apoE-/-小鼠颈总动脉斑块不规则趋化因子和分子标志物CD11c的表达

2013-11-08 07:03许增祥卢林明张允贵张根葆
中国医学科学院学报 2013年5期
关键词:趋化因子阳性细胞斑块

许增祥,卢林明,张允贵,张根葆

皖南医学院 1病理学教研室 2病理生理学教研室,安徽芜湖241002

动脉粥样硬化 (atherosclerosis,AS)是一种与脂质代谢紊乱相关的免疫炎症性疾病。在粥样斑块中巨噬细胞和T细胞是主要成分。有研究显示树突状细胞 (dendritic cells,DCs)也存在于AS斑块内,在AS发病过程中由不成熟状态逐步发生成熟,影响AS的起始和进展[1]。未成熟DCs不表达CD11c,但可低水平表达一些黏附分子,成熟后可表达CD11c和一些协同刺激信号,如MHCⅡ、CD83、CD86等。DCs作为免疫反应的枢纽,是体内激活初始T细胞的主要抗原提呈细胞。它主要来源于血液中的单核细胞。单核细胞是AS斑块中泡沫细胞的前体细胞,在向炎症部位迁移的过程中需要趋化因子和黏附分子的参与。趋化因子Fractalkine(FKN)是目前发现的CX3C家族中的唯一成员,研究提示FKN在AS的炎症机制中可能发挥作用。本研究以高脂饲养的apoE-/-小鼠为动物模型,观察在AS斑块中FKN表达和DCs侵润的情况,并探讨FKN在趋化DCs进入血管内膜参与AS的可能机制。

材料和方法

材料 6~8周龄雄性apoE-/-小鼠24只,购自北京大学医学部 (许可证号:SCXK京2002-0001);按照完全随机法平均分为实验组和对照组,实验组饲以高脂饲料 (含5%的猪油、1%胆固醇);对照组饲以普通饲料。每只小鼠每天给予5 g饲料,自由饮水,水为pH值2.8~3.0消毒水。即用型免疫组织化学试剂盒 (SP法)、多克隆兔抗小鼠FKN抗体购自武汉博士德生物工程有限公司;多克隆兔抗小鼠CD11c抗体购自深圳达科为生物技术有限公司。

血清脂质测定 饲养12周后,麻醉后摘眼球取血,离心,收集血清,采用酶法并用全自动生化分析仪测定血清中三酰甘油、总胆固醇、高密度脂蛋白胆固醇和低密度脂蛋白胆固醇的浓度。

苏丹Ⅳ大体染色 每组各取3只小鼠,选取左侧颈总动脉开始段约1cm;磷酸盐缓冲液中仔细分离血管周围的结缔组织,用细铁丝穿过血管段,小心剪开血管。苏丹Ⅳ染色步骤:70%酒精2 min,苏丹Ⅳ染液40 min,80%酒精20 min,自来水冲洗1 h。将血管内皮向上平铺在载波片上,拍照。

HE染色 选取apoE-/-小鼠左侧相同部位颈总动脉约1 cm长血管条,石蜡包埋后,连续切片,蜡片厚度为5 μm,待有斑块后连续切片约100张,每隔10张选取1张,行HE染色。在高倍镜图像下,应用Image J软件测量血管原管腔面积和现管腔面积,血管狭窄率评价:血管狭窄率=(原管腔面积-现管腔面积)/原管腔面积,每条血管观察10个动脉断面,取其平均值。

免疫组织化学染色 SP法检测斑块处FKN及CD11c(DCs标记物)阳性细胞的表达,FKN抗体浓度1∶150,CD11c抗体浓度1∶100,按免疫组织化学试剂盒说明书操作,最后用二氨基联苯胺在显微镜下控制着色,苏木素衬染。阳性结果判定:细胞质或细胞膜出现清晰淡黄色至棕褐色颗粒着色为阳性信号。结合染色强度和阳性细胞数进行分级。2人双盲法观察切片,低倍镜下选取染色最强的部位,高倍镜下观察,每张切片随机选取10个高倍镜视野。按着色程度计分:细胞着色与背景相似者计为0分;着色浅、略高于背景者计为1分;中度色、明显高于背景者计为2分;强染、着色很深者计为3分。按阳性细胞比例计分:视野中阳性细胞数<5%计0分,5% ~<25%计1分,25% ~<50%计2分,50% ~<75%计3分,≥75%计4分。两项计分相乘后分为4级:0分为阴性(-),1~4分为弱阳性 (+),5~8分为阳性 (++),9~12分为强阳性 (+++)。若两个人观察结果相差3分则重新评定。计数CD11c+细胞数量时,以着色至少略高于背景者为准,随机数10个高倍镜视野,不足10个高倍镜视野的数整张切片;所得数据取平均值。

统计学处理 应用统计学软件SPSS 12.0进行统计分析,所有数据均用±s表示。P<0.05为差异具有统计学意义。

结 果

血脂测定结果 高脂饲养apoE-/-小鼠12周后,摘眼球取血,采用酶法并用全自动生化分析仪测得血清中三酰甘油、总胆固醇和低密度脂蛋白胆固醇的浓度均高于普食组 (P<0.05)(表1)。

AS病变程度分析结果

苏丹Ⅳ染色结果:apoE-/-小鼠颈总动脉经苏丹Ⅳ染色后显示为红色,结果显示,实验组动物斑块面积百分数 (12.42±1.25)%是对照组 (3.74±1.02)%的近4倍。实验组颈总动脉斑块面积明显增大 (图1A、1B)。

HE染色结果:每条血管观察10个动脉横断面,计算其血管狭窄率,并取平均值。实验组血管狭窄率为(38.58±3.82)%(n=8),是对照组 (13.39±2.74)%(n=9)的近3倍。与对照组相比,实验组血管狭窄程度更加严重 (P<0.05)(图1C/1D)。

表1 apoE-/-小鼠血脂测定结果 (n=12,±s,mmol/L)Table 1 The blood lipids of apoE-/-mice(n=12,±s,mmol/L)

表1 apoE-/-小鼠血脂测定结果 (n=12,±s,mmol/L)Table 1 The blood lipids of apoE-/-mice(n=12,±s,mmol/L)

与普食组比较,aP<0.05aP<0.05 compared with normal diet group

低密度脂蛋白胆固醇Low-density lipoprotein cholesterol普食组Normal diet group 0.48±0.24 10.14±0.74 0.47±组别Group三酰甘油Triglyceride总胆固醇Total cholesterol高密度脂蛋白胆固醇High-density lipoprotein cholesterol 0.07 7.08±0.76高脂饮食组High-fat diet group 0.86±0.17a 18.36±3.12a 0.56±0.17 17.41±3.17a

CD11c+细胞的分布 实验组CD11c+细胞数目18.46±5.17较对照组4.62±1.91明显升高 (P<0.05)(图2A、2B)。CD11c+细胞在斑块肩部和内皮下有聚集倾向,而对照组阳性细胞数少,且散在分布。

FKN的表达 随机选取10个不同高倍镜视野,对细胞染色强度和阳性细胞数目进行打分,对二者的乘积进行比较,结果显示实验组不规则趋化因子的表达明显升高 (5.31±1.58比2.27±0.79)(P<0.05)(图2C、2D)。

讨 论

DCs是体内最强的抗原提呈细胞之一,是免疫反应的枢纽。研究显示AS斑块内的DCs多聚集在受紊乱血流影响、易于发生AS病变的部位[2];并且90%以上是与T细胞并存于有炎症浸润新生内膜处[3]。另有研究显示,DCs不仅参与AS的形成和发展,而且还可能与斑块的稳定性有关[4]。因此,有学者认为DCs可能成为未来AS防治的一个新靶点。但迄今为止,DCs在AS斑块形成、发展过程中的作用仍未明确。大部分DCs来自于血液中的单核细胞,单核细胞在血管内皮细胞 (endothelial cells,ECs)表面发生滚动、黏附、迁移,是由于激活的ECs表达的一系列选择素、黏附分子和内皮下产生的趋化物的作用。有研究表明斑块处存在的氧化性脂蛋白就是对DCs有较强趋化作用的物质[5-6]。

图1 apoE-/-小鼠颈总动脉斑块分布Fig 1 Atherosclerotic lesions in the common carotid artery of apoE-/-mice

图2 apoE-/-小鼠颈总动脉斑块CD11c+细胞分布和不规则趋化因子的表达 (免疫组织化学染色,×400)Fig 2 Expressions of CD11c+and fractalkine on atherosclerotic lesions of the common carotid artery from apoE-/-mice(Immunohistochemical staining, ×400)

不规则趋化因子FKN或CX3CL1是1997年新发现的一种化学趋化因子,它有两种存在形式,即膜型和可溶型。在人类功能紊乱的ECs上已发现有FKN的强表达[7-8],此外,FKN还表达在平滑肌细胞 (smooth muscle cells,SMCs)[9]、DCs[10]和巨噬细胞[11]等。本研究在高脂饲养的apoE-/-小鼠颈总动脉AS斑块内可发现有FKN的高表达,可能是以上这些细胞表达的结果。FKN的唯一受体CX3CR1则可表达于T细胞和NK细胞[12-13]、血液中的单核细胞[14]。在冠心病患者与健康人的比较中,发现CX3CR1+细胞出现率更高[15]。FKN/CX3CR1的作用可能在AS发病机制中发挥重要作用。首先,ECs表达的FKN能诱导白细胞与之发生黏附,同时,病灶处的SMCs表达的可溶性FKN通过微循环环境促进T细胞和巨噬细胞迁移进入病灶处[16-17]。其次,细胞学研究显示内皮细胞 FKN的表达可促进DCs的成熟和CX3CR1的表达;利用RNA干扰技术抑制DCs CX3CR1表达后,进而可抑制DCs和ECs的相互作用,故 FKN/CX3CR1在 DCs和ECs相互作用中发挥一定作用[18]。另外,单核细胞和SMCs相互作用可以上调一些炎性细胞因子的表达,如肿瘤坏死因子α、白介素1β、白介素6、CX3CR1和基质金属蛋白酶,并且依赖于FKN/CX3CR1间的相互作用[19]。再者,FKN还具有延长AS病变部位单核巨噬细胞和SMCs生存周期的作用[20]。本研究显示,在apoE-/-小鼠颈总动脉AS斑块内CD11c和FKN表达均升高,而CD11c是DCs的分子标志,这可能为FKN参与趋化DCs进入斑块处发挥作用提供了体外研究证据。

研究FKN/CX3CR1相互作用的目的在于探讨DCs进入内膜参与AS的可能机制,以便能更好地借助DCs的某些特性干预AS的发病过程,例如制作疫苗;或者从控制DCs进入病变部位的角度,应用CX3CR1的拮抗剂 (如药物AZ12201182)可抑制FKN的某些作用,如延长病变部位一些细胞的寿命和加速细胞有丝分裂;或阻断FKN引起的表皮调节素mRNA的表达[21]。所有这些可更好地研究FKN/CX3CR1这对趋化因子/受体的作用,或许可为AS的防治提供了一个较好的靶点。

[1]Link A,Bohm M.Potential role of dendritic cells in atherosclerosis[J].Cardiovasc Res,2002,55(4):708-709.

[2]Millonig G,Niederegger H,Rabl W,et al.Network of vascular-associated dendritic cells in intima of healthy young individuals[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2001,21(4):503-508.

[3]Bobryshev YV,Lord RS.Mapping of vascular dendritic cells in atherosclerotic arteries suggests their involvement in local immune-inflammatory reactions [J].Cardiovasc Res,1998,37(3):799-810.

[4]Bobryshev YV,Lord RSA.Co-accumulation of dendritic cells and natural killer T cells within rupture-prone regions in human atherosclerotic plaques[J].J Histochem Cytochem,2005,53(6):781-785.

[5]Xu ZX,Yang YZ,Feng DM,et al.OxHDL promotes maturation and migration of bone marrow derived dendritic cells from C57BL/6J mice [J].Acta Academiae Medicinae Sinicae,2008,23(4):224-229.

[6]许增祥,杨永宗,彭茜,等.氧化修饰低密度脂蛋白对C57BL/6J小鼠骨髓源性树突状细胞成熟和迁移的影响[J].实用医学杂志,2009,25(7):1036-1039.

[7]Bazan JF,Bacon KB,Hardiman G,et al.A new class of membrane-bound chemokine with a CX sub 3 C motif(ltr)[J].Nature,1997,385(6617):640-644.

[8]Harrison JK,Jiang Y,Wees EA,et al.Inflammatory agents regulate in vivo expression of fractalkine in endothelial cells of the rat heart[J].J Leukoc Biol,1999,66(6):937-944.

[9]Ludwig A,Berkhout T,Moores K,et al.Fractalkine is expressed by smooth muscle cells in response to IFN-gamma and TNF-alpha and is modulated by metalloproteinase activity[J].J Immunol,2002,168(12):604-612.

[10]Papadopoulos EJ,Sassetti C,Saeki H,et al.Fractalkine,a CX3C chemokine,is expressed by dendritic cells and is upregulated upon dendriticcell maturation [J].Eur J Immunol,1999,29(8):2551-2559.

[11]Greaves DR,Hakkinen T,Lucas AD,et al.Linked chromosome 16q13 chemokines,macrophagederived chemokine,fractalkine,and thymus-and activation-regulated chemokine,are expressed in human atherosclerotic lesions[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2001,21(6):923-929.

[12]Imai T,Hieshima K,Haskell C,et al.Identification and molecular characterization of fractalkine receptor CX3CR1,which mediates both leukocyte migration and adhesion [J].Cell,1997,91(4):521-530.

[13]Combadiere C,Salzwedel K,Smith ED,et al.Identification of CX3CR1.Achemotactic receptor for the human CX3C chemokine fractalkine and a fusion coreceptor for HIV-1 [J].J Biol Chem,1998,273(37):23799-23804.

[14]Jung S,Aliberti J,Graemmel P,et al.Analysis of fractalkine receptor CX(3)CR1 function by targeted deletion and green fluorescent protein reporter gene insertion [J].Mol Cell Biol,2000,20(11):4106-4114.

[15]Apostolakis S,Krambovitis E,Vlata Z,et al.CX3CR1 receptor is up-regulated in monocytes of coronary artery diseasedpatients:impact of pre-inflammatory stimuli and reninangiotensin system modulators[J].Thromb Res,2007,121(3):387-395.

[16]Fong AM,Robinson LA,Steeber DA,et al.Fractalkine and CX3CR1 mediate a novel mechanism of leukocyte capture,firm adhesion,and activation under physiologic flow [J].J Exp Med,1998,188(8):1413-1419.

[17]Zernecke A,Weber KS,Erwig LP,et al.Combinatorial model of chemokine involvement in glomerular monocyte recruitment:role of CXC chemokine receptor in infiltration during nephrotoxic nephritis[J].J Immunol,2001,166(9):5755-5762.

[18]Liu X,Lu G,Shen J.Silencing CX3CR1 production modulates the interaction between dendritic and endothelial cells[J].Mol Biol Rep,2011,38(1):481-488.

[19]Butoi ED,Gan AM,Manduteanu I,et al.Cross talk between smooth muscle cells and monocytes/activated monocytes via CX3CL1/CX3CR1 axis augments expression of pro-atherogenic molecules [J].Biochim Biophys Acta,2011,1813(12):2026-2035.

[20]Landsman L,Bar-On L,Zernecke A,et al.CX3CR1 is required for monocyte homeostasis and atherogenesis by promoting cell survival[J].Blood,2009,113(4):963-972.

[21]Gemma EW,Thomas CC,Alison EJ,et al.Fractalkine has anti-apoptotic and proliferativeeffects on human vascular smooth muscle cellsvia epidermal growth factor receptor signaling [J].Cardiovasc Res,2010,85(4):825-835.

猜你喜欢
趋化因子阳性细胞斑块
乳腺癌微环境中CXC趋化因子治疗靶点和预后标志物的综合生物信息学分析
颈动脉的斑块逆转看“软硬”
一篇文章了解颈动脉斑块
趋化因子及其受体的研究
microRNA-146a与冠心病患者斑块稳定性的相关性
CD14、IL-4和TNF-α在健康人和慢性根尖周病患者组织中的免疫荧光定位*
Ghrelin阳性细胞在食蟹猴消化系统中的分布定位
有颈动脉斑块未必要吃降脂药
急性高原低压缺氧对成年大鼠海马齿状回细胞增殖和分化的影响※
趋化因子及其受体在肿瘤免疫中调节作用的新进展