桂花多糖体外免疫活性的研究

2015-05-22 07:59陶阿丽施伶俐张国升
赤峰学院学报·自然科学版 2015年21期
关键词:培养箱悬液桂花

尹 伟,陶阿丽,戴 一,施伶俐,张国升

(安徽新华学院 药学院,安徽 合肥 230088)

多糖作为天然生物体大分子物质,具有多种多样的生物活性,如增强机体免疫功能、抗氧化作用,并在抗肿瘤方面发挥着重要的生物活性作用.据报道[1],植物多糖的免疫调节作用可能是通过激活机体免疫细胞活性,以促进这些细胞对IL-2、IFN-γ、TNF-α 等细胞因子的分泌,从而产生一定的免疫调节作用.亦有报道表明[2],植物多糖的这些免疫作用可能与抗肿瘤作用密切相关.目前报道较多的植物多糖,如半夏多糖、青蒿多糖等均具有调节机体细胞免疫功能以及抑制肿瘤细胞作用[3].

桂花(Osmanthus fragrans Lour.),为木犀科木犀属植物,是木犀科常绿灌木或小乔木.《本草纲目》记载:桂花,味甘、辛,性温,能暖胃、益胃、驱寒,并具有疏肝理气、祛痰止咳和顺肺开胃的功效[4].现代研究表明[5],桂花具有降血糖、抗炎、抑菌、体内外抗氧化和清除自由基等生物活性.桂花多糖是桂花的重要成分之一,但是目前对桂花的研究主要集中在桂花精油方面,而对桂花多糖的免疫活性则尚未见报道.

本课题在前期研究的基础之上,拟使用前期得到的桂花多糖作为原料,考察桂花多糖的体外免疫活性,旨在为临床新药研发提供一定的参考.具体报道如下:

1 材料

1.1 主要试剂

二甲基亚砜(DMSO,上海市欣诚试剂有限公司);RPMI-1640(上海元龙生物技术有限公司);胎牛血清(江苏泽雨生物科技有限公司);刀豆蛋白A(ConA,上海丰寿生物科技有限公司);MTT(噻唑蓝,上海丰寿生物科技有限公司);台盼蓝(上海恒远生物科技有限公司)

1.2 主要仪器

CO2细胞培养箱(上海百典仪器厂);HZS-H水浴振荡器(金坛市精达仪器制造有限公司);

96孔细胞培养板(上海研拓生物科技有限公司);550型酶标仪(无锡华卫德朗仪器有限公司)

1.3 实验动物

SPF级昆明种小鼠,购自安徽医科大学实验动物中心提供,动物生产许可证号:SCXK(皖)2011-002号.

2 方法

2.1 制备鼠脾淋巴细胞

取SPF级昆明种小鼠,处死(颈椎脱臼方法),乙醇(75%)中浸泡(5min),无菌手术将其脾脏取出,使用PBS洗3次.用消毒无菌镊子轻轻捻碎脾脏,过筛(200目),最终得到细胞悬液,离心,加入0.85%NH4Cl裂解红细胞,冲打,静置约10min,离心,收集细胞,冲洗,检测细胞存活率(台盼蓝方法)>96%.用RPMI-1640(RoswellParkMemorialInstitute)培养基,转至培养板中(96孔),于培养箱(37℃,5% CO2)中培养.

2.2 测定细胞浓度和存活率(台盼蓝法)

将细胞悬浮液(100ul)与0.2%(100ul)的台盼蓝溶液混匀,加入500mlNaCl(0.9%),镜检.其中,细胞数(每毫升)=大个中平均或细胞的数目×104/ml×稀释倍数;细胞存活率=活细胞数目/总细胞数目×100%,细胞存活率应>90%.

2.3 桂花多糖的毒性试验(脾淋巴细胞)

将小鼠脾细胞悬液加至细胞培养板(96孔),100ul/孔;加样品,100ul/孔;相关阴性对照组中只加培养基(RPMI-1640).平行三复孔.放置细胞培养箱中(37℃,5%CO2)48h.取出细胞板,加MTT(噻唑蓝),20ul/孔,放置培养箱中继续培养5h.取出,离心(2500r/min,5min),去除上清液,每孔加DMSO 100ul,同时震荡5min.用酶标仪测定(OD570nm).

2.4 桂花多糖诱导的淋巴细胞增殖测定

将小鼠脾细胞悬液加至细胞培养板(96孔),100ul/孔;加样品,100ul/孔;分别设置阳性和阴性对照,其中,ConA浓度为10ug/ml.平行三复孔.放置细胞培养箱中(37℃,5%CO2)72h.

取出细胞板,加MTT(噻唑蓝),20ul/孔,放置培养箱中继续培养5h.取出,离心(2500r/min,5min),去除上清液,每孔加DMSO 100ul,同时震荡5min.用酶标仪测定(OD570nm).

2.5 ConA诱导的脾淋巴细胞增殖测定

将小鼠脾细胞悬液加至细胞培养板(96孔),150ul/孔;在空白组中加25ulPRMI-1640培养基,阳性对照组加ConA 25ul,相关试验组加ConA溶液分别为25ul,且浓度相同,再加样品溶液25ul,最终用培养基将体积补充至200ul.检测方法同上.

2.6 桂花多糖与ConA联合诱导淋巴细胞增殖测定

将小鼠脾细胞悬液加至细胞培养板(96孔),100ul/孔;随后加入样品与Con A,50ul/孔,浓度为5ug/ml.同时设置阴性、阳性与空白对照组.检测方法同上.

2.7 桂花多糖对Con A诱导IL-2、IFN-γ 及TNF-α 分泌的作用

2.7.1 桂花多糖联合ConA诱导淋巴细胞分泌IL-2、IFN-γ 的细胞培养液上清的制备

将小鼠脾细胞悬液加至细胞培养板(96孔),100ul/孔;加样品、ConA,100ul/孔,其中,ConA浓度为5ug/ml.同时设置阴性、阳性与空白对照组.平行三复孔.放置细胞培养箱中(37℃,5%CO2)48h.取出,合并培养液,离心(2500rpm,5min),过滤沉淀,上清液备用(-20℃保存).

2.7.2 桂花多糖联合Con A诱导巨噬细胞分泌TNF-α 的细胞培养液上清的制备

将巨噬细胞悬液加至细胞培养板(96孔),1ml/孔,放置细胞培养箱中(37℃,5%CO2)2h,并去除上清液,洗去非黏附细胞(Hank’s溶液);加样品、Con A,50ul/孔,其中,ConA浓度为5ug/ml.同时设置阴性、阳性与空白对照组.平行三复孔.放置细胞培养箱中(37℃,5%CO2)48h.取出,合并培养液,离心(2500rpm,5min),过滤沉淀,上清液备用(-20℃保存).

2.7.3 细胞培养液上清中IL-2、IFN-γ 及TNF-α的测定

根据ELISA试剂盒程序测定OD492值,绘制标准曲线,算出IL-2、IFN-γ 及TNF-α 的浓度.

2.8 统计学方法

所有研究数据均采用SPSS17.0统计学软件包进行统计分析,计量资料以均数±标准差(x±s)表示,并采用t检验.

3 实验结果

3.1 桂花多糖的细胞毒性作用

研究结果显示,桂花多糖1μg/ml、10μg/ml及100μg/ml的OD570nm值分别为 (0.264±0.04)、(0.341±0.01)、(0.502±0.02),显著优于阴性对照组的数值(0.113±0.02),表明桂花多糖对淋巴细胞转化增值,效果明显,无显著细胞毒性.

表1 桂花多糖以及联合诱导的淋巴细胞增殖试验

表1 桂花多糖以及联合诱导的淋巴细胞增殖试验

试验组样品单一诱导 联合诱导阴性对照组 0.126±0.01 0.109±0.01 ConA对照组 0.315±0.03 0.302±0.01 1 0.298±0.01 0.333±0.02桂花多糖(ug/ml)10 0.366±0.03 0.373±0.03 100 0.440±0.02 0.444±0.03 1 0.281±0.01 0.286±0.02香菇多糖(ug/ml)10 0.356±0.02 0.348±0.03 100 0.418±0.03 0.397±0.04

3.2 桂花多糖及桂花多糖联合诱导的淋巴细胞增殖测定

通过试验数据可得出,桂花多糖试验组的OD570nm数值均大于对照组,提示桂花多糖对鼠脾淋巴细胞有较好的增殖作用,同时依据剂量的加大(1μg/ml、10μg/ml、100μg/ml),诱导作用亦逐渐加强.另,桂花多糖与香菇多糖OD570nm值较为接近,显示了桂花多糖对小鼠脾淋巴细胞的增殖作用方面,与香菇多糖效果相当,同时均大于ConA的作用效果.详见表1.

3.3 细胞培养液上清中IL-2、IFN-γ 及TNF-α的测定

3.3.1 标准曲线的绘制

IL-2含量测定标准曲线:

y=1.4421x-1.9934(r=0.9992);

IFN-γ 含量测定标准曲线:

y=1.6001x-1.5329(r=0.9939);

TNF-α 含量测定标准曲线:

y=1.6044x-1.7171(r=0.9992);

3.3.2 桂花多糖对ConA诱导的IL-2、IFN-γ 及TNF-α 指标分泌的影响对比

通过试验数据得出,桂花多糖实验组的细胞因子浓度显著优于对照组,显示了桂花多糖对Con A诱导的细胞因子(IL-2、IFN-γ、TNF-α)分泌促进效果显著,同时与剂量大小在一定范围内,保持一定的正相关.且同香菇多糖对细胞因子分泌的促进作用相比,在一定程度上,效果优于香菇多糖.

表2 桂花多糖联合Con A诱导的IL-2、IFN-γ 及TNF-α 指标情况对比

4 小结

研究显示[6-8],植物多糖在抗肿瘤、免疫、心血管、抗衰老等方面都具有较为重要的作用,目前已经成为广大医药学工作者的研究热点.随着分子生物学,生物化学等学科研究的发展,植物多糖的研究也越来越深入.同时,科学家们亦将多糖的研究提到了生命科学的前沿,提出了“二十一世纪是多糖的世纪”的概念.

本研究结果显示,桂花多糖无显著的细胞毒性,对淋巴细胞诱导的增殖转化效果明显,并且对IL-2、IFN-γ、TNF-α 的分泌有很强的促进作用,同时在一定程度上,随着剂量增大,效果亦显著,与香菇多糖的作用效果相当.

综上,系统的研究桂花多糖的免疫活性,对其抗肿瘤作用的研究,奠定一定的基础.

〔1〕苗晶,东方,季宇彬,等.多糖抗肿瘤作用机制研究进展[J].河北科技师范学院学报,2012,26(2):42-45.

〔2〕牛广财,朱丹.植物多糖的生物活性及其制备技术研究进展[J].食品研究与开发,2005,26(6):191-194.

〔3〕李松,吴青华,陈畅,等.多糖抗肿瘤活性的最新研究进展[J].中国生化药物杂志,2007,28(3):213-215.

〔4〕任全进,朱洪武,于金平.桂花资源的利用价值[J].中国野生植物资源,1983,18(4):32-33.

〔5〕刘龙昌,向其柏.木犀属植物的研究进展[J].南京林业大学学报(自然科学版),2013,27(2):84-85.

〔6〕刘卫军,顾振纶,周文轩.植物多糖抗肿瘤活性研究进展[J].中国野生植物资源,1997,12(1):1-4.

〔7〕Witkowski B,Lelièvre J,Barragán MJL,et al.Increased tolerance to artemisinin in plasmodium falciparum is mediated by a quiescence mechanism[J].Antimicrobial Agents Chemotherapy,2010,54(5):1872-1877.

〔8〕王章姐,郁万杨,张梦茹.植物多糖研究进展[J].亚太传统医药,2014,10(6):39-40.

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