王继勇,杨子陆,陈加立,江英杰
(武汉理工大学 化学化工与生命科学学院,武汉 430070)
一株产脲酶菌株的分离及其固化土壤中Cd2+的研究
王继勇,杨子陆,陈加立,江英杰
(武汉理工大学 化学化工与生命科学学院,武汉 430070)
指出了微生物诱导碳酸盐成矿(MICP)技术可有效修复镉污染土壤.从土壤中分离出了一株高效产脲酶菌株,该菌株对10 mg Cd2+/kg模拟污染土壤的Cd2+固化率为67.7 %.X射线衍射(XRD)、能谱分析(EDS)、扫描电子显微镜(SEM) 和红外光谱(IR)等分析显示:产物为碳酸镉和碳酸钙,碳酸盐结晶方式为晶格掺杂.
碳酸盐矿化菌株;碳酸镉
1.1 仪器和试剂
SM-IT300型扫描电子显微镜(日本电子株式会社),Nicolet6-700型傅里叶变换红外光谱仪(美国Thermo),MD3X射线能谱仪(上海沃埃得),A360型紫外-可见分光光度计(上海翱艺仪器),PH10S-E笔式酸度计(上海精密仪器仪表),GGX-100火焰原子吸收分光光度计(北京海光仪器).
将1 mg干燥样品与100 mg KBr(光谱纯)磨细混匀,压制成片检测.CdCl2·2.5H2O、KH2PO4、NaCl、苯酚红(酚红)、无水乙醇、蛋白胨、葡萄糖、尿素均为AR级,蛋白胨和酵母浸出粉BR级,试剂均购自国药集团化学试剂有限公司.
1.2 实验材料
采集武汉理工大学花木种植园深度5~20 cm处的土壤样本,富集培养后从富集液中分离具有产脲酶能力的菌株,培养24 h后检测菌浓度(OD600)和氨氮含量,选取产脲酶能力最强的菌株.
使用产脲酶菌株筛选分离培养基、生长培养基和LB培养基(配方略).取土壤试样5 kg,去除大颗粒杂质后自然风干,向风干后土壤中加入适量0.5 mo1/L的CdCl2溶液,使土壤中镉含量为10 mg/kg.
1.3 菌株培养与检测
将产脲酶菌株生长培养基在121℃灭菌30 min,从保存产脲酶菌株的LB斜面上挑取部分菌苔,接种到灭菌后的150 mL培养液中,置于150 r/min、37℃的恒温摇床中培养72 h,测量培养液的OD600和pH值,采用二甲氨基苯甲醛显色分光光度法检测培养液中尿素含量[9].菌株产脲酶能力以培养液中氨氮含量计,氨氮含量检测选用苯酚钠-次氯酸钠比色法[10,11].
称取1 g土壤,加入10 mL去离子水,搅拌均匀后放置5 min,检测浸提液的pH值.参照王瑞兴等[12]的实验方法检测土壤中Cd2+含量.
1.4 细菌诱导土壤中Cd2+矿化
在5 kg镉含量为10 mg/kg的模拟污染土壤中,每天加入100 mL 5 mo1/L尿素溶液和100 mL 培养48 h的菌液,每12 h检测1次土壤pH值和Cd2+含量,直至土壤的pH值稳定.选取实验土壤中板结土壤颗粒于60℃干燥2 h后备用.
1.5 土壤中矿化产物的分析
使用SEM、XRD、IR、EDS等技术分析土壤中矿化产物.
2.1 产脲酶菌株的生长特性及产酶活性
图1 菌株UR-2的生长曲线及培养中各参数变化Fig.1 Growth curve and various parameter changes of UR-2 strain during cultivation
2.2 产脲酶菌株矿化土壤中Cd2+进程
实验土壤pH值和Cd2+含量的变化见图2.1 d后细菌适应土壤环境并大量繁殖,开始水解尿素,土壤pH值在5 d 内迅速从7.02增至8.35,随着营养物质的消耗,土壤pH值稳定在约8.61(图2a).土壤中Cd2+含量随土壤pH值上升逐渐减小.0~1 d内Cd2+含量基本无变化;1~5 d内,由于尿素的快速水解和土壤pH值升高,Cd2+含量迅速下降并稳定在3.23 mg/kg;10 d后Cd2+固化率为67.7%,说明UR-2对土壤Cd2+具有较强的固化能力(图2b).许燕波等[8]的碳酸盐矿化菌对污染土壤Cd去除率为51%,修复周期为7 d;王瑞兴等[12]的碳酸盐矿化菌A对土壤Cd去除率为75.5 %,修复周期为10 d;故菌株UR-2在镉污染土壤治理中具有一定潜能.
图2 菌株UR-2固化进程中土壤pH及其Cd2+含量变化Fig.2 Content changes of Cd2+ ion and pH changes during soil curing process by urease-producing bacteria UR-2
2.3 矿化产物XRD分析
2θ/(°)1) CdCO3;2) CdCO3/CaCO3;3) CaCO3
2.4 矿化产物SEM分析
a)×50,000倍矿化产物;b)×200,000矿化产物
2.5 矿化产物IR分析
矿化产物的红外光谱分析(IR)谱图见图5.图5中1639 cm-1处和1034 cm-1处分别为蛋白酰胺I带和II带的CO基振动吸收峰,证明细菌细胞壁通过CO基团吸附了Cd2+、Ca2+.797 cm-1处出现的双峰吸收峰为Si—O—Si的振动,是土壤石英的特征峰;537 cm-1处的吸收峰为Si—O—Al、Si—O—Mg的弯曲振动[13],显示细菌吸附在了土壤颗粒中的SiO2上.721 cm-1处吸收峰为Cd—O和Ca—O振动叠加,两处为矿化产物的特征峰,1395 cm-1、860 cm-1处吸收峰为CaCO3和CdCO3晶体中C—O基团的弯曲振动,两处吸收峰明显,说明矿化产物中碳酸盐含量较多,与XRD谱图结果一致.
σ/cm-1
2.6 矿化产物EDS分析
分析图4a细菌周围矿化产物的EDS谱图见图6.由图6可见,矿化产物中含有Cd、Ca、Al、Si、Fe、K等金属元素.实验土壤为红棕壤, Ca2+含量较少,Fe3+含量较高;Fe含量为3.32%(以下均为原子百分比),Ca为0.62%,验证了实验土壤的种类.同时,矿化产物中Ca含量为0.62%,Cd为3.94%,说明Cd含量高于Ca,除了土壤中Cd含量为10 mg/kg外,相比于离子半径为9.9×10-9cm的Ca2+,离子半径为9.7×10-7cm 的Cd2+与细菌的络合强度更大,Cd2+在细菌细胞壁上的有效结合位点更多,因而矿化产物中Cd元素含量较高.
图6 矿化产物的EDS图谱Fig.6 The EDS patterns of mineralized products
Kumari等[14]提出:在产脲酶微生物作用下,镉污染土壤过程中的Cd2+与Ca2+一般以晶格掺杂或单一相CdCO3沉积在单一相CdCO3表面的方式形成共沉淀.为确定CdCO3和CaCO3的结晶方式,使用X射线能谱仪元素分布(EDS-mapping)对矿化产物进行分析,结果见图7.由图7可见,矿化产物中Cd、Ca元素互相掺杂,Cd2+与Ca2+以晶格掺杂的方式形成了共沉淀,由于CdCO3和CaCO3的结晶均以细菌细胞壁上的Cd2+、Ca2+吸附位点展开,但细菌对两种金属阳离子的吸附无选择性,导致Cd2+、Ca2+的结晶位点相邻、相对甚至重叠,形成的CdCO3和CaCO3晶体互相掺杂.
a) 电子图像;b) EDS分层图像;c) Ca Kα1;d) Cd Lα1
(1)从湖北省红棕壤中分离出一株高效产脲酶菌株UR-2,生长周期为64 h.该菌株生长过程中分泌的脲酶,对尿素水解率为95.4%,培养液pH达9.15.
(2)投加菌株UR-2可有效提高土壤pH,Cd2+的固化去除率为67.7%,该菌株在镉污染土壤治理中具有一定的潜能.
(3)矿化产物主要为CdCO3和CaCO3,分布在细菌周围,CdCO3和CaCO3为粒径不均匀的椭球形颗粒,细菌细胞壁部分基团络合吸附了Ca2+、Cd2+.
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Isolation of A Urease-producing Bacterium and Its Curing Function of Cd2+in Soil
WangJiyong,YangZilu,ChenJiali,JiangYingjie
(School of Chemistry and Life Science,Wuhan University of Technology, Wuhan 430070)
Microbial induced carbonate mineralization (MICP) is an effective way to repair cadmium polluted soil.A highly efficient urease-producing bacterium was isolated from soil and the curing rate of 10 mg/kg soil Cd2+ion was determined as 67.7%.XRD, EDS, SEM and IR results showed that the sediments were cadmium carbonate and calcium carbonate, which were formed through lattice doping crystallization.
carbonate mineralization bacteria;cadmium carbonate
2016-12-03
王继勇(1966-),男,副教授,博士,研究方向:土壤重金属污染复,E-mail:wangjiyong66@sina.com
国家自然科学基金资助项目(46120511)
X131.3;S154.3
A
1672-4321(2017)01-0017-04