李 健,陈耀星,王子旭,曹 静,董玉兰,陈树林
(1.河南科技大学动物科技学院,河南 洛阳 471003;2.中国农业大学动物医学院,北京 100193;3.西北农林科技大学动物医学院,陕西 杨凌 712100)
各种促凋亡信号(如环境不利因素、损伤、辐射、化疗药物、兴奋性氨基酸、死亡配体等)都引起细胞内源性或外源性活性氧(ROS)升高或氧化还原平衡改变,这可能作为信号触发凋亡信号转导途径。当凋亡启动后,ROS进一步升高可能加速凋亡过程。目前发现细胞凋亡存在3条途径,即线粒体通路、内质网通路和死亡受体通路均与ROS密切相关。研究证实,一些植物提取物和环境激素引发的生殖损害多与氧化应激有关[1-2]。精液中脂质过氧化物含量与精子运动力成反比,同时精子顶体对活性氧(ROS)非常敏感,因此机体过氧化水平与雄性生殖密切相关[3]。前期研究发现,炔雌醚显著下降,小鼠抗氧化酶活性、活性氧显著增加,机体抗氧化能力下降,因此,提高机体抗氧化能力是保护雄性生殖的有效途径。维生素E与其他抗氧化剂如维生素C、谷胱甘肽及微量元素硒(Se)等协同作用,可使其清除和防御ROS的过氧化损伤更加有效;以及抗衰老、增强机体免疫力等作用[4-5]。本试验通过炔雌醚诱导小鼠生殖损伤,研究维生素E对雄性生殖损伤的保护作用。
1.1.1 实验动物 15只成年雄性昆明小鼠,购自河南省实验动物中心,平均体重30g±2g,自由采食、饮水,于每天14h光照,10h黑暗的条件下进行饲喂。
1.1.2 试剂 姬姆萨染液、橄榄油、血球计数器、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSHPx)、总抗氧化能力(T-AOC)、丙二醛(MDA)及一氧化氮(NO)试剂盒,安迪生物科技有限公司产品。
1.2.1 动物处理 经7d适应后,随机分为3组(每组5只)。A组为对照组,灌胃50μL橄榄油,B组灌胃50μL橄榄油含1mg/kg炔雌醚,C组灌胃50μL橄榄油含1mg/kg炔雌醚和100mg/kg维生素E,每天1次,连续3周。处理结束后,将小鼠麻醉处死,取双侧睾丸、双侧附睾、精囊腺称重,计算器官相对重量:相对重量=器官重量(g)/体重(kg)。
1.2.2 睾丸抗氧化能力检测 一侧睾丸匀浆处理后用ELISA试剂盒检测抗氧化能力。
1.2.3 精子数量、活率、顶体完整及畸形率检测
将一侧附睾尾剪开,使精液在37.5℃生理盐水中自由散开。根据精子密度的高低稀释精液,准确记录精液稀释倍数。然后吸取少量精液,用血球计数器进行精子密度检测。取少许精液制作抹片,进行Giemsa染色,观察顶体反应和精子畸形情况。精子数量以×106/mL表示(n=5),精子活率、畸形率、顶体完整率分别以百分数(%)表示。
1.2.4 数据统计 以上数据用SPSS12软件包进行单因素方差分析(One Way ANOVA),以平均值±标准差表示,P<0.01为差异极显著,P<0.05为差异显著。
与对照组相比,炔雌醚组 SOD、GSH-Px、TAOC的活性分别为 105.41U/mL、17.82U/L、4.62U/mL,显著下降;MDA、NO含量分别为5.62nmol/mL、14.58μmol/L,显著升高。100mg/kg维生素E显著抑制了炔雌醚引起的MDA、NO含量升高,并改善了炔雌醚引起的SOD、GSH-Px、TAOC活性下降,恢复抗氧化能力(P<0.01)(表1)。
与对照组相比,炔雌醚组睾丸、附睾、精囊腺、前列腺的重量分别下降34.24%、48.02%、46.15%和43.48%(P<0.01);维生素E显著增加炔雌醚处理后小鼠睾丸、附睾、精囊腺、前列腺的重量(P<0.01)(表2)。
由表3可见,炔雌醚引起小鼠精子品质显著下降。精子数量、精子活率及顶体完整率分别下降到13.24×106、48.21%和60.51%;精子畸形率升高到27.31%。100mg/kg维生素E对1mg/kg炔雌醚处理后小鼠精子数量具有一定的恢复作用,显著升高精子数量、精子活率及顶体完整率,并降低精子畸形率,使各项精子指标接近于对照组水平。
表1 维生素E恢复炔雌醚处理小鼠睾丸抗氧化能力的比较Table1 Comparison of antioxidant capacity with quinestrol treatment before and after recovery of vitamin E
表2 维生素恢复炔雌醚处理小鼠生殖器官重量的比较Table2 Comparison of organ weight with quinestrol treatment before and after recovery of vitamin
表3 维生素恢复炔雌醚处理小鼠精液品质的比较Table3 Comparison of the semen quality with quinestrol treatment before and after recovery of vitamin
大量研究证实,环境雌激素可造成很多雄性生殖系统疾病,胚胎期、出生前后或成年动物接触己烯雌酚(DES)均可导致雄性生殖损害[6]。炔雌醚也能够破坏雄性动物生殖器官的发育和功能[7-8]。维生素E是外源抗氧化剂,能够提高3β-羟脱氢酶、17β-羟脱氢酶活性,并提高机体抗氧化水平,增强对ROS的清除作用,缓解氧化损伤,同时升高血浆睾酮含量[9]。Li XM 等[10]研究证实,维生素E可升高SOD、CAT、GSH-Px及 T-AOC的活性、增强老龄小鼠的抗氧化能力。马爱团[11]证实维生素E能够有效对抗DES诱导的氧化应激,提高机体抗氧化能力,降低脂质过氧化物的含量,增加生殖器官的重量并恢复器官形态和组织结构,从而缓解生殖损伤。高春燕等[12]发现维生素E对多种自由基均有不同程度的清除作用,清除能力相当。本试验结果显示,应用炔雌醚连续3周处理雄性小鼠导致睾丸、附睾、精囊腺和前列腺萎缩,重量均显著降低,而采用维生素E处理后,明显改善了炔雌醚引起的生殖损伤。维生素E对精子指标也有很大改善,100mg/kg维生素E显著提高精子数目,降低精子畸形,但补充维生素E组与对照组仍有一定差距。Luo Q等[13]研究发现,维生素E对半侧睾丸摘除后大鼠生精的恢复作用,结果连续14d应用10mg/kg显著增加大鼠精子数量及精子活力,两项指标均恢复至对照组水平,推测维生素E的应用时间对精子恢复有一定影响。本试验结果表明,维生素E显著提高体内SOD、GSH-Px及 T-AOC活性,降低 MDA 与 NO含量,增强抗氧化能力。因此,维生素E对雄性生殖具有保护作用,抗氧化是生殖保护的有效途径之一。
[1]马振秋,黄晓佳,张纬萍,等.二氢青蒿素抑制大鼠胶质瘤C6细胞增殖和诱导凋亡[J].浙江大学学报,2007,36:267-272.
[2]李 健,司丽芳,位志国,等.辛基酚对成年雄性小鼠血浆与脾抗氧化功能的影响[J].动物医学进展,2012,33(3):29-32.
[3]Williams A C,Ford W C L.Relationship between reactive oxygen species production and lipid peroxidation in human sperm suspensions and their association with sperm function[J].Fertil Steril,2005,83:929-936.
[4]Hsu P C,Liu M Y,Hsu C C,et al.Effects of vitamin E and/or C on reactive oxygen species-related lead toxicity in the ratsperm[J].Toxicology,1998,128:169-179.
[5]Kumar J S,Banudevi S,Sharmila M,et al.Effects of vitamin C and E on PCB(Aroclor 1245)induced oxidative stress,androgen binding protein and lactate in rat Sertoli cells[J].Reprod Toxicol,2004,19:201-208.
[6]Qiu C H,Ohe M,Koibuchi N,et al.Apoptosis in the epididymal epithelium of adult male golden hamster exposed to diethylstilbestrol[J].J Histochem Cytochem,2004,52:187-192.
[7]Li J,Wang H,Zhang J,et al.Abnormal secretion of reproductive hormones and antioxidant status involved in quinestrol induced reproductive toxicity in adult male rat[J].Tissue and Cell,2014,46(1):27-32.
[8]Lv X,Guo Y,Shi D.Effects of quinestrol on reproductive hormone expression secretion and receptor levels in female Mongolian gerbils(Meriones unguiculatus)[J].Theriogenology,2012,77:1223-1231.
[9]Gupta R S,Kim J,Gomes C,et al.Effect of ascorbic acid supplementation on testicular steroidogenesis and germ cell death in cadmium-treated male rats[J].Mol Cell Endocrinol,2004,221:57-66.
[10]Li X M,Li X L,Zhou A G.Evaluation of antioxidant activity of the polysaccharides extracted fromLycium barbarumfruits in vitro[J].Eur Polym J,2007,43:488-497.
[11]马爱团.己烯雌酚的生殖毒理及抗氧化中药成分的生精保护作用[D].北京:中国农业大学,2008.
[12]高春燕,田呈瑞,周 默.枸杞多糖体清除自由基活性研究[J].三峡大学学报,2005,27(5):456-458.
[13]Luo Q,Li Z,Huang X,et al.Lycium barbarumpolysaccharides:Protective effects against heat-induced damage of rat testes and H2O2-induced DNA damage in mouse testicular cells and beneficial effect on sexual behavior and reproductive function of hemicastrated rats[J].Life Sci,2006,79:613-621.