AmpC β-内酰胺酶致细菌耐药机制的研究进展

2014-03-03 08:52唐婧娴综述黄永茂审校
西南军医 2014年3期
关键词:内酰胺酶头孢菌素头孢

唐婧娴 综述,黄永茂 审校

随着医学水平的不断进步,抗菌药物被广泛应用于临床,特别是广谱β-内酰胺类抗菌药物的大量使用,导致越来越多耐药菌株的产生,给临床治疗带来极大挑战。而含AmpC β-内酰胺酶的耐药菌株则是其中的代表之一[1]。自1973 年第一株AmpC β-内酰胺酶被发现至今,产AmpC酶的耐药菌株的病例不断被报道。此类菌株对第一至第三代头孢菌素、头霉素、氨曲南耐药,外膜蛋白丢失的菌株甚至出现对碳青霉烯类抗菌药物的耐药,且不被克拉维酸等β-内酰胺酶抑制剂所抑制,给临床抗菌治疗带来非常大的困难。本文对AmpC β-内酰胺酶的生物学特性、分类的研究进展作一综述。

1 AmpC β-内酰胺酶生物学特性

AmpC β-内酰胺酶又称头孢菌素酶,是由革兰氏阴性杆菌产生的不被克拉维酸抑制的“丝氨酸”头孢菌素酶,属于C类酶,相当于Richmond-Sykes class I,BJM group 1[2]类酶。多数肠杆菌属、沙雷氏菌属、枸缘酸菌属、摩根氏菌属均可产生AmpC β-内酰胺酶。初次是1967 年由Henwessey 在一种阴沟肠杆菌中发现的可诱导的β-内酰胺酶,即目前所知的染色体介导的AmpC酶。此后,各种质粒介导的AmpC酶又在全世界范围内发现[3]。AmpC 酶的作用机制目前还没有完全明确,它的出现与细胞壁肽聚糖循环相关,由存在于多种革兰氏阴性杆菌中的amp操纵子所控制,由结构基因ampc 基因所编码,至少有ampr、ampd、ampg 和ampe 四个不连锁的调节基因参与了AmpC酶的表达。各种AmpC酶诱导剂的使用如头孢西丁、头孢孟多、亚胺培南、克拉维酸等均可以诱导AmpC酶的大量产生。随着超广谱β-内酰胺类抗菌药物的大量使用,自然状态下的野生菌株发生着高频率的去抑制突变,表现为敏感的野生型菌群中出现了去抑制突变而高产AmpC酶的耐药菌株。目前,产AmpC酶的菌株对第一至第三代头孢菌素、氨基糖苷类、头霉素、氨曲南均表现较高的耐药率,部分外膜蛋白丢失的菌株甚至出现对碳青霉烯类抗生素耐药。

2 AmpC β-内酰胺酶的分类

2.1 染色体介导的AmpC 酶 染色体介导的AmpC酶根据产酶水平的高低可分为诱导高产酶、持续高产酶和持续低产酶,而根据ampc 基因是否具有诱导性分为诱导型AmpC 酶和结构型AmpC 酶。目前已知的介导机制包括以下三种:(1)ampc基因的拷贝数增加;(2)衰减子区域序列突变导致ampc 基因转录增加;(3)获得插入序列中含有强启动子。

诱导型高产酶即正常条件下产少量酶,而当有诱导作用的β内酰胺类抗生素存在的条件下(如头孢西丁、头孢孟多、亚胺培南等),AmpC 酶的产量明显增加100~1000倍。AmpC酶的诱导合成依赖ampr基因的调节。ampr 基因的缺失突变会使AmpC 酶丧失诱导特异性,但此时ampc 基因的表达水平会比非诱导基础状态提高2~3 倍。因此ampr 基因在非诱导状态作为ampc 基因转录的抑制因子,而在诱导状态下却成为ampc 基因的激活因子。ampr 基因在ampd 基因的调控下从激活子状态变为抑制子状态,从而抑制ampc基因的表达。当ampd基因发生突变后,产生有缺陷的ampd蛋白,失去抑制作用而使ampr基因处于激活状态,从而导致ampc 基因的大量表达[4]。而ampg 基因编码产生AmpC 酶影响细胞壁肽,使其转化为诱导AmpC 酶产生的胞浆信号分子[5]。ampg 在有β-内酰胺诱导剂存在时,向胞浆内传递诱导信号,诱导AmpC 酶的大量合成,而ampg 的缺失将抑制酶的诱导合成。

结构型AmpC 酶即大肠埃希菌呈现出与诱导型AmpC酶不同的表达模式-结构调节。大肠埃希菌野生株携带的ampc基因由于缺乏ampr基因的调控,而不具有诱导表达能力[6]。AmpC酶在大肠埃希菌中的表达是由ampc基因上游一个弱启动子以及转录衰减子序列进行调控,致使野生株大肠埃希菌低水平表达AmpC酶,但当染色体弱启动子突变为强启动子或衰减子突变使其稳定性减低,可导致ampc mRNA 的过度表达,从而引起AmpC 酶的大量增加。而ampc 基因拷贝数的增加和获得的插入序列中含有强启动子等因素,也可以引起AmpC酶的高产[7]。

2.2 质粒介导的AmpC 酶 AmpC 酶不仅可由染色体介导,还能通过质粒介导。并且通过质粒复制、结合子、转座子[8]、整合子[9]移位,在同种属和不同种属的革兰氏阴性菌之间进行传播,引起耐药菌株的大范围暴发流行[10]。现质粒介导的AmpC 酶在世界各地不同国家之间有不同的分布类型。质粒介导的AmpC 酶在分子结构上与染色体介导的AmpC 酶有一定的同源性(37%~99%),而不同质粒介导的AmpC酶之间也有一定的同源性。有研究表明,来源于同一菌种的AmpC 酶的同源性高,而来源于不同菌种的AmpC 酶的同源性低[11]。质粒介导的AmpC 酶在底物与抑制剂特性上与染色体介导的AmpC酶相似。

质粒介导的AmpC 酶主要存在于因缺乏AmpC酶结构基因或调节基因而不具诱导性染色体编码AmpC 酶细菌中,常在大肠埃希氏菌[12]、肺炎克雷伯菌、产酸克雷伯菌、产气肠杆菌、沙门菌及奇异变形杆菌中持续高水平表达。据其遗传学关系及氨基酸序列的同源性,可分为:弗劳地枸橼酸杆菌群、肠杆菌属群、摩氏摩根菌群、蜂房哈夫尼亚菌群、气单胞菌群、起源未定菌群等。质粒介导的AmpC 酶具有AmpC酶典型生化特性和抗药性,但其水解底物范围更广,耐药质粒往往同时携带氨基糖甙类、氯霉素、磺胺甲氧卞氨嘧啶、四环素等抗生素的耐药基因,常呈现多重耐药的特点。有研究发现,外膜蛋白缺失的菌株,若同时表达质粒介导的AmpC酶,甚至可以产生对碳青霉烯类抗菌药物的耐药[13]。

位于质粒上的AmpC 酶基因大小不等。一些质粒可同时含有几种类型的β-内酰胺酶基因。该酶多见于经常使用抗菌药物,特别是头孢西丁、拉氧头孢、头孢替坦、头孢美唑和碳青霉烯类抗菌药物的重症细菌感染者,尤其是经历过手术等侵入性操作、糖尿病、白细胞减少或肿瘤患者的细菌感染,经常使用免疫抑制剂治疗的患者(肝脏、肾脏移植)、免疫缺陷的患者的细菌感染,以及感染发生前预防性应用抗生素的患者。这些质粒往往同时携带有广谱酶如SHV-1、TEM-1,甚至同时携带有超广谱酶的情况也非常多见。

AmpC酶的产生对临床用药造成了极大的挑战,特别是质粒介导的AmpC 酶,其横向传播和突变,引起耐药菌株的大范围暴发流行,给临床合理使用抗生素敲响了警钟。合理的使用第三代头孢菌素和根据药敏实验选用抗生素,是减少高产AmpC酶菌株引发耐药的关键。对AmpC酶耐药机制的熟悉和理解,不仅能有效的指导临床合理用药,也能为新药的开发提供必要的基础。

[1]Jones RN.Important and emerging β-lactanase-mediated resis-tances in hospital-based pathogens;the AmpC enzymes[J].Di-agn Microbiol Infect Dis,1998,31(3):461-446.

[2]Bush K,Jacoby GA,Medeiros AA.A functional classification scheme For β-lactamases and its correlation with molecular structure[J].Antimicrob Agents Clemother,1995,39(6):1211-1233.

[3]Philippon A,Arlet G,Jacoby GA.AmpC-type β-lactamases[J].Antimicrob Agents Chemother,2000,46:1-11.

[4]Korfmann G,Sanders CC,Moland ES.Altered pheno-types associated with ampD mutations in Enterobacter cloacae[J].Antimicrob Agents Chemother,1991,35(2):358-364.

[5]Hanson ND,Moland TS,Hossain A,et al.Unusual SHV-9 and OX-A-30 beta-lactama[J].J Antinicrob Chemother,2002,49(6):1011-1014.

[6]Corvec S,Caroff N,Espaze E,et al.-ll Mutation in the ampC promoter increasing resistance to beta-lactams in a clinical Esche-richia coli strain[J].Antimicrob Agents Chemother,2002.46(10):3265-3267.

[7]Siu LK,Lu PL,Chen JY,et al.High-level expression of ampC be-ta-lactamase due to insertion of nucleotides between-10 and-35 promoter sequences in Escherichia coli clinical isolates;cases not responsive to extended-spectrum-cephalosporin treatment[J].Antimi-crob Agents Chemother,2003,47(7);2138-2144.

[8]Stapleton PD,Shannon KP,French GL.Carbapenem resistance in Es-cherichia coli associated with p;asmid-determined CMY-4 bete-lacta-mases production and loss of an ourer membrane protein[J].Antimicrob Agents Chemother,1999,43:1206-1210.

[9]Verdet C,Arlet G.Bamaud G,et al.A novel integron in Salmonella enterica serovar Enteritidis,arrying the bla(DHA-1)gene and its regulator gene ampR,originated from Morganella morganii[J].Antimicrob Agents Chemoth-er,2000,44:222-225.

[10]Ingram PR,INglis TJ,Vanzetti TR,et al.Comparison of methods for ampC beta-lactamase detection in Enterobacteriaceae[J].J Med,Microbiol,2011,60(Pt 6):715-721.

[11]Perez FJ,Hanson ND.Detection of plasmid-mediated AmpCβ-lactamase genes in clinical isolates by using multiplex PCR[J].J Clin Micro,2002,44(6):2153-2162.

[12]Daniela Cejas,Gabriel Gutkind,Marcela Radice et al.Plasmid-Encoded AmpC(pAmpC)in Enterobacteriaceae:epidemiology of microorganisms and resistance markers[J].Revista Argentina de Microbiología,2012,44:182-186.

[13]Mammeri H,Guillon H,EbF et al.Phenotypic and biochemical comparison of the carbapenem-hydrolyzing activities of five plasmid-borne AmpC β-lactamases[J].Antimicrob.Agents Chemother,2010,54(11):4556-4560.

猜你喜欢
内酰胺酶头孢菌素头孢
产β-内酰胺酶大肠杆菌研究现状
头孢菌素类与多种西药联合使用所致的不良反应的临床影响分析
头孢吡肟与头孢呋辛治疗癫痫患者肺部感染的疗效比较
婴幼儿下呼吸道产超广谱β-内酰胺酶细菌感染临床分析
头孢菌素使用的三大误区
不是所有的头孢,孩子都可以随便吃
头孢菌素类抗生素的不良反应分析
依替米星联合三代头孢菌素治疗老年重症社区获得性肺炎的效果观察
产β-内酰胺酶大肠埃希菌的临床分布及耐药性分析
院内鲍曼不动杆菌耐药谱分析及相关β-内酰胺酶基因分布情况调查