姜永华 王方杰
60例肿瘤患者外周血免疫指标的临床分析
姜永华 王方杰
目的 对60例肿瘤患者的外周血免疫指标进行临床分析与总结。方法 对本院2010年3月~2011 年3月所收治的60例肿瘤患者采取流式细胞仪来观察其外周血免疫指标的情况。结果 肿瘤患者在免疫功能上比较紊乱, 其严重存在着细胞免疫和体液免疫功能低下和活化T淋巴细胞增多的情况。结论 采用流式细胞仪来对肿瘤患者的外周血免疫指标进行临床观察与分析, 可以为肿瘤患者的治疗提供有效的依据, 在一定程度下实施免疫治疗还可以有效的激活患者的T淋巴细胞, 在改善肿瘤患者的免疫细胞上具有重要的临床价值。
肿瘤;外周血免疫指标;淋巴细胞
肿瘤患者在免疫功能上的紊乱主要是由于细胞免疫功能低下所引起的。在人体中, 肿瘤的发展会分泌出免疫抑制因子, 这种因子会导致人体免疫功能的丧失, 以此抑制机体的免疫功能。T淋巴细胞群作为反应细胞免疫功能的一项重要指标, 其在肿瘤免疫功能的检测上具有重要的意义。
1.1 一般资料 2010年3月~2011年3月所收治的60例肿瘤患者中, 男性36例, 女性24例, 年龄为23~73岁。其中, 肺癌患者23例、胃癌12例、肠癌、食道癌、乳腺癌等25例。这60例患者均排除在急性、慢性感染和自身免疫性方面的疾病, 经确诊为不同类型的肿瘤。
1.2 方法 首先采集这60例肿瘤患者的外周血2 ml, 并以肝素进行抗凝, 在提取后的24 h内送检, 采用血清标本对患者的CEA进行检测[1]。然后采用流式细胞术对60例肿瘤患者的外周血淋巴细胞表面的CD3、CD4、CD8和CD16+56进行检测。检测过程中,操作流程均有专人负责。其中流式抗体来自于美国的BD公司, 仪器设备为其公司生产的流式细胞仪。T细胞群的操作为:先取50 μl全血和适当体积相应的抗体在均匀混合后放置到室温中避光孵育20 min,然后加入2 ml的流式细胞专用红细胞裂解液, 避光5~10 min, 再采用1500 r/min离心5 min, 同时将上清去除, 洗涤两次, 在加入PBS 0.5 ml后均匀上机。最后在直方图中将淋巴细胞群框出, 并分别计出一万个淋巴细胞, 标出细胞的百分率。
1.3 统计学方法 对所有的数据采用SPSS13.0统计学软件进行分析, 对计数资料采用χ2来进行检验,用t来对计量的资料检验。 2 结果 见表1。
表1 患者外周血中T淋巴细胞群的表达(±s)
表1 患者外周血中T淋巴细胞群的表达(±s)
肿瘤症状 人数 CD3 CD4 CD8 CD16+56肺癌 23 58.52±6.28 28.16±5.15 20.14±2.69 12.49±6.41胃癌 12 54.68±13.18 21.26±5.13 25.54±2.37 10.57±5.63其他 25 54.54±12.64 21.23±5.31 26.12±2.10 11.67±6.74
从表1中可以看出, 不同症状的肿瘤患者, 其在免疫功能上不存在很大的差别, 但是, 总体来讲肿瘤患者的免疫功能是比较紊乱的, 其严重存在着细胞免疫和体液免疫功能低下和活化T淋巴细胞增多的情况。
近些年来, 随着临床医学对人体免疫功能研究的不断加深, 人体免疫功能和肿瘤之间的关系越来越引起临床的普遍重视。研究中发现, 肿瘤的发生和发展以及预后的处理和机体的免疫功能与状态有着紧密的关系, 同时在人体中, 抗肿瘤免疫是以细胞免疫为主的, 其表面比较明显的就是T淋巴细胞。在外周血中, CD3表示的是全部T细胞;CD4表示的是具有杀伤作用的T细胞;CD8表示的是具有抑制作用的T细胞;CD16+56表示具有反应机体免疫功能紊乱的免疫细胞[2]。
临床分析表明, 肿瘤患者外周血中的T淋巴细胞在人体内存在逐渐减少的趋势, 其治疗的进行就需要采取化疗的方式来实施。既然肿瘤患者在免疫功能上存在一定的不足, 因此采取免疫治疗的方式就可以对患者体内T淋巴细胞的数量和比例进行改善。在此基础上还可以采取对T淋巴细胞直接刺激活化的方式进行, 以此来增加肿瘤患者体液细胞和机体细胞的免疫功能。
综上所述, 采用流式细胞仪来对肿瘤患者的外周血免疫指标进行临床观察与分析, 可以为肿瘤患者的治疗提供有效的依据, 在一定程度上实施免疫治疗还可以有效的激活患者的T淋巴细胞, 在改善肿瘤患者的免疫功能上具有重要的临床价值。
[1]杨萍,程爱明,李程.恶性肿瘤患者T细胞亚群和NK活性及sIL-2R检测分析.肿瘤防治杂志, 2009,11(01): 79-81.
[2]曾瑞红,房桂珍,魏林.CD4+T细胞在肿瘤免疫治疗中的作用.细胞生物学杂志, 2010,30(10):30 -34.
R730.4
A
1674-9308(2013)04-0026-02
10.3969/J.ISSN.1674-9308.2013.04.014
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