杨 力,贾桂云
(海南师范大学 化学与化工学院,海南 海口 571158)
海南龙血树(Dracaena cambodiana pierre ex Gagnep)又名小花龙血树,龙舌兰科(Agavaceae),龙血树属(Dracaena).分布于海南省西南部,国家二级保护濒危种.海南龙血树叶中含有甾体皂苷[1].甾体皂苷主要分布菝契科、玄参科、薯蓣科、百合科、龙舌兰科等单子叶植物中,甾体皂苷有极高的药用价值,具有有抗菌、抗炎、抗真菌、抗细胞毒性等作用,临床用于心脑血管疾病的防治;皂苷经体外试验显示具有较强的抑制ADP诱导的家兔血小板聚集作用[2-4].
根据甾体皂苷在无水条件下,遇某些酸类可产生与三萜皂苷相类似的颜色反应,故用五环三萜类的熊果酸标准品做标准对照品,选用显色灵敏的香草醛-高氯酸反应进行显色[5].
本研究采用酶解-乙醇浸提法[6]提取海南龙血树叶的总皂苷,为海南龙血树叶的皂苷的提取及药用研究提供依据.
TU-1901双光束紫外分光光度计(北京普系通用仪器有限责任公司);722紫外分光光度计(上海菁华科技仪器有限公司);FZ-102型微型植物试样粉碎机(上海新诺仪器设备有限公司);RE-52AA旋转蒸发仪(上海亚荣生化仪器厂);SB-5200DTD超声波清洗机(深圳富嘉达超声波设备);TP-214电子天平(上海升隆电子科技有限公司);
海南龙血树叶采摘于海南师范大学桂林洋校区化学楼庭院内,洗净、阴干,剪成小片,40℃干燥后粉碎,做供试样品.
熊果酸对照品(含量≥98%上海顺勃生物工程有限公司),纤维素酶(北京奥科鼎盛生物科技有限公司),冰乙酸、无水乙醇、95%乙醇、香草醛、高氯酸等均为国产分析纯试剂.
2.1.1 对照品溶液的制备
精密称取在105℃干燥至恒重的熊果酸对照品10.0 mg,用无水乙醇溶解、定容50 mL,配制成质量浓度200 μg/mL的熊果酸对照品溶液.
2.1.2 样品溶液的制备
精密称取海南龙血树叶粉1.0020 g至50 mL圆底烧瓶中,按料液比1∶10加水,调节pH=5.0,加入纤维素酶.使水解液中酶质量浓度为0.15 mg/mL,50℃水浴酶解2 h.然后80℃水浴灭活30 min,离心分离,沉淀转移到圆底烧瓶中,加入95%乙醇10 mL,在70℃下浸提1 h.将提取液与酶解液合并,抽滤.滤液65℃减压蒸干,用无水乙醇溶解并定容100 mL.
2.1.3 最大吸收波长的确定
分别吸取0.2 mL熊果酸对照品溶液和样品溶液于两支具塞试管中,80℃水浴挥干溶剂,加入0.2 mL新配制的5%的香草醛-冰乙酸,0.8 mL高氯酸溶液,在70℃水浴加热15 min,使其反应完全,取出流水冷却10 min,加入4 mL冰乙酸,摇匀.随行试剂作空白,在450~600 nm波长范围内进行波谱扫描,熊果酸标准溶液和样品溶液在545 nm出现最大吸收,故确定545 nm为最大吸收波长.
2.1.4 标准曲线的绘制
精密吸取熊果酸对照品溶液0.0,0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7 mL置于具塞试管中,按3.1.3项下方法,在545 nm测吸光度.以吸光度为纵坐标,熊果酸的加入量为横坐标,绘制标准曲线(见图1).
回归方程y=-0.0198+0.0101x,r=0.9993.方程在0~140 μg范围内有良好线性关系.
2.1.5 总皂苷含量的测定
准确吸取0.1 mL样品溶液于具塞试管中,按2.1.3项下方法测定.计算出海南龙血树叶总皂苷浓度及其总皂苷提取率.
图1 熊果酸标准曲线Fig.1 Standard curve of oleanolic acid
式中:C为样品溶液的总皂苷浓度(μg/mL);V为样品溶液的总体积(mL);W为所用龙血树叶粉的质量(μg).
2.2.1 显色液稳定性试验
准确吸取0.1 mL样品溶液,按2.1.3项下方法,每隔10 min测一次吸光度,计算相对标准偏差.结果见表1.
表1 稳定性试验Tab.1 Stability test
结果表明,显色时间在60 min内吸光度是稳定的,相对标准偏差RSD=0.41%(n=6).因此在本实验测定时间范围内,皂苷和显色剂生成的有色化合物是稳定的.
2.2.2 精密度试验
准确吸取熊果酸对照品溶液6份,每份0.2 mL,按2.1项下的方法,测样品溶液吸光度,计算相对标准偏差.结果见表2.
计算RSD=1.57%(n=6),表明精密度良好.
2.2.3 加样回收率试验
分别吸取0.05,0.1,0.15,0.20,0.25 mL已知浓度的样品溶液,再加入0.1 mL熊果酸标准溶液,按2.1项下方法测定,计算回收率和相对标准偏差.结果见表3.
RSD=1.02%(n=5),平均回收率为100.40%,结果表明,本实验方法具有良好的回收率.
表2 精密度试验Tab.2 Precision test
表3 加样回收率试验Tab.3 Recovery test
采用酶解法,通过单因素试验和正交试验,考查酶质量浓度、酶解温度、pH值、酶解时间、料液比等因素对提取率的影响.
2.3.1 酶质量浓度对提取率的影响
精密称取海南龙血树粉5份,每份1.00 g,在pH=4.0,料液比为1∶10,酶解温度为50 ℃,酶质量浓度分别为 0.05 mg/mL、0.1 mg/mL、0.15 mg/mL、0.2 mg/mL、0.25 mg/mL,水浴酶解1 h.结果见图2.
图2 酶质量浓度对提取率的影响Fig.2 Effects of concentration of cellulase
结果表明,随着酶质量浓度的增大,皂苷的提取率增大,在0.15 mg/mL时皂苷提取率达到最大,但随着酶质量浓度的继续增大,皂苷的提取率开始显著下降.
2.3.2 酶解温度对提取率的影响
精密称取海南龙血树粉5份,每份1.00 g,料液比为1∶10,pH=4.0,酶质量浓度为0.15 mg/mL,酶解时间1 h,分别在40℃、45℃、50℃、55℃、60℃中水浴酶解.结果见图3.
图3 酶解温度对提取率的影响Fig.3 Effects of temperature of enzymatic hydrolysis on extraction rate
结果表明,总皂苷的提取率随着酶解温度的升高而升高,在50℃时总皂苷的提取率达到最大.继续升高酶解温度,总皂苷的提取率开始下降.因此,最佳酶解温度为50℃.
2.3.3 pH对提取率的影响
精密称取海南龙血树叶粉5份,每份1.00 g,在酶质量浓度为0.15 mg/mL,料液比为1∶10,酶解温度50 ℃,酶解时间为1 h,pH值分别为4.0、4.5、5.0、5.5、6.0,水浴酶解.结果见图4.
图4 pH对提取率的影响Fig.4 Effects of pH on extraction rate
结果表明,在pH=5.0时皂苷的提取率达到最大,在pH大于5.0,皂苷的提取率略有下降,故最佳pH值为5.0.
2.3.4 酶解时间对提取率的影响
精密称取海南龙血树叶粉5份,每份1.00 g,在pH=5.0,料液比1∶10,酶浓度为0.15 mg/mL,酶解温度50 ℃,酶解时间分别为0.5 h、1.0 h、1.5 h、2.0 h、2.5 h,水浴酶解.结果见图5.
图5 酶解时间对提取率的影响Fig.5 Effects of extracting time on extraction rate
结果表明,随着酶解时间的延长,总皂苷的提取率增大,酶解时间2.0 h提取率最高,而后增加缓慢,选择最佳酶解时间为2.0 h.
2.3.5 料液比对提取率的影响
精密称取海南龙血树叶粉5份,每份1.00 g,在pH=5.0,酶浓度为0.15 mg/mL,温度50℃,酶解时间为1.5 h,料液比分别为1∶5、1∶8、1∶10、1∶12、1∶15,水浴酶解.
结果表明,料液比1∶12时提取率最高,继续增加料液比,提取率变化趋于平缓.
2.3.6 正交试验优化工艺参数
为研究单因素对总皂苷提取率影响程度和交互作用,考查酶质量浓度、酶解温度、酶解液PH、酶解时间、料液比等5个因素,每个因素3个水平,采用L9(35)正交试验,确定最佳提取工艺.因素和水平见表4,试验结果见表5.
表4 因素水平表Tab.4 Actors and levels
结果表明,影响海南龙血树叶总皂苷提取率的因素中,影响程度为:C>A>B>E>D,即pH值>酶质量浓度>酶解温度>料液比>酶解时间.最佳提取工艺是A3B2C2D1E2,即酶质量浓度0.20 mg/mL,酶解温度50℃,pH=5.0,酶解时间为1.5 h,料液比分别为1∶12,为最佳提取工艺.在此条件下做验证试验,海南龙血树叶总皂苷的提取率最高为4.13%.
表5 正交试验结果Tab.5 Results of orthogonal test
海南龙血树叶粉用纤维素酶进行酶解,减少了纤维素对皂苷提取的影响.用乙醇浸提,产物用紫外分光光度计进行比色分析,操作简便,显色灵敏度高,而且重现性较好.
海南龙血树叶的化学成分较复杂,目前尚没有关于海南龙血树叶成分的报道.本研究采用单因素及正交试验,筛选出了海南龙血树叶总皂苷的最佳提取工艺条件,为进一步研究开发海南龙血树叶的药用价值提供了依据.
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