析其单一和多重感染情况，为广西猪群主要疫病的预防和控制提供依据。

1 材料与方法

1.1材料

按实验室病料样品采集的相关规定，从南宁市､柳州市､玉林市､博白县､灵山县等地的发病猪场，采集不同日龄病死猪的肺脏､脾脏和淋巴结组织样品共152份；从南宁市､柳州市､玉林市､博白县､灵山县等地的屠宰场，采集临床健康猪的肺脏､脾脏和淋巴结组织样品共188份｡将采集的样品送广西动物疫病预防控制中心。处理后取上清组织液，置于-70 ℃冰箱，冷冻保存备用｡

1.2方法

1.2.1引物设计与合成。参照标准合成特异性引物，采用RT-PCR进行CSF､PRRS､PED病原学检测，采用PCR方法进行PCVAD相关疾病和PR病原学检测。

1.2.2感染情况鉴定。同1份样品只检测到1种病原阳性的为单一感染，同时检测到2种病原阳性的为二重感染，同时检测到3种病原阳性的为三重感染｡

1.2.3数据分析方法。采用SPSS statistics 17.0，对数据进行统计分析。

2 结果与分析

对340份组织样品分别进行CSF、PRRS、PCVAD、PR和PED病原学检测（对应的病原分别为CSFV、PRRSV、PCV2、PRV和PEDV），依据检测结果，进行感染率、单一感染、二重感染以及多重感染的分析。

2.15种疫病的检测结果

在这5种疫病中，检出率最高的是PCV2，阳性率为39.12%；其次是PRRSV，阳性率为13.53%；再次是PRV和CSFV阳性率分别为1.76%和1.18%；最低的是PEDV，阳性率为0.00%｡PCV2在发病场和屠宰场的检出率分别为34.21%和43.09%，PRRSV的检出率分别为16.45%和11.17%，CSFV的检出率分别为1.97%和0.53%，差异均不显著（P＞0.05）｡PRV在发病场的检出率为3.95%，而在屠宰场为0.00%，差异显著（P＜0.05）（表2）｡结果表明，PCVAD、PRRS是目前猪群的主要疫病，其在健康猪群和发病猪群中均有较高的感染率，而PRV和CSFV主要在发病猪群中被检出｡

表2 CSF､PRRS､PCVAD､PR和PED 5种疫病的病原检测结果

2.2单一感染情况

PCV2的单一感染率最高，在发病场和屠宰场中分别为27.63%和40.43%，差异不显著（P＞0.05）。PEDV的单一感染率最低，在发病场和屠宰场中均为0.00%（表3）｡结果表明，PCV2在发病猪群，和健康猪群中的单一感染率均较高｡

2.3二重感染情况

在发病场中，PCV2和其他病原混合感染最为多见｡其中，感染率最高的是“CSFV+PCV2”，阳性率为3.95%；其次为“PRRSV+PCV2”，阳性率为3.29%｡屠宰场二重感染较多、阳性率最高的是“PRRSV+PCV2”，为2.66%；其次为“PRRSV+CSFV”，阳性率为0.53%（表4）｡在所有样品中，二重感染较多、阳性率最高的是“PRRSV+PCV2”。结果表明，在猪场中，“PRRSV+PCV2”混合感染最为普遍｡

表3单一感染情况（单位：份⁄%）

表4二重感染情况（单位：份⁄%）

2.4三重以上感染情况

三重感染在发病猪场和屠宰场中均未检测到，这是2015年以来连续2年检测不到三重感染情况。

3 讨论

2016 年，广西主要猪病疫情总体比较平稳，如PR，但部分疫病流行依然较为严重，给猪场造成的经济损失不容忽视。如，PRRS的危害有增无减，PED在一些地区有所反弹，CSF仍呈散发状态｡

本研究发现，无论在发病猪场，还是屠宰场，PCV2均有较高的感染率｡猪群中广泛存在的PCV2感染给养猪业的持续健康发展造成了很大危害｡PCV2是引起断奶仔猪多系统衰竭综合征（PMWS）的主要病原，可以破坏动物机体的免疫系统，使机体产生严重的免疫抑制，从而诱发多种细菌及病毒的混合感染与继发感染，给疾病的诊断和治疗带来较大困难｡疫苗免疫接种目前仍是防控PCV2感染的有效手段[4]。

PRRS 已成为我国以及全球养猪生产中最为棘手的疫病。PRRSV不断变异，新毒株不断出现[5-6]。因此，采取综合防控是控制 PRRS最明智的选择，尤其是猪场的生物安全｡我国 PRRS 临床症状越来越复杂，PRRSV的多样性日益剧增。加之养猪方式多样，猪场环境各不相同，猪场应结合自身实际情况和PRRS的发生状况，制定切实可行的综合防控措施，有条件的种猪场应采取检测与淘汰､闭群根除技术等，根除 PRRSV 并建立阴性种猪群[7]｡

PRV的传播途径是直接和间接接触传播，处于症状明显期的病猪是最危险的传染源。1头病猪可向外排出TCID50为105.3的病毒[8]｡病毒可经鼻液､口腔分泌物和呼吸道飞沫排出体外。猪只通过鼻部接触､摄入被污染的饲料和饮水等，均可造成病毒在猪场内部不同猪群或个体之间传播｡公猪感染后，可在精液中持续存活12 d。使用含病毒精液进行人工授精，可引起母猪感染，造成妊娠失败。因此，应通过血清学或病原学方法，及时检出和淘汰野毒感染的阳性猪｡育肥猪免疫抗体合格率低，多数为抗体阴性，群体免疫力差，是目前多数猪群感染PRV的风险点，其主要原因是免疫程序或免疫方式不合理｡王钊哲等[9]对规模猪场进行PRV净化，并对猪病料进行PCR检测，结果显示，2012—2015年PRV感染率呈逐年降低趋势，说明净化工作取得较好成效｡齐向涛等[10]对北疆地区3个规模猪场进行PRV净化，结果显示，PRV阳性率从净化前的32.8%降至9.03%。这些研究结果说明PRV净化是降低PRV野毒感染的主要途径。

CSF的检出率较低，在临床中零星散发。随着国家对CSF强制免疫的取消，存在CSF复发的风险，加强监测并预防很有必要。PED仍然是困扰产床阶段仔猪的主要疫病。然而在本研究中，病料和屠宰场样品中均未检出PEDV，这和采集的样品主要来源于中大型猪有较大关系，因此不能依据该结果确认这些地区猪群中不存在PEDV感染。

本次调查在发病猪场和屠宰场中均未检测到三重感染情况，这是自2015年以来连续2年未检测到该情况。相比2014年发病猪场“PRRSV+PEDV+PCV2”和“PRRSV+PCV2+PRV”的三重感染率均为2.29%，屠宰场“CSFV+PCV2+PRV”的三重感染率为0.67%[11]，广西猪群的三重感染情况得到有效控制。

[1] 张萍，董秀梅，魏萍. 病毒混合感染病例与猪四种疫苗免疫抗体效价关系分析[J]. 黑龙江畜牧与兽医，2016（2）：107-109.

[2] TONG G Z，ZHOU Y J，HAO X F，et al. Highly pathogenic porcine reproductive and respiratory syndrome，China[J]. Emerg Infect Dis，2007，13（9）：1434-1436.

[3]覃军，梁珠民，李军成. 规模化猪场主要疫病抗体监测与免疫效果分析[J]. 江苏农业科学，2016，43（10）：264-266.

[4] 王一平，郭龙军，唐青海. 猪圆环病毒2型疫苗的研究进展[J]. 畜牧兽医学报，2012，43（9）：1337-1345.

[5] 杨汉春. 2014 年猪病流行情况与 2015 年流行趋势及防控对策[J]. 猪业科学，2015（32）：38-40.

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[7] 周磊，杨汉春，姜平，等. 猪繁殖与呼吸综合征综合防控技术与应用[J]. 中国畜牧杂志，2015，51（6）：62-67.

[8] 赵德民，张中秋，沈建忠. 猪病学[M]. 9版. 北京：中国农业大学出版社，2008.

[9] 王钊哲，舒相华，杨亮宇，等. 云南省部分地区72家规模化猪场猪伪狂犬病净化效果分析[J]. 中国兽医学报，2017，37（4）：597-600.

[10] 齐向涛. 北疆部分地区规模化猪场猪伪狂犬病野毒感染流行病学调查[D].石河子：石河子大学，2014：46-47.

[11] 韦显凯，蒋晓霞，苏姣秀，等. 2014年广西部分地区常见猪群疫病感染情况监测分析[J]. 中国畜牧兽医，2016，43（4）：1079-1085.

（责任编辑：朱迪国）

Surveillance of Main Swine Diseases in Partial Areas of Guangxi in 2016

Wei Xiankai1，2，Bi Jingshan2，Jiang Xiaoxia3，Su Jiaoxiu2，Zhang Buxian2，Han Yinhua2，Zheng Liefeng2，Zheng Min2
（1. Guangxi University，Nanning，Guangxi 530004；2. Guangxi Animal Disease Prevention and Control Center，Nanning，Guangxi 530001；3. Guangxi University of Science and Technology，Liuzhou，Guangxi 545006）

To understand the current status of normal swine diseases in Guangxi，340 swine tissue samples were collected from clinically morbidity farms and slaughterhouses. CSFV，PRRSV and PEDV were detected by RT-PCR，and PCV2 and PRV were detected by PCR. The results showed that the infection rates of CSFV，PRRSV，PEDV，PCV2 and PRV in morbidity farms were 1.97%，16.45%，0.00%，34.21% and 3.95%，respectively，and these rates in the slaughterhouses were 0.53%，11.17%，0.00%，43.09% and 0.00%，respectively. The mixed infection situation of swine was analyzed，and it was found that the rate of PCV2 coinfection with other virus was the highest. In the morbidity farms，the highest rate of double infection was “CSFV+PCV2”，which was 3.95%，the second was“PRRSV+PCV2”，which was 3.29%. The highest rate of double infection in slaughterhouses was “PRRSV+PCV2”，which was 2.66%. The results indicated that the infection rates of PCV2 and PRSSV were higher，not only in morbidity farms，but also in slaughterhouses. Among them，the infection rate of PCV2 was the highest，and PCV2 coinfection with CSFV and PRRSV was universal. PRV and CSFV were detected mainly in diseased swine. It was important to enhance the surveillance of PCV2 and PRV for the control of swine disease incidence. PRRSV and PRV should be eliminated by strengthening biosafety measures.

swine；infectious diseases；epidemiology；multiple infection；investigation

S851.3

A

1005-944X（2017）08-0020-04

10.3969/j.issn.1005-944X.2017.08.005

公益性行业（农业）科研专项（201303041）；广西水产畜牧兽医科技推广应用项目（201633001）

郑 敏