李嘉欣,钱多,解彩霞,苏燕*
(1.包头医学院生物化学与分子生物学教研室,内蒙古包头 014060;2.包头市第四医院检验科,内蒙古包头 014030)
维生素C对红细胞氧化损伤保护作用研究
李嘉欣1,钱 多2,解彩霞1,苏 燕1*
(1.包头医学院生物化学与分子生物学教研室,内蒙古包头 014060;2.包头市第四医院检验科,内蒙古包头 014030)
为了利用血红蛋白释放试验(HRT)检测生理浓度维生素C(VC)对生理浓度过氧化氢(H2O2)氧化损伤后红细胞的保护作用,用终浓度为0、0.15、0.3、0.4、0.6、0.7、0.85 mmol/L的VC溶液处理红细胞悬液并进行HRT。再分别用0、1.25、2.50、3.75、5.00 mL/L的H2O2溶液处理0.4 mmol/L VC作用后红细胞悬液(VC保护组)和VC未作用的红细胞悬液(对照组),测定红细胞相对溶解度。结果表明,VC达到生理浓度时,血红蛋白再释放量逐渐减弱;VC保护组红细胞相对溶解度与对照组差别不大。说明生理浓度的VC能减弱HRT的血红蛋白再释放,降低红细胞破膜率,但不能显著降低H2O2对细胞膜的氧化损伤。
维生素C;血红蛋白释放试验;过氧化氢;氧化损伤
维生素C(vitamin C, VC)是水溶性抗氧化物。已有研究表明,高浓度VC能够有效维持红细胞的功能和膜的完整性[1],避免氧化剂对红细胞的损伤。过氧化氢(H2O2)是体内产生的一种活性氧,如果不被及时清除,可以引发红细胞膜脂质过氧化,导致红细胞膜脂质、蛋白质和血红蛋白(hemoglobin,Hb)的结构改变,继而引起红细胞氧化溶血[2]。2007年,本研究组在进行1例轻型β-地中海贫血患者的红细胞电泳过程中偶然发现了Hb再释放现象,依此创建了血红蛋白释放试验(hemoglobin releasing test,HRT)[3-5],并证实再释放的Hb是与膜结合的Hb[6]。本研究旨在通过HRT检测生理浓度VC作用后Hb再释放变化,探讨生理浓度VC对红细胞膜的保护作用。
1.1 材料
1.1.1 血液标本 60份正常成人新鲜肝素抗凝静脉血,取自包头市第四医院检验科的年轻体检者。4℃保存,24 h内检测。
1.1.2 主要仪器与试剂 高速离心机,德国Eppendorf公司产品;全波长多功能酶标仪,美国Thermo公司产品;水平电泳槽(DYY-III型)、稳压稳流电源(DYY-2C),北京市六一仪器厂产品;17 cm×17 cm玻璃板等。EDTA、30%过氧化氢、硼酸、乙醇、四氯化碳、Tris、淀粉、氨基黑、冰醋酸等均为国产分析纯;琼脂糖,西班牙进口分装;维生素C注射液,0.25 g/mL,瑞阳制药有限公司产品。
1.2 方法
1.2.1 红细胞悬液和溶血液的制备 按照本实验室常规方法制备红细胞悬液和溶血液[7],分别用终浓度为0、0.15、0.3、0.4、0.6、0.7、0.85 mmol/L的VC溶液处理红细胞悬液并进行HRT。再将红细胞悬液分为2组,每组5份。VC保护组加入等体积VC至终浓度为0.4 mmol/L,作用2 h后,两组分别加入0,1.25、2.50、3.75、5.00 mL/L的等体积H2O2作用2 h。
1.2.2 血红蛋白释放试验 按照本实验室常规方法配制淀粉琼脂糖混合凝胶[7],分别吸取各样品红细胞悬液10 μL加在1 cm×0.2 mm 滤纸条上,再依次插入凝胶,第1次电泳120 V,65 min,断电5 min,120 V再次电泳60 min。泳毕,将胶板浸入氨基黑10 B中染色过夜,次日用50 g/L冰醋酸溶液反复漂洗至背景无色,观察结果并拍照留图。
1.2.3 红细胞相对溶解度 经H2O2处理2 h后的样品以3 000 r/min离心5 min,各取50 μL上清液,用生理盐水稀释6倍,测定540 nm处的吸光度,以溶血液50倍稀释液的吸光度作为参照吸光值,计算各样品的相对溶解度。
1.2.4 统计学处理 数据结果用平均数±标准差表示,采用Graphpad Prism 5.0软件处理,用Two-way Anova检验分析,P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 不同浓度VC作用后红细胞悬液的血红蛋白释放比较
随着VC浓度逐渐升高,到达生理浓度(0.3、0.4、0.5 mmol/L)后,红细胞再释放量逐渐减弱,当VC浓度超过生理浓度,达到0.6 mmol/L时,再释放量增多,VC浓度继续升高时,再释放量又呈现降低趋势(图1、图2)。
1~7.0、0.15、0.3、0.4、0.6、0.7、0.85 mmol/L维生素C
1-7.0,0.15,0.3,0.4,0.6,0.7,0.85 mmol/L vitamin C
图1 不同浓度VC作用后红细胞悬液的Hb再释放
Fig.1 Hb release of erythrocytes suspension treated by different concentrations of VC
图2 凝胶电泳图谱中释放Hb的半定量分析
2.2 红细胞相对溶解度
2.2.1 参照吸光值 溶血液的50倍稀释液在540 nm处4次测得的吸光值平均值为0.626,以此为参照吸光值。相对溶解度=吸光值/参照吸光值×100%。
2.2.2 不同浓度过氧化氢处理后对红细胞膜的作用 用等体积0、1.25、2.50、3.75、5.00 mL/L的H2O2处理VC保护组和对照组红细胞悬液,结果显示,无H2O2处理时,VC保护组破膜程度低于对照组(P<0.05),差异显著。随H2O2浓度增大,对照组破膜率虽有增强,但变化不明显;VC保护组破膜率较无H2O2处理时增强(P<0.05),差异显著,但变化并不随H2O2浓度的增大而改变,也没有明显低于对照组,两组破膜率均在8.5%左右(图3)。
图3 不同浓度H2O2处理红细胞对细胞膜的相对溶解度
红细胞血红蛋白释放试验(HRT)是将未裂解的完整红细胞悬液借助滤纸片加在淀粉-琼脂糖混合凝胶中进行电泳,电泳过程中进行“通电-断电-再通电”,就会出现Hb的再释放区带。在前期试验中,研究了高浓度VC对氧化损伤红细胞的保护作用,结果显示,高浓度VC对红细胞膜氧化损伤具有保护作用,并能减弱Hb再释放,降低氧化损伤后红细胞的破膜率,发挥了VC对红细胞膜的保护作用[8]。本研究进一步将HRT应用于观察生理浓度VC对红细胞氧化损伤的保护作用。HRT结果表明,当无H2O2存在时,VC浓度到达生理浓度时,能够降低Hb再释放量;生理浓度VC作用后的红细胞悬液的相对溶解度也低于对照组,说明缺乏VC会降低红细胞膜的稳定性,增大破膜率。当VC浓度超过生理浓度继续升高时,Hb再释放量呈现不稳定增高或降低,原因尚不明确,有待于进一步增加样本量进行统计学分析。
机体氧化代谢产生的活性氧包括超氧阴离子(O2-)、H2O2、羟自由基(OH·)、单线态氧(1O2)等[9]。适量的活性氧是细胞信号转导的通路,而过量的活性氧则可导致DNA突变,蛋白质结构和功能的改变,细胞膜脂质的过氧化损害,以致造成机体免疫损伤[10-11]。红细胞内有多种抗氧化成分,包括NADH、NADPH、谷胱甘肽等,它们与VC一起对抗细胞的各种活性氧,保护细胞膜蛋白、Hb和酶蛋白的巯基等不被氧化,从而维持红细胞的正常功能。本研究表明,向红细胞悬液中加入生理浓度范围内的H2O2作用时,VC保护组破膜率与对照组相比并没有明显差别,且与H2O2浓度没有相关性,说明在生理浓度条件下,单纯的添加VC不能明显改变氧化剂对红细胞膜的氧化损伤作用。在红细胞的抗氧化体系中,VC是否与其他抗氧化成分相互作用,提高红细胞自身的抗氧化能力,值得进一步研究。
[1] 詹 彤,陶 靖,唐荣才,等.维生素C对人全血红细胞的抗氧化保护作用[J].中国实验血液学杂志,2005,13(6):1106-1108.
[2] 刘慧明,丁 航,侯 敢.槲皮素对过氧化氢诱导的人红细胞过氧化损伤的抑制作用[J].广东医学院学报,2003,21(4):317-318.
[3] 秦文斌,高丽君,苏 燕,等.血红蛋白释放试验与轻型β-地中海贫血[J].包头医学院学报,2007,23(6):561-563.
[4] Su Y,Shao G,Gao L,et al.RBC electrophoresis with discontinuous power supply-a newly established hemoglobin release test[J].Electrophoresis,2009,30(17):3041-3043.
[5] Kurien B T,Scofield R H.Protein electrophoresis:Methods in molecular biology:Interactions of hemoglobin in live red blood cells beasured by the electrophoresis release test[M].New York:Humana Press,2012.
[6] 魏春华,苏 燕,李晓晶,等.不同浓度过氧化氢处理红细胞对血红蛋白释放的影响[J].动物医学进展,2014,35(3):64-67.
[7] 秦文斌.红细胞内血红蛋白的电泳释放——发现和研究[M].北京:科学出版社,2015.
[8] 李嘉欣,解彩霞,钱 多,等. 利用血红蛋白释放试验研究维生素C对红细胞氧化损伤的保护作用[J]. 动物医学进展,2016,37(1): 22-25.
[9] 陈红兵,龙 苹.早产儿红细胞中氧化剂和抗氧化剂的时序性变化及其对策[J].医学综述,2008,14(21):3214-3218.
[10] Casado A,Torre R,Lopez-Fernandez M E.Copper/ zinc superoxidedism utase activity in new borns & young people in Spain[J].Indian J Med Res,2007,125(5):655-660.
[11] Cazzola R,Rondanelli M,Russo-Volpe S,et al.Decreased membrane fluidity and altered susceptibility to peroxidation and lipid composition in overweight and obese female erythrocytes[J].J Lipid Res,2004,45(10):1846-1851.
Protective Effect of Vitamin C on Oxidative Damage of Erythrocytes
LI Jia-xin1, QIAN Duo2, XIE Cai-xia1, SU Yan1
(1.DepartmentofBiochemistryandMolecularBiology,BaotouMedicalCollege,Baotou,InnerMongolia,014060,China; 2.ClinicalLaboratoryofTheFourthHospitalofBaotou,Baotou,InnerMongolia,014030,China)
In order to use hemoglobin releasing test (HRT) to detect the protective effect of physiological concentration of vitamin C on erythrocytes treated by physiological concentration of hydrogen peroxide (H2O2), The final concentrations of 0, 0.15, 0.3, 0.4, 0.6, 0.7, 0.85 mmol/L vitamin C solution, were used to treat erythrocyte suspensions and HRT was conducted.Then 0, 1.25,2.50,3.75,5.00 mL/L H2O2solutions were used to treat 0.4mmol/L vitamin C treated erythrocyte suspension (vitamin C protection groups) and vitamin C untreated erythrocyte suspension (control groups) respectively,and the relative solubility of erythrocytes was measured.The results showed that the release of hemoglobin decreased gradually when the concentration of vitamin C reached to the physiological level.The relative solubility of erythrocytes in vitamin C protection groups had no significant difference from that of the control groups.It showed that the physiological concentration of vitamin C can decrease the release of hemoglobin by HRT,and decrease the rate of erythrocyte membrane breaking rate,but it can not significantly reduce the oxidative damage of H2O2on the cell membrane.
vitamin C;hemoglobin releasing test;hydrogen peroxide;oxidative damage
2015-10-13
国家自然科学基金项目(81160214);内蒙古自然科学基金项目(2010BS1101);内蒙古自治区高等学校科学研究项目(NJZY14265);秦文斌科技教育基金项目(201309);内蒙古卫生厅科技计划项目(2010056)
李嘉欣(1982-),女,辽宁鞍山人,讲师,硕士,主要从事血液保护研究。*通讯作者
S852.21
A
1007-5038(2016)05-0060-03