李 坤 丁 宁
近些年来,随着肿瘤的发病机制在基因水平上的逐步阐明,对肿瘤进行基因治疗正成为肿瘤治疗的又一重要策略。目前对肿瘤的基因治疗,是指通过操作遗传物质(无论是人类本身的或外源的)来干预肿瘤的发生、发展和进程,包括纠正人自身基因结构或功能上的错乱,杀灭病变细胞或增强机体清除病变细胞的能力等,从而达到治疗肿瘤的目的。其中深入了解靶基因的功能,寻找要害靶分子,对之实施打击或补充是研究的重要内容。
核糖核酸酶抑制因子(ribonuclease inhibitor,RI)是一种相对分子质量为50×103的酸性糖蛋白,广泛存在于细胞质可溶性部分。目前研究发现,大多数实体瘤能分泌血管生成素(angiogenin,Ang)刺激血管的形成来供应癌细胞生长和转移[1-3]。而RI能与Ang通过1∶1化学计量比紧密结合并抑制其活性,从而可以抑制实体瘤血管的形成及肿瘤的生长、转移[4-6]。另有研究发现,血管生成素具有促进肿瘤细胞增殖功能,因而RI可能成为肿瘤靶向治疗的有效药物[7]。为进一步研究RI的作用机制,本研究将已构建的过表达人RI基因的pLNCX-EGFP-C1-hRI载体,用上清感染法感染到NIH3T3细胞中,用荧光显微观察法和Western blot法检测egfp-hRI基因在NIH3T3细胞的表达,为下一步基因治疗研究奠定基础[8]。
反转录病毒pLNCX质粒购自美国CLONTECH公司。pLNCX-EGFP-C1-hRI质粒是由本室构建,NIH3T3包装细胞购自中国科学院上海细胞库(如图1所示)。
图1 本室构建的pLNCX-EGFP-C1-hRI质粒
质粒中量提取试剂盒购自Omega公司;DL2000 DNA Marker购自宝生物工程(大连)有限公司;Trizol、Lipofectamine 2000转染试剂购自美国Invitrogen公司;G418购自美国Merk公司;RPMI 1640培养基、胰蛋白酶购自美国Gibco公司;胎牛血清购自杭州四季青血清生物制品有限公司;PVDF(聚偏二氟乙烯)膜购自美国Biosciences 公司;Polybrene、ECL化学发光显色试剂盒购自美国Sigma公司;兔抗人核糖核酸酶抑制因子抗体由本实验室制备;RIPA蛋白裂解液购自南京KEYGEN凯基生物。
包装细胞PA317、小鼠NIH3T3细胞分别于含10%的胎牛血清的RPMI1640培养液中,37 ℃、5%的CO2的条件下培养。设置G418梯度质量浓度为0,100 mg/L,200 mg/L,300 mg/L,400 mg/L,500 mg/L,600 mg/L,700 mg/L,800 mg/L,900 mg/L,1000 mg/L,1100 mg/L,1200 mg/L,确定G418筛选浓度:PA317细胞为800 mg/L,NIH3T3细胞为400 mg/L。
细胞按0.5~2.0×105铺板于24孔板中,至细胞汇片至80%时,用Lipofectamine 2000转染试剂按文献[9]进行转染,分为2组:pLNCX-EGFP-C1转染组(对照组)、pLNCX-EGFP-C1-hRI转染组(实验组)。72 h后用800 mg/L G418筛选2~3周,获得抗性单克隆后,繁殖、扩增、鉴定,选择最高抗性克隆留种。其中,对照组阳性细胞命名为PA317/EGFP细胞,实验组阳性细胞命名为PA317/EGFP-hRI细胞,分别收集细胞上清液,采用0.45 μm滤膜过滤,于-80 ℃保存备用。
取对数生长期细胞按1.0×105铺板于6孔板中,至细胞达到融合度约60%左右时,分别加入1 ml PA317/EGFP和PA317/EGFP-hRI细胞上清、终浓度为2 mg/L的Polybrene。每12 h感染1次,连续感染3次。实验分为2组:PA317/EGFP感染组(对照组)、PA317/EGFP-hRI感染组(实验组),每组3复孔。感染48 h后,更换含400 mg/L G418的选择培养液,连续筛选2周后,挑取G418的抗性单克隆,繁殖、收获细胞,并用荧光显微镜观察阳性重组质粒在NIH3T3细胞中的表达。同时设正常细胞NIH3T3作为阴性对照。
收获细胞,用含1 mMPMSF的RIPA蛋白裂解液提取蛋白,用BCA法蛋白定量。分别取60 μg蛋白电泳、转膜,5%小牛血清封闭4 ℃过夜,一抗孵育2 h,二抗室温孵育2 h,ECL化学发光试剂盒发光。曝光时间0.5~5 min。由Bio-Rad凝胶成像仪摄取凝胶图像,用Image LAbTM软件进行定量分析。
NIH3T3细胞本身绿色荧光表达微弱(如图2a所示);PA317/EGFP-hRI感染组(实验组),在细胞质中可观察到重组质粒pLNCX-EGFP-C1-hRI表达的绿色荧光较强的分布(如图2b所示);PA317/EGFP感染组(对照组),在全细胞中都可观察到重组质粒pLNCX-EGFP-C1表达的绿色荧光分布(如图2c所示)。
图2 荧光显微镜检测阳性重组质粒在NIH3T3细胞中的表达(×400)
结果表明,空白组(阴性对照)细胞可见RI基因和内参GAPDH基因条带,RI基因相对表达强度分别为0.13±0.037;PA317/EGFP-hRI感染组(实验组)和PA317/EGFP感染组(对照组)皆可见egfi-hRI基因和内参GAPDH基因条带,egfi-hRI基因相对表达强度为0.81±0.28,与空白组和对照组相比,分别增加了83%和81%(如图3所示)。
图3 蛋白质印迹法检测hRI的表达
目前,肿瘤基因治疗已经取得一些长足性进步,基因治疗已经成为肿瘤治疗研究的一种新手段[9-11]。而肿瘤基因治疗载体分为病毒性载体和非病毒性载体。其中逆转录病毒载体是最常见的病毒载体,具有感染效率高、整合稳定等优点,但同时具有产生野生型病毒的危险等缺点[12-13]。本试验采用病毒上清感染方法,虽然转染效率低,但从安全性、可操作性、简便性考虑,似乎更符合临床基因治疗的实际需要。
RI位于胞浆内,定位于染色体11p15.5区,分子质量约为50×103[14-15]。本研究用polybrene介导上清感染法将过表达hRI的表达载体pLNCX-EGFP-C1-hRI(绿色荧光蛋白融合hRI基因载体)转染到NIH3T3细胞中。因为hRI为胞浆蛋白,在荧光显微镜下直接观察到egfp-hRI基因在NIH3T3细胞质中大量表达,而转染空载体pLNCX-EGFP-C1的绿色荧光在NIH3T3全细胞中均匀分布,这与EGFP无定位信号有关。荧光显微镜检测的结果表明,pEGFP-C1-hRI表达质粒的表达成功。Western blot检测egfp-hRI基因在蛋白质水平的表达增加。EGFP相对分子质量约为29×103,hRI蛋白分子质量约为50×103,EGFP融合蛋白分子质量约为79×103。Western blot法检测结果证明egfg-hRI基因被表达,从而表明建立产生绿色荧光蛋白融合人核糖核酸酶抑制因子的NIH3T3包装细胞系。
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