谢闺娥, 杜晶春,徐 霞,董桂兰
(1.广州医科大学 金域检验学院,广东 广州 510182;2.广州大学 门诊部,广东 广州 510006)
扁蒴藤素对人乳腺癌MCF-7细胞生长和凋亡的影响及机制研究
谢闺娥1, 杜晶春1,徐霞1,董桂兰2
(1.广州医科大学 金域检验学院,广东 广州 510182;2.广州大学 门诊部,广东 广州 510006)
[摘要]目的研究扁蒴藤素对乳腺癌细胞MCF-7生长和凋亡的影响及其机制。 方法用MTT法检测扁蒴藤素对MCF-7细胞细胞生长的影响;用Annexin V-FITC/PI双染及TUNEL染色检测扁蒴藤素对MCF-7凋亡的诱导作用;用western blot分析扁蒴藤素作用后,凋亡相关因子Bcl-2和Bax蛋白的表达变化。 结果扁蒴藤素对MCF-7细胞的生长有显著的抑制作用,对其作用48 h的半数抑制浓度(IC50)为0.59 μmol/L。1.0 μmol/L扁蒴藤素作用后,Annexin V-FITC/PI染色凋亡细胞比率(15.55±1.43)%,TUNEL阳性的MCF-7细胞比率为(35.59±4.43)%,较对照组(未经扁朔藤素作用)[(1.45±0.24)%和(0.85±0.34)%]明显升高,差异均有显著性意义,P<0.05。Western blot结果显示,扁蒴藤素能下调Bcl-2的表达,上调Bax的表达。 结论扁蒴藤素素通过调节细胞凋亡相关因子诱导MCF-7细胞凋亡的发生,从而高效抑制MCF-7乳腺癌细胞的生长。
[关键词]扁蒴藤素;乳腺癌;MCF-7;凋亡
[引用本文]谢闺娥, 杜晶春,徐霞,等.扁蒴藤素对人乳腺癌MCF-7细胞生长和凋亡的影响及机制研究[J].大连医科大学学报,2016,38(3):215-218.
乳腺癌是女性常见的恶性肿瘤,发病率呈缓慢上升趋势,在许多西方国家中,乳腺癌的发病率占女性癌肿的首位[1]。化疗是治疗乳腺癌的重要辅助性手段,化疗能够明显降低乳腺癌的术后复发率,对晚期乳腺癌失去根治机会者采用化疗也有明显的缓解率。但是,多药耐药性的产生往往限制了常用化疗药物的使用[2]。
南蛇藤(Celastrus orbiculatus Thunb.),又名过山风、黄藤、降龙草、金银柳、穷搅藤、苦树皮、七寸麻、过山龙、地南蛇、老牛筋等,是卫矛科南蛇藤属植物。扁蒴藤素(Pristimerin)主要存在于南蛇藤的根皮中,研究表明其具有广谱抗肿瘤[3-8]、抗炎[8]、抗氧化[9]及其它多种药理活性。2008年扁蒴藤素被进一步证实,可通过抑制蛋白酶体活性而发挥抗肿瘤作用,是新型的蛋白酶体抑制剂[10]。其对乳腺癌的作用及其机制尚未完全明确。本研究以最常用的乳腺癌细胞系MCF-7为模型,探讨扁蒴藤素对MCF-7生长的影响及其可能的作用机制,以期为探索新的乳腺癌高效化疗药物提供实验依据。
1材料和方法
1.1主要材料与试剂
人乳腺癌MCF-7细胞系购自ATCC,扁蒴藤素、二甲基亚砜(DMSO)、碘化丙啶 (PI)购自美国Sigma公司;胎牛血清(FBS)为美国Hyclone公司产品;DMEM培养基、胰蛋白酶为美国Gibco公司产品;MTT购自美国Genview公司; Annexin V-FITC/PI细胞凋亡检测试剂盒、DeadEndTM Fluorometric TUNEL试剂盒购自美国Roche公司;BCA蛋白定量试剂盒、ECL化学发光液购自美国Pierce公司;Bax和Bcl-2抗体购自美国Cell Signaling公司;鼠抗人GAPDH购自Sigma公司;HRP标记抗鼠二抗和 HRP标记抗兔二抗为Pierce公司产品。
1.2细胞培养
人乳腺癌细胞株MCF-7于含10%FBS、100 IU/mL青霉素和100 μg/mL链霉素的DMEM完全培养基中,37 ℃,5%CO2饱和湿度孵箱内培养。传代用含0.02%EDTA的0.05%胰酶消化,以DMEM完全培养基终止消化。
1.3MTT比色法
取对数生长期的细胞,胰酶消化,制成单细胞悬液,调整细胞浓度为5×104个/mL;每孔种200 μL细胞悬液于96孔培养板内,培养24 h,吸去旧培养液,加入含不同浓度扁蒴藤素(设7个不同浓度:0.1、0.5、1、2.5、5、10和20 μmol/L)的培养基,同时设立对照组,正常培养基,每组均设3个平行孔培养;48 h,每孔加MTT(5 mg/mL)20 μL,培养4 h;小心吸弃培养基,加入100 μL DMSO置摇床上低速振荡10 min;酶联免疫检测仪在570 nm波长处测定其吸光度(OD)值,按下述公式计算生长抑制率:抑制率(%)=(1-OD加药组/ OD对照组)×100%,并用Bliss's软件计算半数抑制浓度(IC50)值[11]。
1.4Annexin V-FITC/PI染色
取对数生长期的人乳腺癌细胞MCF-7,实验组加入扁蒴藤素终浓度为1.0 μmol/L的培养基,对照组加入正常培养基, 培养8 h,用不含EDTA的胰蛋白酶消化,制成单细胞悬液,1×binding buffer悬浮细胞至1×106个/mL,取100 μL细胞悬液加入5 μL Annexin V-FITC 和10 μL PI,混匀,室温避光反应15 min;加入400 μL 1×binding buffer充分混合,流式细胞仪检测细胞凋亡情况。
1.5TUNEL染色
将MCF-7细胞消化后计数,按每孔1.0×105个细胞分别接种至已铺有盖玻片的24孔细胞培养板中,培养过夜;实验组加入终浓度为1.0 μmol/L的扁蒴藤素,对照组正常培养,培养24 h,弃去培养基,加入4%多聚甲醛,4 ℃固定细胞25 min; PBS洗涤3次,每次5 min;用0.2% Triton X-100处理5 min;PBS洗涤3次,每次5 min;尽量吸去多余液体,滴加100 μL平衡缓冲液覆盖细胞,平衡5~10 min;配制rTdT反应缓冲液(45 μL Equilibration Buffer+5 μL Nucleotide Mix+1 μL rTdT Enzyme)/每孔;吸弃平衡缓冲液,将50 μL rTdT反应缓冲液滴加至细胞上,将24孔板放入湿盒中反应,37 ℃孵育1 h,注意避光(以下步骤均需);吸弃反应液,加入2×SSC室温作用15 min以终止反应;室温下,PBS洗涤3次,每次5 min;加入1 μg/mL PI 室温下避光作用15 min;PBS洗涤3次,每次5 min;吸尽多余的水分,将盖玻片上的细胞避光干燥过夜,次日加Anti-Fade封片;在荧光显微镜下进行观察,TUNEL染色阳性荧光信号呈绿色,PI荧光信号呈红色。
1.6Western blot实验
分别收集1.0 μmol/L的扁蒴藤素处理组和对照组MCF-7细胞,PBS洗涤后加入细胞裂解液提取细胞总蛋白,经BCA法蛋白定量后,western blot法检测Bcl-2和Bax蛋白表达水平。制备SDS-PAGE胶,电泳,转膜。5%脱脂奶粉对PVDF膜进行封闭后,一抗4 ℃孵育过夜,洗涤后用HRP标记的二抗室温孵育1 h,再次洗涤后以ECL试剂盒发光、X线胶片感光显影后观察结果。GAPDH为内参照。
1.7统计学方法
采用SPSS 13.0进行数据处理及统计分析。数据均以均值±标准差表示,两组间的比较采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。
2结果
2.1扁蒴藤素对MCF-7细胞生长的影响
MTT比色结果表明,扁蒴藤素对MCF-7细胞的生长有显著的抑制作用,当药物浓度为1.0 μmol/L时,对MCF-7细胞的生长抑制率为73.88%,48 h的IC50为0.59 μmol/L。见图1。
图1 扁蒴藤素对MCF-7细胞生长抑制曲线Fig 1 Dose-response curve of pristimerin on the growth of MCF-7 cells
2.2扁蒴藤素对MCF-7细胞凋亡的影响
Annexin V-FITC/PI双染法结果显示,MCF-7细胞经扁蒴藤素作用8 h后,凋亡细胞比率(15.55±1.43)%较对照组(1.45±0.24)%明显升高,差异有显著性意义,P<0.05。见图2。
TUNEL结果显示,未经扁蒴藤素作用的对照组几乎未见TUNEL染色阳性细胞;经扁蒴藤素作用24 h后,TUNEL染色阳性细胞率(35.59±4.43)%较对照组(0.85±0.34)%明显增加,差异有显著性意义,P<0.05。见图3。
2.3扁蒴藤素对细胞凋亡相关因子的调节
Werstern blot分析表明,扁蒴藤素能够下调Bcl-2的表达,上调Bax的表达。见图 4。
图2 Annexin V-FITC/PI染色检测扁蒴藤素对MCF-7细胞的凋亡诱导作用Fig 2 Annexin V-FITC/PI staining of MCF-7 cells treated with pristimerinA: Annexin V-FITC/PI染色流式细胞分析图; B: 凋亡细胞比率统计图。 *与对照组比较,P<0.05
图3 TUNEL染色检测扁蒴藤素对MCF-7细胞的凋亡诱导作用
图4 扁蒴藤素对MCF-7细胞Bcl-2和Bax蛋白的影响Fig 4 Effect of pristimerin on the expression of Bcl-2 and Bax in MCF-7 cells
3讨论
作为发病率占女性癌肿首位的恶性肿瘤,乳腺癌严重威胁着女性的健康。临床上使用化疗药物进行治疗时,肿瘤对化疗药物的耐药性严重影响了治疗效果[2]。
作为药用南蛇藤的重要活性成分,扁蒴藤素能够抑制多种肿瘤细胞的恶性增殖[3-8]。而本实验研究了扁蒴藤素对乳腺癌MCF-7细胞生长和凋亡的影响,结果表明扁蒴藤素对MCF-7细胞的生长也具有很强的抑制作用。经扁蒴藤素作用后,Annexin V-FITC染色和TUNEL染色阳性的MCF-7细胞比例均增高,表明扁蒴藤素能诱导MCF-7细胞凋亡的发生。
为进一步探讨扁蒴藤素对肿瘤细胞可能的作用机制,对细胞凋亡相关因子的表达进行了检测。Werstern blot显示,扁蒴藤素显著减少了Bcl-2的表达,增加Bax的表达。Bcl-2、Bax都定位于线粒体膜上,Bcl-2基因家族与线粒体在细胞凋亡中的作用密切相关[12];Bax是参与细胞凋亡的一个成员,可以直接促使细胞色素C在外膜未被破坏的情况下通过某种通道释放至胞浆,同时激发PT通道的开放,降低线粒体膜电位[13]。而Bcl-2蛋白则通过稳定线粒体膜电位,阻止线粒体细胞色素C的释放而发挥抗凋亡作用。此外,Bcl-2的过度表达可引起细胞核谷胱甘肽的积聚,导致核内氧化还原平衡的改变,从而降低了Caspase的活性。因此,扁蒴藤素对抗凋亡蛋白Bcl-2的下调和对促凋亡蛋白Bax的上调作用可以部分解释扁蒴藤素诱导MCF-7细胞凋亡的机制。
扁蒴藤素能够下调Bcl-2、上调Bax的表达,从而激活细胞内凋亡途径,最终高效抑制MCF-7的生长。本研究扩充了对扁蒴藤素抗乳腺癌作用及其机制的新认识,也将为新的抗乳腺癌化疗药物的研发提供实验依据。
参考文献:
[1] Jemal A, Bray F, Center MM, et al. Global cancer statistics [J]. CA Cancer J Clin, 2011, 61(2): 69-90.
[2] Gillet JP, Gottesman MM. Mechanisms of multidrug resistance in cancer [J]. Methods Mol Biol, 2010, 596: 47-76.
[3] Deeb D, Gao X, Liu YB, et al. Pristimerin, a quinonemethide triterpenoid, induces apoptosis in pancreatic cancer cells through the inhibition of pro-survival Akt/NF-κB/mTOR signaling proteins and anti-apoptotic Bcl-2 [J]. Int J Oncol, 2014, 44(5): 1707-1715.
[4] Yan YY, Bai JP, Xie Y, et al. The triterpenoid pristimerin induces U87 glioma cell apoptosis through reactive oxygen species-mediated mitochondrial dysfunction [J]. Oncol Lett, 2013, 5(1): 242-248.
[5] Tiedemann RE, Schmidt J, Keats JJ, et al. Identification of a potent natural triterpenoid inhibitor of proteosome chymotrypsin-like activity and NF-kappaB with antimyeloma activity in vitro and in vivo [J]. Blood, 2009, 113(170): 4027-4037.
[6] Byun JY, Kim MJ, Eum DY, et al. Reactive oxygen species-dependent activation of Bax and poly(ADP-ribose) polymerase-1 is required for mitochondrial cell death induced by triterpenoid pristimerin in human cervical cancer cells [J]. Mol Pharmacol, 2009, 76(4): 734-744.
[7] Wu CC, Chan ML, Chen WY, et al. Pristimerin induces caspase-dependent apoptosis in MDA-MB-231 cells via direct effects on mitochondria [J]. Mol Cancer Ther, 2005, 4(8): 1277-1285.
[8] 惠斌, 吴勇杰, 王鸿, 等.扁蒴藤素对急性实验性炎症的作用及其机制研究[J].中国药理学通报, 2003, 19(6): 656-659.
[9] 陈长瑞,李文广,吴勇杰,等.扁蒴藤素的抗氧化与抗肿瘤作用[J].中药药理与临床,2002, 18(5): 20-21.
[10] Liu YB, Gao X, Deeb D, et al. Ubiquitin-proteasomal degradation of antiapoptotic survivin facilitates induction of apoptosis in prostate cancer cells by pristimerin [J]. Int J Oncol, 2014, 45(4): 1735-1741.
[11] Xie G, Li J, Chen J, et al. Knockdown of flotillin-2 impairs the proliferation of breast cancer cells through modulation of Akt/FOXO signaling [J]. Oncol Rep, 2015, 33(5): 2285-2290.
[12] Kluck RM, Bossy-Wetzel E, Green DR, et al. The release of cytochrome c from mitochondria: a primary site for Bcl-2 regulation of apoptosis [J]. Science, 1997, 275(5303): 1132-1136.
[13] Marzo I, Brenner C, Zamzami N, et al. Bax and adenine nucleotide translocator cooperate in the mitochondrial contro l of apoptosis [J]. Science, 1998, 281(5385): 2027-2031.
基金项目:国家自然科学基金项目(81101682);广东省公益研究与能力建设专项资金项目(2014A020212015)
作者简介:谢闺娥(1981-),女,湖南邵阳人,讲师。E-mail:guier2003@126.com 通信作者:徐 霞,教授。E-mail:xux2014@126.com
doi:论著10.11724/jdmu.2016.03.02
[中图分类号]R737.9
[文献标志码]A
文章编号:1671-7295(2016)03-0215-04
(收稿日期:2016-01-13;修回日期:2016-05-20)
Effect of pristimerin on the growth and apoptosis of MCF-7 breast cancer cells and the mechanism
XIE Gui-e1, DU Jing-chun1, XU Xia1, DONG Gui-lan2
(1.KingMedSchoolofLaboratoryMedicine,GuangzhouMedicalUniversity,Guangzhou510182,China;2.OutpatientDepartment,GuangzhouUniversity,Guangzhou510006,China)
[Abstract]Objective To investigate the effect of pristimerin on the growth and apoptosis of MCF-7 breast cancer cells and to explore the underlying mechanism. Methods The effect of pristimerin on the growth and of apoptosis MCF-7 cells were analyzed by MTT assay and Annexin V-FITC/PI staining, TUNEL staining, respectively. The expression of Bcl-2 and Bax was determined by western blotting analysis. Results Pristimerin exhibited a marked inhibition on the survival of MCF-7 cells, and the half maximal inhibitory concentration (IC50) value was 0.59 μmol/L. The numbers of apoptotic MCF-7 cells, as revealed by Annexin V binding and TUNEL assay, increased upon pristimerin treatment. Pristimerin treatment resulted in a decrease of Bcl-2 and an increase of Bax expression. Conclusion Our results demonstrated that pristimerin suppressed the proliferation of MCF-7 cells, and that these effects occurred through increasing apoptosis by regulation of apoptotic effectors.
[Key words]pristimerin; breast cancer; MCF-7; apoptosis