野战综合手术方舱救治寒区失血性休克模型猪护理配合

邵 兵，曹惠鹃，陈克研，周 锦，张铁铮

沈阳军区总医院麻醉科手术室，辽宁 沈阳 110016

·述 评·

野战综合手术方舱救治寒区失血性休克模型猪护理配合

邵 兵，曹惠鹃，陈克研，周 锦，张铁铮

沈阳军区总医院麻醉科手术室，辽宁 沈阳 110016

目的 总结野战综合手术方舱内救治寒区失血性休克模型猪的护理配合，以进一步提高野战条件下的救护水平。方法 巴马小型猪32头，随机分为4组(每组8头)：对照组、抗休克治疗组、复温组和综合治疗组。4组实验动物均在0～5 ℃低温环境中，15 min内按全身血容量的40%(30 ml/kg)匀速放血制备休克模型后，抗休克治疗组仅进行抗休克治疗，复温组仅进行复温护理，综合治疗组进行抗休克治疗及复温护理，对照组不进行救治。记录每头猪肺动脉温度变化和休克后4 h生存率。结果 医护人员密切配合，快速、及时的抗失血性休克救治和复温的护理配合，明显改善了模型猪的生存率。结论 野战寒区环境下及时有效的抗失血性休克和复温的救治与护理配合，可明显改善模型猪的生存率，为提高野战救护水平提供依据。

野战；寒区；失血性休克；护理配合

现代高技术武器将导致未来战创伤呈现重伤多、多发伤多、复合伤多[1]，减员率高、休克率高和手术率高等多样化的特点，约有32.6%～59.5%的伤员将死于失血性休克和创伤性休克[2-3]。无论在战时，还是在平时，创伤、失血性休克都是严重威胁生命安全的常见而严重复杂病症，其有效救治是危重病医学及其相关学科研究的热点问题之一。近年来，损伤控制外科(damage control surgery，DCS)理念新策略日益受到重视[4]，而随之野战手术方舱[5]的大量实践与应用，将更加明显提高战创伤止血救治成功率。本研究通过建立野战寒区背景下失血性休克模型猪，应用野战手术方舱对其进行抗休克治疗及复温护理，观察每头猪肺动脉温度变化和休克后4 h生存率，探讨应用野战手术方舱救治野战寒区背景下失血性休克模型猪的护理经验。

1 材料与方法

1.1 医疗设备的展开与器械物品的准备 在指定地域展开手术方舱，将方舱内温度保持在27 ℃，外科手术床置于方舱中央，野战麻醉机、氧气瓶、有创血压监测仪、血气分析仪、负压吸引器、血液加温仪、加压输液装置、冷热交换水箱系统、温毯机等分别放置于便于护理操作的位置。备足可能使用的药品、液体及各种设备器械，并将药品、液体37 ℃预温，确保方舱展开后即可使用。寒区低温下装备器材的使用必须严格按照操作要求，确保装备预温规定正常、电源电压稳定平稳后才使用。

1.2 实验动物及分组 健康普通级巴马小型猪32头，体重18～23 kg，雌雄不分，由沈阳军区总医院动物实验中心提供。应用随机数字表法将其随机分为4组，对照组、抗休克治疗组、复温组和综合治疗组，每组8头。4组实验动物均在0～5 ℃低温环境中，15 min内按全身血容量的40%(即按30 ml/kg计算)匀速放血制备休克模型后，抗休克治疗组仅进行抗休克治疗，复温组仅进行复温护理，综合治疗组进行抗休克治疗及复温护理，对照组不进行救治。记录每头猪肺动脉温度变化和休克后4 h生存率。

1.3 模型的建立 巴马小型猪实验前晚禁食，自由饮水。术日，常温2%异氟烷吸入麻醉下右颈内静脉剖开置肺动脉漂浮导管和右股动静脉剖开置入双腔深静脉导管，以监测血流动力学指标、中心体温、采血、放血和血气分析。操作结束时，用0.5%布比卡因对切口进行局部浸润麻醉，然后将实验动物放入特制铁笼内清醒稳定2 h。将清醒稳定的实验动物暴露于低温环境(0～5 ℃)下，在15 min内将所有猪均按全身血容量的40%(即按30 ml/kg计算)匀速放血制备休克模型[6]。抗休克治疗组、复温组及综合治疗组在0～5 ℃观察30 min后由担架送至方舱进行救治，对照组持续在0～5 ℃低温环境中观测不进行救治。

2 护理配合

2.1 失血性休克的护理 (1)迅速建立静脉通道及时补充血容量。选择较粗大的血管，迅速建立两条以上静脉通路(肘正中静脉、头静脉)，有条件可行颈内静脉和股静脉穿刺置管，在穿刺困难及血流动力学不稳定时可做静脉切开，为方便扩充血容量及抢救药物的输入[7]，以增加有效循环血量及纠正水、电解质紊乱及酸中毒，同时保持静脉输液通畅。本研究均采用右股静脉剖开置入双腔深静脉导管进行补液。在失血性休克动物模型中，限制性液体复苏比不复苏或积极复苏可以明显减少实验动物的再出血量和死亡率[8]，因此，对模型猪进行限制性补液，即按2∶1比例快速输入乳酸钠林格注射液及6%羟乙基淀粉，使平均动脉压(MAP)达50～70 mmHg后减慢输液速度并维持MAP水平。(2)保持呼吸道通畅。及时清除口咽鼻异物及分泌物，防止舌后墜，置入口咽通气道，给予氧吸入，缺氧严重者面罩给氧或辅助呼吸，必要时气管插管接麻醉机行机械通气。(3)对生命体征的监测。密切监测生命体征，每5 min测量1次，及时、准确、完整地做好护理记录。严密观察瞳孔、皮肤色泽、SpO2等变化，必要时进行有创血压、肺毛细血管楔压等多种血流动力学监测，以便为诊断治疗提供更多的、必需的临床依据。(4)留置导尿管，密切观察尿量变化。常规对模型猪留置导尿管，观察并记录每小时尿量及颜色，明确休克转复情况。

2.2 复温的护理 (1)温控垫及暖风毯的使用。对模型猪复温前连接肺动脉漂浮导管监测血温，同时放置直肠温探头监测直肠温，随时观察模型猪的体温变化。救治前将温控垫垫于手术床的床单下，连接冷热交换水箱系统，水温设置在39 ℃。将充气升温毯铺盖模型猪周身，连接吹风管与充气式温毯机，温度设置为39 ℃，持续吹暖风开始复温。(2)血液加温仪的应用。开始救治时，应用血液加温仪对综合治疗组输注37 ℃预温的6%羟乙基淀粉20 ml/kg，乳酸钠林格注射液40 ml/kg，将加温仪温度设置在40 ℃[9]，持续对输注液体加温。

3 结 果

3.1 一般情况 4组动物实验前体重、身长、血红蛋白、肺动脉温度及放血量，差异无统计学意义(P>0.05)。见表1。

3.2 4组造模后4 h体温下降程度及生存率比较 各组实验动物造模后4 h肺动脉温度为(35.4±4.5)℃，(35.7±5.1)℃，(36.1±3.8)℃，(37.46±4.2)℃。与对照组比较，综合治疗组造模后4 h肺动脉温度下降程度降低，且差异有统计学意义(P<0.05)。造模后4 h对照组实验动物4只存活，抗休克治疗组和复温组均有6只存活，综合治疗组8只存活。与对照组比较，抗休克治疗组、复温组和综合治疗组造模后4 h存活率增加，且差异均有统计学意义(P<0.05)。分别与抗休克治疗组和复温组比较，综合治疗组造模后4 h存活率增加，且差异有统计学意义(P<0.05)。

表1 4组实验动物一般情况比较

4 讨 论

失血性休克是各种原因导致有效循环血量减少，出现明显血流动力紊乱，导致重要脏器灌注不良，组织细胞处于急性缺血、缺氧状态为特征的综合征。低温暴露使失血性机体中心体温下降更快，当环境温度超过自身温度调节的限度时，机体的多个系统功能及代谢活动将直接受到影响，使休克病程更快进展至失代偿期，并增加短期死亡率[10]。本研究依据北方战区的地域特色，针对战场上最常见的失血性休克，力求解决寒区作战时休克伤病员救治护理的关键问题。

本研究结果表明，在野战寒区背景下，对失血性休克模型猪进行早期抗休克治疗的同时进行复温护理，能够明显改善模型猪的生存率，且效果优于单纯抗休克治疗和单纯复温护理。

综上所述，在野战寒区背景下，失血性休克后早期组织好有效、快速的救治与护理，是能否成功抢救伤员生命的关键。在寒区低温条件下，收治伤员前，医护人员协力展开手术方舱内医疗设备并准备待用器械设备物品，使其处于备战状态。当伤员入方舱进行救治后，要立即建立静脉通道，及时补液，增加有效循环血量，恢复组织灌注，改善各器官系统的功能，在抗休克治疗的同时应用加温仪、温控垫及暖风毯给予复温护理。及时、准确和有序的护理为野战寒区背景下失血性休克的救治提供保障，明显提高救治存活率。

[1] 郑驰，曹勇，高国民，等.从抗震救灾看医院非战争军事行动卫勤保障的特点与规律[J].西南国防医药，2009，19(3):349-350.

[2] 张爱华，陶红，徐燕，等.未控制失血性休克早期复苏的研究进展[J].解放军护理杂志，2004，21(6):40-42.

[3] 霍煜，孙景阳，姚天明，等.野战心血管急重伤症救治方舱在伤员救治中的作用[J].人民军医，2011，54(3):177-178.

[4] Ahmed N.Comment on the article“Damage eontrol surgery before organ harvesting”[J].J Trauma，2007，63(2):455-456.

[5] 葛羡玲，梁明，姚天明，等.野战综合手术方舱开展损伤控制性外科的可行性探讨[J].医疗卫生装备，2013，34(5):93-94.

[6] Hildebrand F，Andruszkow H，Huber-Lang M，et al.Combined hemorrhage trauma models in pigs-current state and future perspectives[J].Shock，2013，40(4):247-273.

[7] 乔燕.创伤性休克的急救与护理[J].延安大学学报，20l1，9(2):72-73.

[8] Kim SH，Stezoski SW，Safar P，et al.Hypothermia and minimal fluid resuscitation increase survival after uncontrolled hemorrhagic shock in rats[J].J Trauma，1997，42(2):213-222.

[9] Brugger H，Putzer G，Paal P.Accidental hypothermia[J].Anaesthesist，2013，62(8):624-631.

[10] Castellani JW，Sawka MN，DeGroot DW，et al.Cold thermoregulatory responses following exertional fatigue[J].Front Biosci (Schol Ed)，2010，2(6):854-865.

本刊编辑部E-mail：csyjwzbyx@163.com

The Synthesis Operation Application in Field Shelter Nursing Cooperation in the Treatment of Swine Model of Hemorrhagic Shock in Cold Region

SHAO Bing，CAO Huijuan，CHEN Keyan，ZHOU Jin，ZHANG Tiezheng.

Department of Anesthesiology Laboratory，General Hospital of Shenyang Millitary Region(Shenyang 110016，China)

Objective To summarize nursing cooperation in the treatment of hemorrhagic shock swine model under hypothermia to further improve the level of aid under the field comprehensive operation application in battle field.Methods 32 pigs were randomized into four groups：control group(C)、treatment group 1 to 3(T1，T2，T3)(eight per group).In the cold environment(0～5 ℃)，40% blood volume is lost within 15 minutes to induce hemorrhagic shock.Group T1 was using anti-shock treatment，group T2 was with rewarming care，and group T3 was both with anti-shock treatment and rewarming care.Group C was without any treatments. Each pig's pulmonary artery temperature change and survival rate after four hours were recorded.Results The closely cooperation between doctors and nurses which fastly and timely treated hemorrhagic shock and rewarming with care significantly improved the survival rate of pigs.Conclusion In battle field of hypothermia environment，the timely and effective nursing cooperation in treating and rewarming for hemorrhagic shock may significantly improve the survival rate of pigs to provide the basis for improving the level of battle field first aid.

battle field；cold region；hemorrhagic shock；nursing cooperation

全军后勤科研重点项目(BWS12J008)

邵兵，本科，主管护师，主要从事手术室护理工作。

曹惠鹃，E-mail：caohuijuan12@sina.com

2095-5561(2014)05-0266-03

R 826

A

2014-05-06