梁京芸+王玉涛+刘涛+王文博+李增梅+苑学霞+李瑞菊+邓立刚+张树秋
摘要:采用乙腈提取、超高效液相色谱一串联质谱联用分析检测的方法,研究了嘧菌酯在山东、安徽和陕西3地苹果和土壤中的消解动态及最终残留。结果表明:采用10%嘧菌酯悬浮剂在有效成分150mg/kg施药剂量下对苹果植株和土壤分别喷雾施药一次,嘧菌酯在苹果中的半衰期(t1/2)为2.97~4.36d,在土壤中的半衰期(t1/2)为2.80~4.73d;而在150mg/kg施药剂量下施药4次,第4次施药后14d,嘧菌酯在苹果和土壤中的最终残留量均低于检出限(0.01mg/kg),远低于欧盟规定的最大残留限量值(0.05mg/kg)。
关键词:嘧菌酯;苹果;土壤;超高效液相色谱-串联质谱;残留;消解
中图分类号:S481+.8文献标识号:A文章编号:1001-4942(2015)04-0106-05
嘧菌酯,化学名称:(E)2-{2-[6-(2-氰基苯氧基)嘧啶-4-基氧]苯基}-3-甲氧基丙烯酸甲酯,分子式:C22H17N3O5,是20世纪90年代末开发成功的一种新的甲氧基丙烯酸类广谱抗真菌剂,具有内吸传导、预防、保护、治疗等多重作用,对子囊菌、担子菌、半知菌和卵菌纲四大类病原真菌所引起的霜霉病、白粉病、炭疽病、叶斑病等大部分病害均有很好的防效[1,2]。
目前国内尚未制定苹果中嘧菌酯的残留限量标准,日本制定的是2mg/kg,欧盟制定是0.05mg/kg。嘧菌酯残留分析方法主要有气相色谱-电子捕获检测(GC-ECD)测定[3,4]、气相色谱-氮磷检测法(GC-NPD)[5,6]、气相色谱-串联质谱法[7,8]和液相色谱-紫外检测法[9]、液质联用法[10],鉴于串联质谱检测方法越来越多地用于农药残留的测定,本研究采用超高效液相色谱-质潜联用分析方法测定。目前国内外关于嘧菌酯的报道多集中于残留检测分析,如在苹果中的残留检测分析和储存期间的变化[11],在作物中的残留消解动念也有研究[3,12,15],但尚未见其在苹果和土壤中的残留及消解动力学方面的研究。笔者选择苹果种植区,利用超高效液相色谱-质谱联用分析方法研究了嘧菌酯在苹果和土壤中的残留及消解行为,旨在为评估嘧菌酯在苹果和土壤中的安全使用提供参考。
收稿日期:2014-08-19
基金项目:山东省2013年度农业重大应用技术创新课题“优质安全苹果标准化生产关键技术的研究”
1材料与方法
1.1仪器与药剂
高效液相色谱系统:ACQUITYUltraPerformanceLC(Waters公司);质谱系统:MicromassQuattroUltimaIMPT质谱仪(Waters公司);匀浆机:IKA-MerkT25;超声波清洗机、高速离心机(SIGMA公司)、涡流混合器、电子天平、精密移液枪、氮吹仪以及其它实验室常用仪器设备。
嘧菌酯标准品:纯度99.0%,购于农业部环境保护科研检测所;甲酸(色谱纯,美国Sigma公司);甲醇(色谱纯,德国默克公司);乙腈[色谱纯,赛默飞世儿科技(中国)有限公司];Na2SO4、NaCl(分析纯);试验用水为去离子水。
1.2试验地概况
田间试验时间为2011、2012年7~9月,试验苹果品种分别是山东省烟台的红富士、安徽省宿州的乔纳金、陕西省成阳的美国八号。烟台属暖温带大陆性季风气候;咸阳市地处暖温带,属大陆性季风气候,四季冷热干湿分明;宿州市属暖温带半湿润季风气候,四季分明,光照充足,雨量适中。
1.3嘧茵酯的消解动态及最终残留试验
1.3.1消解动态试验依据《农药残留试验准则》和《农药登记残留田间试验标准操作规程》设置试验小区,小区面积30m2,每小区3棵树,重复3次。小区间设保护带,另设喷施清水为空白对照。小区边行和每行距离两端0.5m内不采样。在苹果生长到成熟个体一半大小时均匀施药1次,施约剂量为10%嘧菌酯悬浮剂对水稀释2670倍(150mg/kg有效成分)。根据树冠的大小决定用水量,为保证施药均匀,一般喷施2遍,以树叶滴水为准。分别于施药后2h、1、3、5、7、10、14、21、30d采样,随机在试验小区内采集2kg生长正常、无病害、半成熟或成熟的果实,采集部位遍及上、中、下部,切碎、混匀后采用四分法留样500g,装入样本容器中,贮存于-20℃冰柜中。
选一块30m2的地块,单独施药,施药浓度为高剂量制剂量的2670倍(150mg/kg有效成分),施药后2h、1、3、5、7、10、14、21、30d采样,另设清水空白对照,重复3次。随机取点10个,用土钻采集0~10cm的土壤l~2kg,除去碎石、杂草和植物根茎等杂物,混匀后采用四分法留样500g,装入样本容器中,贮存于-20℃冰柜中保存。
1.3.2最终残留试验分别采用低剂量制剂量4000倍(有效成分100mg/kg)和高剂量制剂量2670倍(有效成分150mg/kg)于生长期间施药100mg/kg剂量施药3次,150mg/kg剂量施药4次,施药间隔期15d。分别于最后1次施药后14、21d采集苹果和土壤样品。苹果和土壤处理的设置和样品的采集均同1.3.1。
1.4样品分析方法
1.4.1样品提取称取苹果样品10.0g于50mL离心管中,准确加入20mL乙腈,加入5gNaCl和5g无水硫酸钠,高速匀浆1min。剧烈振荡离心,取上清液10mL旋转蒸发至干,然后加入2mL乙腈+水(3+2)溶解,用0.22μm滤膜过滤后待测。
称取土壤样品10.0g于50mL离心管中,准确加入20mL乙腈,加入10mL水,加入5gNaCl和5g无水硫酸钠,超声波提取10min。剧烈振荡离心,取上清液10mL旋转蒸发至干,然后加入2mL乙腈+水(3+2)溶解,用0.22μm滤膜过滤后待测。endprint
1.4.2色谱分析条件仪器条件:流动相为0.1%甲酸(A)和乙腈(B)。梯度洗脱程度:0min,300%B;O~3min,30%~70%B;3~5min,70%~80%B;之后进行系统平衡。流速0.3mL/min;柱温40℃,进样量5μL。色谱柱:XterraRP18柱(2.1mm×100mm,3.5μm)。
质谱条件:大气压电喷雾离子源(ESI)正离子模式;毛细管电压:3.5kV;锥孔电压:45V;离子源温度:110℃;脱溶剂气温度:450℃;锥孔气流量:64L/h;脱溶剂气流量:539L/h;光电倍增器电压:650V;碰撞室真空度:8.34e-4(mbar);质量分析器真空度:2.90e-5(mbar)。定性离子对(403.80/328.70)、定量离子对(403.80/371.70)、碰撞能量和锥孔电压等质量条件参数详见表1。
1.4.3标准曲线准确称取嘧菌酯标准品10mg(精确至0.0001g),用乙腈溶解并定容至10.0mL,配成标准母液。再用空白样品提取溶液将标准母液稀释成质量浓度分别为200.0、100.0、75.0、50.0、25.0、10.0、1.0μg/L系列标准溶液,在上述液相色谱-质谱条件下进行测定,以嘧菌酯标准溶液浓度为横坐标,监测离子峰面积为纵坐标作标准曲线。
1.4.4添加回收试验分别在空白苹果和土壤样品中添加0.01、0.05、0.5mg/kg的嘧菌酯,用上述分析方法测定回收率,计算添加回收率和相对标准偏差(RSD)。每个水平重复5次,同时设空白对照。
1.4.5数据处理采用一级动力学方程式(Ct=C0e-kt),计算嘧菌酯在苹果和土壤中的残留量半衰期(t1/2)=ln2/k[13]。
2结果与分析
2.1线性范围及准确度、精密度和灵敏度
嘧菌酯在苹果和土壤中的标准曲线回归方程分别为y=1580.66x-5551.77,r=0.9957;y=909.467x+10415.7,r=0.9990;这表明在1.0~200μg/L范围内峰面积与质量浓度间呈良好的线性关系。
由表2可见,该方法具有很好的准确度和精密度,在上述色谱条件下嘧菌酯在苹果和土壤中的最低检出浓度为0.01mg/kg。图1和表2结果表明该方法对嘧菌酯具有良好的分离效果,灵敏度和准确性均符合农药残留分析的要求。
2.2嘧菌酯在苹果和土壤中的消解动态
10%嘧菌酯悬浮剂150mg/kg施药剂量下,在山东、安徽和陕西苹果和土壤中消解动态均符合一级反应动力学方程模式(表3)。消解动态曲线图见图2,随着时间延长残留量逐渐降低。2011和2012年嘧菌酯在苹果中的半衰期(t1/2)分别为2.97~3.90、3.51~4.36d,2011和2012年嘧菌酯在土壤中的半衰期(t1/2)分别为2.80~4.73、3.42~4.70d,药后14d消解90%以上,该药属于易降解农药(t1/2<30d)[14]。
2.3嘧菌酯在苹果和土壤中的最终残留
山东、安徽和陕西3地的最终残留试验结果表明:两个剂量试验最后一次施药后14d,苹果和土壤中嘧菌酯残留量均小于0.01mg/kg,可以看出,嘧菌酯在苹果和土壤中的消解速率较快,最终残留量远低于依据欧盟规定嘧菌酯在苹果中的MRL值(0.05mg/kg)。
3结论
样品经乙腈提取采用液相色谱-质谱联用分析法测定了嘧菌酯在苹果和土壤中的残留动态。结果表明:嘧菌酯在苹果和土壤中的最低检出量为0.01mg/kg,平均添加回收率为95.5%~106.5%,相对标准偏差(RSD)为0.72%~4.58%,均符合农药残留分析要求。
两年田间试验结果表明:嘧菌酯在苹果上的半衰期为2.97~4.36d,在土壤上的半衰期为2.80~4.73d;100mg/kg和150mg/kg剂量最后一次施药后14d苹果和土壤中嘧菌酯最终残留量均小于0.01mg/kg。建议10%嘧菌酯悬浮剂在苹果和土壤上的使用浓度为80~100mg/kg,每年用药1~2次,安全间隔期15d。endprint