丁军颖,刘清泉
高迁移率族蛋白(high mobility group,HMG)是Goodwin Johns在小牛胸腺中发现的,分子量<30 KD,含高比例带电氨基酸,电泳时迁移率高,并因此得名。国际学术机构将HMG分为HMGB1、HMGB2和 HMGB3,三者氨基酸序列一致性达80%。HMG几乎表达于所有类型的组织细胞,胚胎组织尤为丰富。以一种与序列无关的方式结合在DNA上,对染色体重组非常重要,是C末端重复序列中两个氨基酸残基被置换[1],并有维持核小体结构、调节基因转录、稳定染色质和参与DNA重组等功能。
HMGB1是HMG家族中含量最丰富的蛋白,平均每10~15个核小体中即含1个HMGB1。由215个氨基酸构成,在不同物种之间具备高度保守性,人与鼠氨基酸序列同源性高达99%;大鼠与小鼠蛋白序列完全一致。人的HMGB1基因位于13q12染色体上,含TATA盒启动子及数个转录因子结合位点——两个同源的L型DNA结合区(A盒和B盒,约75个氨基酸)及含天冬氨酸与谷氨酸多重复序列的C末端:①A盒和B盒均由3个螺旋组成,带正电,是HMGB1的非特异性DNA结合区,广泛识别并结合DNA,通过改变构象与DNA结合蛋白精确装配,实现调节DNA修复、重组和基因转录调控等功能[2-3]。②B盒是引起炎性反应的功能结构域,能刺激鼠巨噬细胞株(RAW264.7)释放肿瘤坏死因子 α(TNF-α),甚至致小鼠死亡[4]。已证实,含TNF-α在内的细胞因子与HMGB1的作用区域是B盒DNA结合域的前20个氨基酸残基区(HMGB1 aa89 ~108)[5];小鼠接种抗 HMGB1 B 盒抗体对盲肠结扎穿孔诱导的重度脓毒症有明显保护作用[4],提示HMGB1 B盒可能是治疗脓毒症的靶点。③A盒位于序列末端,进化高度保守,可竞争性抑制HMGB1致炎功能,类似全长HMGB1抗体的功能,对B盒有拮抗作用。④C末端是HMGB1结合受体的部位,通过与其他蛋白相互作用调节核内HMGB1与DNA的亲和力,实现相关生物学功能。⑤另外,HMGB1序列中存在一个与A盒和B盒结构域同源的DNA结合基元,即HMG盒,既可提供与DNA二级结构特异的结合位点,以非序列依赖方式疏松结合于DNA小槽内;也可提供非特异性DNA结合位点,是辨认和结合变形DNA所必需的结构[6]。
HMGB1几乎表达于所有细胞。在肝、脑组织细胞中,HMGB1表达于胞质中;在其他组织细胞,多存在于胞核内。正常生理情况下,HMGB1定位于核内,表达量维持在基础水平;受刺激后赖氨酸残基发生乙酰化修饰,促进HMGB1核浆转移,并阻止其重新进入胞核。其释放方式主要有两种:被动释放和主动分泌[7]。
2.1 被动释放 在凋亡细胞中,HMGB1因组蛋白广泛去乙酰化而与DNA紧密结合,使其存留于凋亡小体内而不被释放至胞外,但当被单核巨噬细胞吞噬后,发生二次坏死或组蛋白去乙酰化被阻断,HMGB1则被动释放至胞外。
2.2 主动分泌 HMGB1可由不同细胞主动分泌——活化的单核巨噬细胞、树突状细胞和自然杀伤细胞等。HMGB1因缺乏引导肽结构而不能以高尔基体/内质网途径分泌,需通过非经典途径——溶酶体分泌至胞外。已证实,HMGB1蛋白转录翻译后可广泛进行修饰——糖基化、乙酰化、甲基化和磷酸化等,其中,乙酰化和磷酸化均能诱导活化细胞主动分泌HMGB1。
值得注意的是由凋亡细胞被动释放与活化免疫细胞主动分泌的HMGB1在分子修饰方面有明显差异,后者表现为高乙酰化;不同释放方式的HMGB1蛋白因结构不同而功能不同——凋亡细胞释放的HMGB1具有诱导免疫耐受作用,而主动分泌的HMGB1则发挥促炎效应[8]。另据报道,单纯HMGB1无致炎活性,而与ssDNA、脂多糖和核小体等形成复合物后则有高致炎性——可分别激活Toll样受体9(TLR9)、TLR4 和 TLR2[9],提示存在两种HMGB1分子形式,且二者作用亦不同。
3.1 核内HMGB1 核内HMGB1在DNA复制和基因转录中起重要作用。DNA复制时HMGB1作为基因调控蛋白,可避免DNA碱基错配;转录时,与不同结构DNA非特异性结合,促其局部空间构象变化,使不同转录因子与其结合,从而改变其基因表达。
3.2 胞外HMGB1 胞外HMGB1与核内HMGB1有不同的生物学功能。通过与受体RAGE、TLR2和TLR4等结合可激活胞内信号,不仅对自身分泌有级联放大效应,还可调节其他炎性因子、血管黏附分子和细胞趋化因子等的分泌,对炎性反应的发生、发展和维持起重要作用,是炎性细胞因子网络的核心。
3.2.1 炎性因子:胞外HMGB1作为炎性介质因子可激活巨噬细胞、单核细胞和内皮细胞等,使其表达释放巨噬细胞炎性蛋白-1β、白介素(IL)-6、IL-8、TNF-α、细胞间黏附分子-1(ICAM-1)和血管细胞黏附分子-1(VCAM-1)等,且这些因子多可与HMGB1相互诱生[1],形成炎性环路,激发免疫炎性反应的同时,维持慢性炎症的持续过程,尤其在炎症晚期HMGB1可参与创伤脓毒症多器官损害及内毒素致病过程。
3.2.2 黏附因子:HMGB1也是单核细胞黏附和穿越内皮细胞的调节因子。单核细胞被激活后分泌HMGB1至细胞表面,与晚期糖基化终末产物受体(RAGE)结合,调节单核细胞迁移、黏附和游出;还可诱导内皮细胞表达 ICAM-1、VCAM-1、E-选择素(E-Selectin/CD62E)和RAGE,从而调节和放大单核细胞的免疫应答。
3.2.3 凝血因子:HMGB1还可诱导内皮细胞释放纤溶酶原激活物抑制因子-1(PAI-1)和组织纤溶酶原激活物(t-PA),在机体凝血-抗凝血的平衡中发挥作用,参与炎性组织的血栓形成和弥散性血管内凝血过程[10]。
3.2.4 趋化因子:HMGB1还可与细胞表面趋化因子CXCL12结合,促进趋化因子受体(CXCR4)构象重排和炎性细胞转移,从而发挥促炎效应[11]。
3.2.5 信号转导因子:HMGB1还可介导核因子κB(NF-κB)等信号转导因子的激活,广泛参与机体各类炎性免疫反应[12-13]。
总之,胞外HMGB1可通过与炎性细胞因子、黏附和趋化因子等相互作用,在系列病理生理过程中发挥调节功能。当然,机体为了维护内环境稳定,染色体6q21基因编码的膜糖蛋白(CD24)和内皮细胞因子(TM)等多种HMGB1负调节受体也参与机体调节反应,起抑制炎性反应的作用。
4.1 RAGE HMGB1可与受体 RAGE、TLR4、TLR2和TLR9等结合。其中,RAGE具有很高的亲和力[14-15],是最早被鉴定的受体。1992年首次从胎牛肺内皮组织中分离得到,分子量35 KD。人RAGE基因位于6p21.3,含有11个外显子,其原始翻译产物含404个氨基酸,属跨膜蛋白,包括胞外域、跨膜区和胞内域。其中,胞外域为配体结合部位,由321个氨基酸残基组成,含V及两个C型片段的免疫球蛋白样结构。V区是配体结合区,可介导相关免疫应答效应。RAGE是免疫球蛋白超家族的一员,可广泛表达于免疫细胞和活化的内皮细胞等[14-15]。一般RAGE为低表达,当炎症发生时,其配体(如HMGB1)表达增多,RAGE可随之表达上调。HMGB1与 RAGE结合,可通过活化 Rho族蛋白Ras/Raf、Rac/CDC42、c-Jun 氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)及其相关蛋白p38抗体(p38)等触发胞内信号级联反应,最后激活NF-κB信号通路,促进机体免疫炎性反应的发生和维持。
4.2 TLR 人类TLR家族成员现已确认的有10个(TLR1~10),是HMGB1除RAGE外的另一类主要受体,包括TLR2、TLR4和TLR9等。TLR蛋白由胞外区、胞质区和跨膜区构成,通过胞外区可识别配体——外源性病原微生物成分,如脂多糖及部分机体内源性分子[16]。TLR介导的NF-κB通路现已基本明确:HMGB1与TLR结合,活化髓样分化因子MyD88和髓样分化因子接头样蛋白,进而激活下游IL-1受体相关激酶(IRAK-1,IRAK-2,IRAK-3/M,IRAK-4),IL-1受体相关酶再与TNF-α、受体相关细胞因子-6和三联复合物(由转化生长因子激酶-1、转化生长因子激酶-1相关蛋白-1及转化生长因子和激酶-1相关蛋白-2组成)结合,而后复合物发生磷酸化,激活NF-κB抑制酶信号小体,释放 NF-κB,促进 TNF-α、IL-1、IL-6、IL-8 等促炎细胞因子的表达和释放,形成多米勒骨牌效应,即通过正反馈作用使炎性反应放大并维持。当缺失髓样分化因子或抑制TLR2活性时,HMGB1与DNA的结合通过RAGE/TLR9途径,HMGB1与核小体的结合则通过TLR2受体[17]。当 TLR2、TLR4和 RAGE 都被阻断时,HMGB1刺激巨噬细胞仍有低水平的 NF-κB活性[18],提示存在其他未知的 HMGB1受体及通路,有待进一步研究证实。除了RAGE和TLR受体外,可能还存在其他受体与HMGB1信号传导途径相关,这被相应抗体只能阻断HMGB1部分功能所证实。
基于HMGB1的特性和活化通路的研究,起负调节作用的抑制剂逐渐被关注。
5.1 受体型抑制剂 通过与HMGB1结合负性调节HMGB1的刺激活性,如胞膜上的CD24、血栓调节蛋白、抗 HMGB1抗体、抗 RAGE抗体、分泌型RAGE(sRAGE)、涎免凝集素受体复合物、凝血酶敏感素、CXCL12抑制剂和甘草素等[19]。
5.2 抑制HMGB1释放的抑制剂 丙酮酸乙酯可抑制HMGB1释放,有抗炎作用[20];小檗碱能明显抑制脂多糖激活的小鼠腹腔巨噬细胞释放HMGB1[21];双环醇也可抑制 HMGB1 释放,进而下调 NF-κB 和蛋白 P65 的磷酸化[22]。
5.3 抑制HMGB1表达的抑制剂 没食子儿茶素在盲肠结扎穿刺导致的小鼠败血症模型中,能抑制HMGB1表达[23];小檗碱能明显抑制脂多糖激活后小鼠腹腔巨噬细胞HMGB1 mRNA的表达[21]。
5.4 抑制HMGB1核浆转移的抑制剂 烟碱能通过与胶质细胞α7 nAChR特异结合而影响HMGB1从核内向核外转移[24]。芍药苷也有抑制HMGB1核浆转移的功效[25]。大黄素则对 LPS激活后RAW264.7细胞中 HMGB1的释放、mRNA表达和蛋白核浆转移均有抑制作用[26];另外,具有抑制HMGB1活性或释放作用的还有HMGB1 A盒蛋白、正丁酸钠、胎球蛋白、槲皮素、顺铂、抗凝血酶Ⅲ及中药成分如丹参酮或小檗碱等[27]。
综上所述,HMGB1的受体 RAGE、TLR2和TLR4等分子可介导HMGB1参与免疫应答,其抑制剂则可通过不同环节阻抑或影响HMGB1的生物学功能。目前围绕HMGB1受体和抑制剂的相关信号通路尚不完全明晰,值得进一步探索。
[1] Thirugnanam S,Munirathinam G,Veerapathran A,et al.Cloning and characterization of high mobility group box protein 1(HMGB1)of wuchereria bancrofti and brugia malayi[J].Parasitol Res,2012,111(2):619-627.
[2] Churchill M E,Klass J,Zoetewey D L.Structural analysis of hmgd-dna complexes reveals influence of intercalation on sequence selectivity and dna bending[J].J Mol Biol,2010,403(1):88-102.
[3] Joshi SR,Sarpong Y C,Peterson R C,et al.Nucleosome dynamics:HMGB1 relaxes canonical nucleosome structure to facilitate estrogen receptor binding[J].Nucleic Acids Res,2012,40(20):10161-10171.
[4] Zhou H,Ji X,Wu Y,et al.A dual-role of Gu-4 in suppressing HMGB1 secretion and blocking HMGB1 pro-inflammatory activity during inflammation[J].PLoS One,2014,9(3):e89634.
[5] Li J,Kokkola R,Tabibzadeh S,et al.Structural basis for the proinflammatory cytokine activity of high mobility group box 1[J].Mol Med,2003,9(1-2):37-45.
[6] Merkle T,Grasser K D.Unexpected mobility of plant chromatin-associated HMGB proteins[J].Plant Signal Behav,2011,6(6):878-880.
[7] Pisetsky D S.The expression of HMGB1 on microparticles released during cell activation and cell death in vitro and in vivo[J].Mol Med,2014,20:158-163.
[8] Kazama H,Ricci J E,Herndon J M,et al.Induction of immunological tolerance by apoptotic cells requires caspase-dependent oxidation of high-mobility group box-1 protein[J].Immunity,2008,29(1):21-32.
[9] Bianchi M E.HMGB1 loves company[J].JLeukoc Biol,2009,86(3):573-576.
[10] Roussel B D,Mysiorek C,Rouhiainen A,et al.HMGB-1 promotes fibrinolysis and reduces neurotoxicity mediated by tissue plasminogen activator[J].JCell Sci,2011,124(Pt 12):2070-2076.
[11]Schiraldi M,Raucci A,Munoz L M,et al.HMGB1 promotes recruitment of inflammatory cells to damaged tissues by forming a complex with cxcl12 and signaling via cxcr4[J].J Exp Med,2012,209(3):551-563.
[12]He Z W,Qin Y H,Wang Z W,et al.HMGB1 acts in synergy with lipopolysaccharide in activating rheumatoid synovial fibroblasts via p38 mapk and nf-kappab signaling pathways[J].Mediators Inflamm,2013,2013:596716.
[13] Li X,Qin J.Modulation of toll-interleukin 1 receptor mediated signaling[J].J Mol Med(Berl),2005,83(4):258-266.
[14] Todorova J,Pasheva E.High mobility group B1 protein interacts with its receptor RAGE in tumor cells but not in normal tissues[J].Oncol Lett,2012,3(1):214-218.
[15] Han SH,Kim Y H,Mook-Jung I.RAGE:the beneficial and deleterious effects by diverse mechanisms of actions[J].Mol Cells,2011,31(2):91-97.
[16] Dehbi M,Uzzaman T,Baturcam E,et al.Toll-like receptor 4 and high-mobility group box 1 are critical mediators of tissue injury and survival in a mouse model for heatstroke[J].PLoSOne,2012,7(9):e44100.
[17] Fernandez I,Harlow L,Zang Y,et al.Functional redundancy of myd88-dependent signaling pathways in a murine model of histidyl-transfer RNA synthetase-induced myositis[J].J Immunol,2013,191(4):1865-1872.
[18] Rosas-Ballina M,Goldstein R S,Gallowitsch-Puerta M,et al.The selective alpha7 agonist GTS-21 attenuates cytokine production in human whole blood and human monocytes activated by ligands for TLR2,TLR3,TLR4,TLR9,and RAGE[J].Mol Med,2009,15(7-8):195-202.
[19] Nativel B,Marimoutou M,Thon-Hon V G,et al.Soluble HMGB1 is a novel adipokine stimulating il-6 secretion through rage receptor in sw872 preadipocyte cell line:contribution to chronic inflammation in fat tissue[J].PLoSOne,2013,8(9):e76039.
[20]梁旭阳.丙酮酸乙醋对人胰腺癌细胞的抑制作用[D].济南:山东大学,2011.
[21]陈国千,王婷婷,胡志刚,等.小檗碱抑制巨噬细胞HMGB1释放及机理研究[J].国际中医中药杂志,2009,31(2):103-104.
[22] Luo Y,Zhang B,Xu D Q,et al.Protective effect of bicyclol on lipopolysaccharide-induced acute lung injury in mice[J].Pulm Pharmacol Ther,2011,24(2):240-246.
[23] Li W,Ashok M,Li J,et al.A major ingredient of green tea rescues mice from lethal sepsis partly by inhibiting HMGB1[J].PLoSOne,2007,2(11):e1153.
[24]张国英,赵中夫,刘明社,等.烟碱抑制RAW264.7细胞表达和释放HMGB1的机制[J].中国病理生理杂志,2010,26(1):37-41.
[25]常蕴青,赵中夫,刘明社.芍药苷对LPS诱导的RAW264.7细胞HMGB1表达的影响[J].长治医学院学报,2009,23(2):81-84.
[26]陈国千,陆焱,徐明.大黄素抑制高迁移率族蛋白B1胞外释放及其机理[J].江苏医药,2010,36(1):53-55.
[27] Tang D,Kang R,Xiao W,et al.Quercetin prevents lpsinduced high-mobility group box 1 release and proinflammatory function[J].Am JRespir Cell Mol Biol,2009,41(6):651-660.