抗生素类药品无菌检查方法研究进展

王静 王振波 戴翚 肖璜 王似锦 周发友 马仕洪

摘要：无菌检查法是无菌药品检查的法定检验方法，其中薄膜过滤法因易操作、风险低和准确度高等优点比直接接种法应用更广泛。无菌药品剂型种类繁多，其中抗生素类药品因品种结构多变、抑菌性强和抗菌谱广等因素，一直以来是建立无菌检查方法的难点。本文就薄膜过滤法中的溶解、过滤、冲洗和培养等4个关键步骤展开讨论，通过对已建立的13类47个品种共61个抗生素药品无菌检查方法的综述，探讨建立无菌检查方法的基本策略，并对无菌检查方法和结果的局限性进行讨论，以期为建立抗生素类无菌药品无菌检查方法及正确认识无菌检查结果提供思路和参考。

关键词：抗生素；无菌药品；无菌检查；薄膜过滤法；局限性

中图分类号：R978.1文献标志码：A

Development on sterility testing methods for antibiotic drugs

Wang Jing1， Wang Zhenbo2， Dai Hui1， Xiao Huang1， Wang Sijin1， Zhou Fayou1，  and Ma Shihong1

（1 National Institutes for Food and Drug Control， Beijing 100050; 2 Ningxia Hui Autonomous Region Institute of Drug Inspection， Yinchuan 750002）

Abstract Sterility testing is a statutory inspection method for sterile drugs， among which the membrane filtration method is more widely used compared to the direct inoculation of culture medium due to its advantages of easy operation， low risk， and high accuracy. There are various types of sterile drug formulations， among which antibiotic drugs have been a challenge in establishing sterility testing methods due to their diverse variety， structure， strong antibacterial properties， and wide antibacterial spectrum. This article discussed the four key steps of dissolution， filtration， rinsing， and cultivation in the membrane filtration method. Through a review of 61 established sterility testing methods for 13 categories and 47 varieties of antibiotics， the basic strategies for establishing sterility testing methods were discussed， and the limitations of sterility testing methods and results were also discussed in order to provide ideas and references for the establishment of sterility testing methods for antibiotics and the correct understanding of sterility testing results.

Key words Antibiotics; Sterile drugs; Sterility testing; Membrane filtration method; Limitation

药品无菌检查法最早于1932年收载于《英国药典》（British Pharmacopoeia， BP）[1]，《中国药典》第一版于1953年收载有“药品无菌检验法”[2]，用于判断药品是否满足无菌特性。经过几十年的技术发展，药品无菌概念亦不断变化，如今，无菌检查的结果是评估药品在规定的检验条件下是否满足质量标准要求的一个关键指标，而确认药品的无菌特性更重要的是需要结合无菌生产工艺、数据记录和质量监控等，构建无菌保障体系。药品进行无菌检查主要用于检测由于技术故障、人为失误、混淆灭菌与非灭菌物品等因素引起的污染，是生产企业和监管机構用于成品无菌性检测的唯一可用的分析方法[3-4]，也是GMP检查的主要内容之一[5]。

无菌检查法包括薄膜过滤法和直接接种法。无菌药品可大致可分为注射剂、眼用制剂、无菌固体原料和抗生素原料药等。其中，注射剂中抗生素类药品的市场占有份额较大，应用最为广泛。在进行无菌检查时，通常只要供试品性质允许，应首选薄膜过滤法。薄膜过滤法最早于1964年用于抗生素样品[6]，一般采用封闭体系，具有操作方便、不易污染、结果准确等优势[7]。

抗生素类药品用于治疗细菌、真菌等引起的感染类疾病。按结构可分为β-内酰胺类、四环素类、氯霉素、大环内酯类、硝基咪唑类、氨基糖苷类、喹诺酮类、三唑类和蒽环类等[8]。抗生素类药品抑菌性强、抗菌谱广，大多数样品难以去除抑菌性，一直以来是建立无菌检查方法的重点和难点。本文以抗生素类药品的无菌检查方法为研究对象，从溶解、过滤、冲洗和培养4个主要环节，总结文献中61个采用薄膜过滤法的案例，剖析无菌检查方法开发的要点，建立消除抗生素类产品抑菌性的策略，以期为开发类似药物或新品种的无菌检查方法提供思路和参考。

1 建立无菌检查方法的过程拆解

对抗生素药品开展无菌检查时，首先应消除抗生素的抑菌性对实验的影响。消除抗生素抑菌性的途径主要包括降低抗生素初始浓度、选择合适的冲洗液（可添加中和剂）、增加冲洗量、滤膜材质的筛选、培养基的体积及是否添加中和剂等。表1对13类共47种抗生素品种的无菌方法按其结构进行了汇总，下文将从溶解、过滤、冲洗和培养4个维度分别讨论各类抗生素药品无菌检查的难点及解决办法。

1.1 溶解

样品溶解过程需要兼顾抽样方式的特点及取样量。固体注射用粉针剂，需要选择适宜的溶解液[9]，同时考虑稀释样品所需的溶解液量。抗生素供试液除了应具有易过滤的特点外，还要考虑抗生素在滤膜表面的吸附、残留等问题。供试液中抗生素的初始浓度决定了每张膜过滤的抗生素量，其对于消除抑菌性也很重要，表1中虽然有少数方法中抗生素的浓度超过50 mg/mL，但73%的方法中抗生素的初始浓度均控制在25 mg/mL的范围内（图1）；80%的方法能够将每张滤膜过滤抗生素的量控制在5 g的范圍内，剩余的方法每张滤膜过滤抗生素最高量为10 g

（图2）。结合表1数据可知，当抗生素浓度或每张滤膜过滤抗生素的量较高时，所建立的方法要么冲洗量较大，要么需添加高效中和剂，如青霉素酶、金属离子等降低冲洗量，要么使用特殊材质的滤膜，如低吸附的尼龙膜等，或多种方法联用，以消除其强抑菌性。

1.2 过滤

《中国药典》规定薄膜过滤法所用滤膜的孔径为0.45 μm[7]，但未规定滤膜的种类和材质。考虑到抗生素类样品若吸附残留在滤膜上，抑菌性难以去除。因此，选择低吸附的滤膜材质，也是建立抗生素无菌方法的一个考虑要点。常用的滤膜材质有醋酸纤维素膜、硝酸纤维素膜、醋酸和硝酸混合纤维素膜、尼龙膜、聚偏二氟乙烯膜等，不同材质的滤膜具有不同的适用范围及优缺点。抗生素在滤膜上的吸附特性通常以每张膜上抗生素的残留量来表示，有报道表明，泊沙康唑在不同材质滤膜上的残留量明显不同[10]。由表1可知，筛选出的具有低吸附特性的滤膜大多为聚偏二氟乙烯膜（polyvinylidene fluoride，简称PVDF）或尼龙膜，纤维素膜较少；少数使用滤膜厂家标注为特殊材质或抗生素专用滤膜，由于未明确材质的具体种类，对使用者选择滤膜的参考价值较小；由于生产工艺的差异，相同材质不同品牌滤膜的结构和性能亦可能存在差异，因而不同研究团队对相同抗生素品种筛选出的具有最低吸附特性的滤膜可能略有不同[10-11]。此外，对于难以过滤的样品如眼膏剂等，应关注过滤参数（如：泵速/泵压）；若使用有机溶剂等特殊溶剂，应关注滤膜使用前后的完整性[12-13]；对具有高残留、高抑菌性的样品，可采用分膜过滤的方式[14]；对于易堵膜的样品，可采用双膜过滤的方式等[15]。

1.3 冲洗

建立无菌检查方法时，选择适宜的中和剂和优化冲洗量是冲洗过程中需要摸索的两项最重要的实验因素（图3）。

1.3.1 中和剂

《中国药典》列出了常见干扰物的对应中和剂[16]。然而，抗生素因种类繁多且抑菌活性强，添加1种中和剂有时无法消除抑菌活性，需要几种中和剂联合使用或探索新型高效的中和剂以适用于样品的性质。

卵磷脂和吐温80是应用最广泛的非特异性中和剂，具有表面活性，且与非离子具有较好的相容性[17]；青霉素酶是最常用的β-内酰胺酶，对多种β-内酰胺类（如青霉素）抗生素具有水解活性，是首选的中和剂，但浓度较高时，也可抑制微生物生长[18]。此外，不同类型的β-内酰胺酶，如头孢菌素酶（50万单位头孢菌素酶与600万单位青霉素酶对去除头孢尼西钠的抑菌活性相当）[19]、金属酶（25万单位金属酶与600万单位青霉素酶对去除亚胺培南的抑菌活性相当）[20]等对相应的β-内酰胺品种具有较高的水解活性。二价金属离子，如镁离子、钙离子和锰离子等与喹诺酮类抗生素可形成络合物，使其抗菌活性减弱，因而常用作喹诺酮类抗生素的中和剂，但也应注意其对微生物生长的影响[21-22]。此外，也可尝试使用新型的中和剂，如利用β-环糊精对抑菌物质的包埋作用、表面活性剂的乳化作用等抑制特定抗生素的抑菌活性。

1.3.2 冲洗量

《中国药典》规定薄膜过滤法的冲洗量一般不超过500 mL，最高不得超过1000 mL[7]，以防止冲洗对微生物的损伤和对滤膜截留能力的影响。通常样品供试液本身具有一定的体积，而《中国药典》仅建议了冲洗液的体积，若供试液体积较大，也可能会影响滤膜的完整性。图4分析了61种方法中，供试液及冲洗液体积大于500和1000 mL所占的比率。若只考虑冲洗液的影响，61%的方法冲洗量大于500 mL，7%的方法冲洗量大于1000 mL；若考虑供试液和冲洗液两者共同的影响，84%的方法冲洗量大于500 mL，15%的方法冲洗量大于1000 mL，冲洗的总体积较高。分析冲洗总体积较低的方法，大多使用了β-内酰胺酶，酶作为一种高效的中和剂，可高效消除β-内酰胺类抗生素的抑菌性，从而可有效控制冲洗量于较低的范围。

1.4 培养

不同抗生素因抗菌谱的不同使得其对代表性菌株的敏感性也不同。建立无菌方法时通常应选用最容易被抑制、最难培养、最敏感的代表性菌株作为敏感菌，保证所建立方法的有效性。图5列出了13类抗生素共61种方法所选用的敏感菌，可见，具有不同抗菌谱的不同代头孢菌素的敏感性具有明显差异（图6）；同一类抗生素的不同品种也可能存在微量差异。总体来说，抗细菌类抗生素以大肠埃希菌（革兰阴性菌的代表菌株）、金黄色葡萄球菌（革兰阳性菌的代表菌株）和两者共同作为敏感菌居多，也存在枯草芽孢杆菌较为敏感的情况；应根据抗生素的抑菌特性选择敏感菌，对抗革兰阳性的抗生素，一般选择金黄色葡萄球菌；对抗革兰阴性的抗生素一般选择大肠埃希菌，具体可参考美国临床实验室标准指南（NCCLS）中对各类抗生素的MIC值[23-24]。抗厌氧类抗生素多以生孢梭菌为敏感菌；抗真菌类抗生素多以白色念珠菌为敏感菌，但也应注意黑曲霉的敏感性。敏感菌在建立无菌检查方法时作为代表菌种，可更高效、精准地建立无菌方法。

2 讨论

2.1 建立无菌檢查方法的基本策略

无菌检查过程可拆解为溶解、过滤、冲洗和培养4个关键步骤，每一步骤又可细化为多个要点（图7）。抗生素样品的抑菌性可通过稀释、冲洗、中和和转移等多种方式去除。若仅考虑中和剂和冲洗量，易导致冲洗量过大（图4），可能破坏滤膜的完整性或/和损伤微生物。影响建立无菌检查方法的因素较多（图7），多因素交叉使得其难度高、任务量大。因而，建立无菌检查的方法策略是十分重要的（图8）。首先应通过查阅文献，基于产品的特性把握关键要素设计试验方案，在此基础上以敏感菌株为指示剂开展方法预实验，最后用其他菌株验证方法的适用性。利用该策略可更加高效、科学、合理地开发无菌检查的方法。

2.2 无菌检查法的局限性

无菌检查法作为1种可靠的传统检验方法，仍存在主观判断、人工操作、耗时长等局限性。由于影响因素较多，无菌方法在转移过程中，可能存在不同实验室、不同仪器、不同人员、不同试剂和耗材等的差异，导致方法的适用性结果出现差异，因而应注重微生物实验室的质量控制，尽可能地保证试验结果的可靠、可重复和科学合理[25]。《中国药典》近期发布的无菌检查法公示稿中，将每张膜的冲洗量限制在500 mL[26]，提示对抑菌性极强的样品开发合适的无菌方法的难度增加，且对已有方法的合规性亦应重新进行评估。此外，一些新型快检技术，如流式细胞技术[27-28]、呼吸法[29-30]、ATP生物发光[31]、等温微量热法[32]和毛细管电泳法[33]等方法具有快速、微量、自动化等优势，但仪器和耗材价格昂贵，目前已尝试用于生物制品，有望用于抗生素类药品无菌检查方法的初筛或替代。

无菌检查由于取样量较小，对于监测该批次产品的污染能力是有限的，因而结果具有一定的局限性和风险。仅根据无菌检查结果作为评价产品无菌水平的依据可能会产生误导，因为无菌检查结果阴性（无菌 “合格”）可能只是无法检测到污染微生物[34]，其实际产品仍可能存在污染微生物（“不合格”）。深度理解产品的无菌特性、无菌检查与无菌保证水平三者之间的关键区别，明确无菌检查的应用范围，将无菌检查与终端灭菌工艺验证、无菌生产工艺验证结合[35]，是保障无菌药品质量水平的关键。

参 考 文 献

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基金项目：中国食品药品检定研究院中青年发展研究基金（No. 2023A7）

作者简介：王静，女，生于1995年，硕士，助理研究员，主要从事药品微生物检验与控制工作，E-mail： wangjing123@nifdc.org.cn

*通信作者，E-mail： mash@nifdc.org.cn

第一作者：王静，北京化工大学药学硕士，助理研究员；主要从事药品微生物检验及科研工作。

通信作者：马仕洪，生于1972年，药学硕士，主任药师，2003年毕业于中国药品生物制品检定所，现任中国食品药品检定研究院化药所微生物室主任。从事药品微生物科研及检验工作。