桃仁、红花对UUO大鼠肾组织ILK、E-cad、FN和α-SMA表达的影响

2017-06-15 06:28:14李小波彭榜亚杨江权
遵义医科大学学报 2017年2期
关键词:桃仁肾小管单侧

李小波,彭榜亚,杨江权,陈 阳

(1.遵义医学院珠海校区 诊断学教研室,广东 珠海 519000;2.遵义医学院 生物化学和分子生物学教研室,贵州 遵义 563099;3.遵义医学院珠海校区 药学教研室,广东 珠海 519000)

基础医学研究

桃仁、红花对UUO大鼠肾组织ILK、E-cad、FN和α-SMA表达的影响

李小波1,彭榜亚2,杨江权2,陈 阳3

(1.遵义医学院珠海校区 诊断学教研室,广东 珠海 519000;2.遵义医学院 生物化学和分子生物学教研室,贵州 遵义 563099;3.遵义医学院珠海校区 药学教研室,广东 珠海 519000)

目的 探讨桃仁、红花及其药对对单侧输尿管梗阻(UUO)大鼠肾组织ILK、FN、α-SMA及E-cadherin表达的影响。方法 健康SD大鼠随机分为5组,每组6只,除正常组外,其余大鼠行单侧输尿管梗阻手术。正常组、模型组给予2 mL蒸馏水灌喂,桃仁组、红花组、桃仁+红花组分别给予6 g/(kg·d)的灌喂量。连续灌喂14 d后处死大鼠,取出手术侧肾脏,HE染色观察肾脏病理变化,qPCR和western blot检测肾组织中整合素连接激酶(integrin-linked kinase,ILK)、纤维连接蛋白(fibronectin,FN)、α-平滑肌激动蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)及E-钙黏蛋白(E-cadherin,E-cad)基因和蛋白表达。结果 肾脏组织形态学观察显示,与正常组相比,模型组大鼠梗阻侧肾脏,肾间质表现出明显肿胀,纤维化程度重;模型组的E-cad表达降低,ILK、FN及α-SMA的表达升高(P<0.05);与模型组相比,各治疗组的肾脏病理改变减轻,E-cad表达升高(P<0.05),ILK、FN及α-SMA的表达降低(P<0.05);且以桃仁+红花组的效果更佳。结论 桃仁、红花及其药对可通过升高E-cadherin和降低ILK、FN及α-SMA的表达来减缓肾间质纤维化,以桃仁-红花药对的效果更好。

桃仁;红花;单侧输尿管梗阻;整合素连接激酶

肾间质纤维化(renal interstitial fibrosis,RIF)是所有慢性肾脏疾病进展为慢性肾衰竭的共同通路和病理改变,其主要病理表现成纤维细胞增殖造成的大量基质蛋白积聚。肾小管上皮-间质转化(epithelial mesenchymal transition,EMT)是RIF的关键机制,即肾小管上皮细胞激活成为具有分泌和收缩能力的肌成纤维细胞(myofibroblast,MyoF),MyoF分泌大量的胶原沉积于肾间质,导致纤维化的发生。钙依赖性跨膜糖蛋白(E-cadherin,E-cad)是上皮细胞标志物,在肾小管上皮细胞转分化过程中,主要就是E-cad代表的肾小管上皮细胞减少,而α-平滑肌肌动蛋白(alpha-smooth muscle actin,α-SMA)标志的间质细胞增加[1]。整合素连接激酶(integrin linked kinase,ILK)是丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,不仅可加强整合素与纤维连接蛋白(Fibronectin,FN)的结合,调节由整合素介导的FN等细胞外基质(extracellular matrixc,ECM)的聚集,而且对肾小管上皮细胞EMT起着重要调节作用[2-3]。

桃仁-红花药对是传统的活血化瘀药物,研究表明桃仁、红花可以延缓多脏器纤维化[4-6],但是两者相须配伍是否可以加强这种作用,鲜有报道,本实验以单侧输尿管梗阻(UUO)大鼠为研究对象,观察桃仁、红花及其药对对UUO模型大鼠肾组织ILK、E-cadherin、FN、α-SMA表达的影响,进一步揭示桃仁、红花及其药对抗肾纤维化的作用机制是否与ILK诱导的EMT有关。

1 材料与方法

1.1 实验动物 健康清洁级雄性SD大鼠,10~12周龄,体重(200±20) g;购于广东省医学实验动物中心,许可证号:XK粤2013-0046。大鼠自由进食和饮水,温度(23±2)℃,湿度控制在40%~70%,采用交替灯光照射12 h,每笼子饲养6只。

1.2 药物与试剂 桃仁、红花颗粒剂购于江阴天江药业有限公司(产品批号:1307092、1207072)。Prime Script RT reagent kit和SYBR Premix EX Taq Ⅱ购自大连宝生物有限公司,批号为RR047A和RR820A; BCA蛋白定量试剂盒购自上海碧云天公司。兔抗大鼠ILK、E-cadherin、FN和α-SMA抗体购自武汉天鹰试剂公司,批号分别为:12955、20874、15613和14395。

1.3 仪器 奥林巴斯生物显微镜BX-43(日本OLYMPUS公司),PCR扩增仪7500(美国ABI公司)。

1.4 方法

1.4.1 UUO模型的制备 用戊巴比妥钠麻醉大鼠,脊背部左肋脊角处做一纵行切口,分离出输尿管并且结扎,即为单侧输尿管梗阻动物模型。

1.4.2 动物分组及实验 30只大鼠适应性喂养1周后随机分组:正常组、模型组、桃仁组、红花组和桃仁+红花组,每组6只。正常组、模型组于每日灌喂2 mL蒸馏水1次,桃仁组、红花组、桃仁+红花组(桃仁、红花比例为1∶1)按6 g/(kg·d)日将颗粒药稀释成2 mL,一次灌胃,手术次日开始灌喂,连续灌喂14 d,处死大鼠,取出肾脏。一部分肾脏用作HE染色切片观察,一部分用作qPCR和Western blot检测。

1.4.3 形态学观察及检测方法

1.4.3.1 HE病理切片观察 取出肾脏用4%多聚甲醛溶液固定,石蜡包埋并切片,将组织切片按常规方法进行HE染色,光镜观察肾小球、肾小管和间质的病理变化。显微镜400倍下连续记录不重叠10个视野的数值,小管间质损害的特征按Banff分级进行0~3+半定量计分:无变化评0分,轻度改变评1分(病变范围<25%);中度评2分(病变范围26%~50%);严重评3分(病变范围>50%)[7]。

1.4.3.2 qPCR检测ILK、FN、α-SMA及E-cadherin的基因表达 取80 mg肾组织用TRIzon法提取总RNA,按照试剂盒说明书进行cDNA 合成,作为模板,引物序列见表1,进行real-time PCR反应,反应体积为20 μL:cDNA 2.0 μL,上、下游引物各0.8 μL,2× SYBR Green PCR Master Mix 10 μL,ddH2O 6.4 μL。反应条件为第一步预变性:95 ℃,30 s,1个循环;第二步PCR反应:95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,40个循环。结果使用Bio-Rad CFX Manager荧光定量软件进行分析用公式2-△△Ct方法。

表1 引物序列

基因序列(5'-3')ILKForward:TTTTGCCGTGCTTCTGTGGReverse:CGTGGGGGGAAATACCTGE-cadherinForward:AGGTCGGTGCCCGTATTGReverse:TGGTCTTGGGGTCTGTGATGFNForward:GTTGGTTGCCCTGTTCTGCReverse:GGCTACCTGTGTTTCCCTTTGα-SMAForward:CTGAACCCTAAGGCCAACCGReverse:CTCCAGAGTCCAGCACAATACCGADPHForward:CATCAACGACCCCTTCATTGReverse:GAAGATGGTGATGGGTTTCC

1.4.3.3 Western blot 取80 mg大鼠肾脏组织加入1 mL裂解液,12 000 rmp离心10 min,取上清,根据BCA蛋白定量试剂盒测定蛋白浓度,加20 μL蛋白上样在10% SDS-PAGE中电泳,湿转法将蛋白转移至PVDF膜,将膜浸在封闭液中低速摇匀封闭2 h,将膜取出直接放入一抗中,4 ℃封闭过夜;PBST洗膜,5 min×10次;将膜转入二抗中,室温,孵育1~2 h;PBST洗膜, 5 min×10次;用化学发光法(ECL)显影。

2 结果

2.1 大鼠肾脏形态学及病理切片观察 正常组肾脏未见病理改变,模型组肾小管上皮细胞大量萎缩、变性,间质内大量炎性细胞浸润,呈现明显的间质纤维化。与正常组比较,模型组HE评分明显升高 (P<0.05) ,说明造模成功,大鼠肾脏出现肾间质纤维化改变。与模型组比较,各治疗组HE评分明显降低 (P<0.05),说明桃仁、红花对肾间质纤维有确切的防治作用。并且以桃仁、红花药对治疗组效果最佳,说明联合使用较单独使用效果更佳(见图1和表2)。

A:正常组;B:模型组;C:桃仁组;D:红花组;E:桃仁+红花药对组。图1 大鼠肾脏病理切片观察(HE,×400)

组别肾间质损伤评分正常0.06±0.03模型2.82±0.43#桃仁2.34±0.45*红花2.32±0.33*桃仁+红花1.91±0.32*

与正常组比较,#P<0.05;与模型组比较,*P<0.05。

2.2 桃仁、红花及其药对调节ILK、FN、α-SMA及E-cadherin基因表达 与正常组相比,模型组的ILK、FN、α-SMA的表达较高(P<0.05),E-cadherin的表达较低(P<0.05);与模型组相比较,各治疗组的ILK、FN、α-SMA的表达下降(P<0.05),E-cadherin的表达上升(P<0.05,见图2)。

与正常组比较,#P<0.05;与模型组比较, *P<0.05。 图2 桃仁、红花调节ILK、FN、α-SMA及E-cadherin基因表达

2.3 桃仁、红花及其药对调节ILK、FN、α-SMA及E-cadherin蛋白表达 与空白组比较,模型组大鼠肾组织ILK、FN、α-SMA蛋白表达均明显上升(P<0.05),E-cadherin蛋白表达明显下降(P<0.05)。与模型组相比,各治疗组下调ILK、FN、α-SMA蛋白表达,升高E-cadherin蛋白表达(P<0.05)。但桃仁-红花药对效果更好(见图3和图4)。

与正常组比较,#P<0.05;与模型组比较,*P<0.05。 图3 桃仁、红花调节ILK、FN、α-SMA、E-cadherin蛋白表达

图4 Western blot检测蛋白表达条带图

3 讨论

方剂配伍讲究君臣佐使,整合多种药物针对病变发挥出更加全面而副作用小的疗效,相比单味中药,方剂中的药物不仅仅是简单的叠加,而是发生了复杂的效应。深入研究方剂配伍是中医发展的关键问题之一,探明中医方剂的配伍疗效机制,有利于中医药走向世界,更好地为患者服务。药对是中医临床常用的相对固定的两味中药的配伍组合,是中药配伍的基本形式,传统中医认为两味中药配伍可相须、相对、相使,但是缺乏现代医学的理论研究。桃仁-红花是相须配伍,用于治疗血瘀证,可活血化瘀,传统医学认为两者同时应用于患者,可以加强治疗的效果。李均等[8-9]观察了桃仁对UUO模型大鼠的影响,发现桃仁可以减轻炎性浸润,减缓纤维化,减少结缔组织生长因子(connective tissue growth factor,CTGF)、转化生长因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)表达,提示桃仁可以降低TGF-β、CTGF的过度表达,减缓肾间质纤维化病程进展。许庆友等[10-11]观察红花对UUO模型大鼠肾间质纤维的影响,发现红花明显抑制肾小管上皮细胞增殖细胞核抗原(proliferating cell nuclear antigen,PCNA)、α-SMA和Ⅲ型胶原(collagen-Ⅲ,Col-Ⅲ)的表达,从而有效缓解肾间质的纤维化。孙时华等[12]运用红花的主要有效成分红花黄色素对UUO大鼠模型进行干预治疗,发现红花黄色素可降低肾间质中FN和Ⅰ型胶原(collagen-Ⅰ Col-Ⅰ)蛋白的表达,抑制细胞外基质在肾间质的堆积,延缓肾小管损伤及肾纤维化的进展。在临床使用中,桃仁、红花经常是以药对的形式出现在复方中,但已有研究并没有涉及到两者联合使用效果较单独使用是否有加强。ILK作为TGF-β下游重要的效应物,可诱导肾小管上皮细胞转分化,促进细胞外基质的沉积[13]。桃仁、红花及其药对是否通过减少ILK表达,而抑制肾小管上皮细胞转分化,延缓肾小管间质纤维化的进展,尚无报道。

本研究结果显示,UUO造模后第14日,正常组大鼠ILK、α-SMA和FN在肾组织无或仅微量表达,E-cad表达显著,而模型组大鼠ILK、α-SMA和FN表达增高,E-cad表达降低,说明模型组出现了明显的肾小管上皮细胞转分化,ILK可能参与了梗阻性肾间质纤维化的发生。而桃仁、红花组能有效降低ILK、α-SMA和FN在肾小管上皮细胞和间质中的表达,提高E-cad的表达。说明桃仁、红花可能是通过抑制ILK的表达,保护肾小管上皮细胞,防止其转分化,从而减少肌成纤维细胞的生成,减低细胞外基质的聚集。各治疗组均能降低ILK、α-SMA、FN的表达,升高E-cad表达,但未能到正常组的水平,说明桃仁、红花及其药对只能延缓疾病的发展,并不能完全阻止RIF的发生发展;研究显示桃仁-红花药对较单个药物能够更好延缓肾间质纤维化,说明桃仁-红花药对相须配伍有利于药效的发挥。药对作用的机制研究为进一步研究其在复方中的作用奠定基础,有助于我们继续探讨桃仁-红花药对在临床慢性肾脏疾病的治疗作用。

综上所述,桃仁、红花及其药对能降低ILK、FN、α-SMA的表达,升高E-cadherin的表达,可能是其延缓肾间质纤维化进展的作用机制。本研究为中医药防治慢性肾功能衰竭提供了新的思路;并且通过对桃仁-红花药对的研究,为中药组方提供依据,为进一步研究相关复方的作用机制奠定基础。

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[收稿2017-01-05;修回2017-03-10]

(编辑:王静)

Effects of Persicae Semen and safflower on the expressions of ILK,E-cad,FN and α-SMA in the renal tissue of unilateral ureteral obstruction rats

LiXiaobo1,PengBangya2,YangJiangquan2,ChenYang3

(1.Department of Diagnostics,Zhuhai Campus of Zunyi Medical University,Zhuhai Guangdong 519000,China; 2.Department of Biochemistry and Molecular Biology,Zunyi Medical University,Zunyi Guizhou 563099,China; 3.Department of Pharmacy,Zhuhai Campus of Zunyi Medical University,Zhuhai Guangdong 519000,China)

Objective To investigate the effects of Persicae Semen and safflower on the expressions of integrin-linked kinase (ILK),fibronectin (FN),α- smooth muscle actin (α-SMA) and E-cadherin (E-cad) mRNA and protein in renal interstitial fibrosis (RIF) of obstructed kidneys in a unilateral ureteral obstruction (UUO) rat model.Methods Thirty SD rats were randomly divided into 5 groups:normal group,model group,Persicae Semen group,safflower group,Persicae Semen & safflower group.Normal and model groups were gavaged with steamed water and other treated groups were gavaged with relevant drugs.Rats were sacrificed and the specimens were collected on 14 d after UUO.HE staining was used to observe the pathological changes.ILK,E-cad,FN and α-SMA expressions were measured by qPCR and western blot analysis.Results The most obvious pathological changes were shown in the model group and Persicae Semen + safflower attenuated these pathological changes.Compared with the nomal group,the expressions of ILK,FN,and α-SMA were significantly increased,and E-caderin expression was decreased in the model group (P<0.05).Compared with the model group,the expressions of ILK,FN,and α-SMA were obviously decreased (P<0.05),and E-caderin expression was increased in all treated groups,with the better effects in Semen + safflower group.Conclusion Persicae Semen and safflower produces protection on renal function and renal tubular in UUO rat.This mechanisms might be related to increasing E-cadherin expression and decreasing the expressions of ILK,FN and α-SMA.

Persicae Semen; safflower; unilateral ureteral obstruction; integrin-linked kinase

贵州省联合基金资助项目(NO:黔科合J字LKZ[2010]37)。

陈阳,男,博士,教授,硕士生导师,研究方向:中药药理学,E-mail:chenyang197732@hotmail.com。

R285.5

A

1000-2715(2017)02-0134-05

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