黄雄挺,郭紫晶,周 泷,陈劲松,张志东,李彦敏
西南民族大学动物医学四川省高校重点实验室,四川 成都 610041
猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是生猪生产国最常见的病毒性疾病之一。自20世纪80年代暴发以来,PRRS对全球养猪业造成了巨大的经济损失[1-2]。根据遗传和抗原分析,猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)分为2种主要基因型:PRRSV-1(欧洲型)和PRRSV-2(美洲型)[3-4]。PRRS于1995年在中国首次报道,命名为CH-1a,证实了PRRSV在中国的存在[5]。2006年,中国暴发了一种病因不明的“高热”疾病。基本上它是由突变的PRRSV病毒引起的,后来被命名为高致病性PRRSV(HP-PRRSV)。该变异具有独特的NSP2中30(1+29)个氨基酸不连续缺失的特征,并已成为该领域优势的流行毒株[6]。NADC30株于2008年首次在美国被发现,其特征是NSP2缺失131(111+1+19)个氨基酸[7]。NADC30-like株在2013年传入中国,近年来传播迅速,广泛流行至今[8]。
PRRSV是一种小的、包膜的单股正链RNA病毒。PRRSV根据最新分类新归为属于动脉炎病毒属(Arterivirus)、动脉炎病毒科(Arteriviridae)、尼多病毒目(Nidovirales),至少含有11个开放阅读框(ORFs)[9-10]。其中非结构蛋白Nsp2与结构蛋白GP5基因的变异最大,Nsp2是PRRSV基因组中最异质和可变的编码蛋白,在田间菌株中,Nsp2编码区存在自然的替换、插入和缺失,研究发现所有HP-PRRSV毒株在Nsp2中具有相同的不连续30aa缺失,这种独特的遗传模式最初被认为与疾病严重程度有关[11-12],因而该区域常作为区分不同亚型PRRSV的鉴别区域[13]。GP5是由ORF5基因编码的囊膜糖蛋白,欧洲型GP5蛋白约有201aa,而美洲型为200 aa,由于其变异性和免疫学特性,其已成为分析PRRSV遗传变异的主要目标蛋白[14]。因此,Nsp2与GP5基因是监测遗传变异和开展鉴别诊断试验的理想标记物。PRRSV因其较高的突变率和重组率,具有复杂的遗传多样性[15]。中国猪群中多种PRRSV谱系共存,包括谱系1、3、5和8,促进了不同谱系之间的PRRSV重组[16-17]。PRRSV重组不仅会导致新的PRRSV基因型的产生,还会引起致病性的变化[18]。近年的监测发现,我国PRRSV的重组不仅发生在野毒之间,而且会有野毒与减毒活疫苗的重组,这些重组可导致新变种的发展,导致对猪的替代致病性,为现有疫苗预防和控制PRRS带来了新的挑战[19-20]。本研究通过分析陕西、河南2地养殖场采集的PRRSV阳性样品中Nsp2和GP5基因的遗传变异,了解现阶段陕西、河南2地PRRSV的流行特点,为制定有效的防控措施提供参考依据。
1.1.1 样品
2020—2022年,从陕西和河南的猪场采集了252份肺脏、淋巴结、脾脏、肝脏、血液和精液样本,这些样本来自出现高热、呼吸困难和流产症状的疑似感染PRRSV的猪只。
1.1.2 主要试剂
GeneRed 核酸染料,DL-2000标记染料,购自天根生化科技(北京)有限公司;大肠杆菌DH5α感受态细胞,反转录试剂盒,购自TaKaRa;TRIZOL提取试剂,50×TAE均购自赛默飞公司。
1.1.3 主要仪器
梯度PCR、恒温振荡器、微波炉(GALANZ)、水平电泳仪。实时荧光定量PCR仪,鲲鹏基因(北京)科技有限责任公司;智能型多功能核酸蛋白图像工作站,广州博鹭腾生物科技有限公司;超声破碎仪,Branson公司;高速冷冻离心机,上海卢湘仪离心机仪器有限公司。
1.2.1 引物合成
鉴于中国现在常流行的PRRSV 谱系较为复杂,根据GenBank中PRRSV代表毒株VR-2332(登录号为AY150564) 使用 NCBI 软件选择了保守区域,并使用Primer Premier 5.0软件为PRRSV的Nsp2基因、ORF5基因区域设计病毒特异性引物,上海生物工程有限公司合成。引物具体信息见表1。
表1 引物序列Table 1 Primers sequence
1.2.2 样品处理及核酸提取
取适量样本在组织研磨仪中充分研磨,反复冻融3次,于离心机上6 000 r/min 离心,取200 μL上清液;直接取血清及精液200 μL,用TRIZOL试剂法提取病毒RNA,同时提取 PRRSV阳性对照样品的RNA,使用TaKaRa反转录试剂盒反转录,所有方法按照说明书操作,将得到的核酸于-80 ℃保存,备用。
1.2.3 PCR扩增
根据反转录试剂盒的说明,将RNA反转录为cDNA,并使用表1所列的引物对作为模板进行PCR扩增。PCR扩增系统:2×Taq PCR Master Mix 12.5 μL,上游和下游引物10 μ mol/L,cDNA 模板2 μL,ddH2O补充至25 μL。以ddH2O作为阴性对照。PCR扩增程序:95 ℃预变性3 min;95 ℃变性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸60 s,共37个循环;72 ℃再延伸10 min。取PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳检测。
1.2.4 序列比对及遗传进化分析
从GenBank中选择26株不同基因型、不同谱系PRRSV ORF5基因和Nsp2基因(见表2)序列作为参考序列,包括PRRSV-1型3株、PRRSV-2 型23株,其中谱系1毒株5株,谱系3,5,8毒株各6株[21]。利用MEGA11软件通过邻接法分析遗传变异,构建遗传进化树。
表2 参考毒株信息Table 2 Reference strain information
经检测,252份样品中检测出阳性样品39份,阳性率为15.6%(见表3);在39份阳性样品中扩增出10条Nsp2基因全长和5条ORF5基因长,其中GP-10与Nsp2-1为同一株,如表4、表5所示。
表3 PRRSV 样品阳性率统计Table 3 PRRSV sample positive rate statistics
表4 Nsp2阳性样本信息Table 4 Information of Nsp2 positive samples
表5 GP5阳性样本信息Table 5 Information of GP5 positive samples
2.2.1 ORF5基因与Nsp2基因序列比对
经核苷酸序列比对分析发现:从陕西与和河南地区获取的5株PRRSV毒株与GenBank中26株参考毒株PRRSV ORF5基因的核苷酸序列同源性为79.7%~99.7%,5株PRRSV ORF5基因序列与PRRSV-2型和PRRSV-1型的同源性分别为79.7%~99.7%、57.9%~63.2%。10株PRRSV毒株与GenBank中26株PRRSV参考毒株的Nsp2基因之间的核苷酸序列同源性为38.2%~92.2%,与PRRSV-2型和PRRSV-1型参考毒株的同源性分别为38.2%~92.2%、48.2%~50.7%。以VR-2332经典株ORF5基因与Nsp2基因序列作为参考,5株ORF5基因与VR-2332株的同源性为85.3%~99.7%,其基因含611个碱基,其中,GP5-10、GP5-7与GP5-5株的ORF5基因在第83、170、与443位碱基出现T碱基突变为C碱基,在第197位碱基由A/C碱基突变为T碱基,在第413位碱基由C碱基突变位T碱基,在第558位碱基有T碱基突变为A碱基;在5株 PRRSV ORF5 基因中,仅有GP5-5株在第31~38位连续插入8位碱基。而Nsp2-1、Nsp2-2与Nsp2-3株在第39位碱基由A/G突变为C,在第62、375位碱基由C/G突变为A,在第77位碱基由A突变为T;Nsp-1与Nsp2-2在第155位碱基由C突变为T,在第498位碱基由T/G/A突变为C。由此可见,ORF5基因与Nsp2基因核苷酸序列存在不同程度的变异,相比于ORF5基因,Nsp2基因总体变异更大。
2.2.2 氨基酸序列比对
经氨基酸序列比对分析发现:从陕西与和河南地区获取的5株PRRSV毒株与GenBank中26株PRRSV参考毒株的ORF5基因推导的氨基酸序列同源性为60.9%~99.5%;5株PRRSV毒株ORF5基因推导的氨基酸序列的同源性为64.9%~99.5%;10株PRRSV毒株与GenBank中26株PRRSV参考毒株的Nsp2基因推导的氨基酸序列同源性为79.4%~91%;10株PRRSV毒株Nsp2基因推导的氨基酸序列的同源性为92.7%~97.8%;5株PRRSV ORF5基因推导的氨基酸序列与参考毒株PRRSV-2型PRRSV-1型的同源性分别为64%~99.5%、30%~35%,10株PRRSV Nsp2基因推导的氨基酸序列与PRRSV-1型参考毒株的同源性为36.6%~38.9%。以VR-2332株ORF5和Nsp2基因推导的氨基酸序列作为参考,如图1框选区域,在诱骗表位V27~N30区,获取的5株PRRSV 有GP5-10、GP5-7和GP5-5株在第28位发生 L→S 突变;在中和表位 S37 ~ L45 区,GP5-10、GP5-7和GP5-5株第37位发生缺失,仅有99L株在地42位发生Y→C 突变;在非中和表位V180~P200区,GP5-10、GP5-7和GP5-5株分别在180位、182位以及195 位发生K→R、L→S和E→R突变。
图1 ORF5基因的氨基酸序列分析Figure 1 Amino acid sequence analysis derived from ORF5 gene
如图2框选区域,在诱骗表位V27~N30区,Nsp2-3株在第30位发生 I→T突变;在中和表位 S37 ~ L45 区,Nsp2-1、Nsp2-2、Nsp2-3均未发生突变;在非中和表位V180~P200区,Nsp2-3株分别在184位和196 位发生R→W和N→D突变。
图2 Nsp2基因推导的氨基酸序列分析Figure 2 Amino acid sequence analysis derived from Nsp2 gene
2.2.3 遗传进化分析
基于对PRRSV的ORF5基因序列(600 bp)建立遗传进化树,见图3。
图3 PRRSV GP5基因遗传进化树构建结果Fig.3 Phylogenetic tree construction results based on PRRSV ORF5 gene
由图3可知:5株GP5基因PRRSV毒株均在PRRSV-2型在同一簇,其中有3株为PRRSV-2型第1谱系毒株,2株为PRRSV-2型第5谱系的毒株。谱系1中的3株毒株为GP5-HN1-5、GP5-HN1-7、GP5-HN1-10与代表毒株NADC30亲缘关系最近;另外谱系5的2株毒株GP5-704-99 L-SX1、GP5-704-100 L-SX1与代表VR2332亲缘关系最近。
基于对PRRSV的Nsp2基因序列分析并绘制遗传进化树,见图4。
由图4可知:10株Nsp2基因PRRSV毒株均在PRRSV-2型第1谱系的毒株,与NADC30株的亲缘关系最近。
自2006年HP-PRRSV暴发以来,国内学者对于PRRSV流行及遗传变异情况的研究从未间断,由于PRRSV遗传变异的多样性,PRRSV仍未能得到有效控制[22]。本研究通过对2020—2022年收集来自陕西省与河南省2地猪场猪群中的252份疑似感染PRRSV的猪样品进行检测,阳性样品有39例,总阳性率为15.6%。其中,扩增出10条Nsp2基因、5条ORF5基因,5株ORF5基因PRRSV毒株均在PRRSV-2型在同一簇,3株为PRRSV-2型谱系1毒株(GP5-5、GP5-7、GP5-10)与代表毒株NADC30亲缘关系最近,2株为PRRSV-2型谱系5的毒株(99L、100L)与NADC30代表毒株的亲缘关系最近,其中有1株Nsp2基因与ORF5基因来自于同一株。说明陕西和河南地区发生了第1谱系和第5谱系毒株的混合流行,其中GP5-10与Nsp2-1、Nsp2-2、Nsp2-3均为河南猪场样本,这提示河南地区猪场可能同时存在多种谱系毒株,GP5-10与Nsp2-1来自同一样品皆属于谱系1,推测该猪场毒株可能还未发生重组。同时还发现,本研究扩增的Nsp2基因序列数量多ORF5基因,推测可能是样品中ORF5基因的含量过低或核酸发生降解,或是ORF5基因发生突变,导致检测灵敏性降低。韦丽丽[23]采用RT-PCR方法对91份PRRSV阳性样品的Nsp2与ORF5基因特异性片段进行扩增,只获得18条Nsp2基因序列和48条ORF5基因序列,与本研究的结果类似。因此,研究并开发更高效、精准、低成本的检测方法对 PRRSV 临床检测与诊断具有重要应用价值。
通过对10条Nsp2基因5条ORF5基因的核苷酸序列与氨基酸序列进行分析,发现5株PRRSV ORF5基因序列与PRRSV-2型和PRRSV-1型的同源性分别为79.7%~99.7%、57.9%~63.2%,10株PRRSV Nsp2基因与PRRSV-2型和PRRSV-1型参考毒株的同源性分别为38.2%~92.2%、48.2%~50.7%,10条Nsp2基因序列5条ORF5基因序列均有不同程度的突变,这也表明PRRSV遗传变异是复杂多样的,位于高变区的Nsp2基因和ORF5基因的突变和重组仍然是PRRSV广泛流行的最主要原因,因而对特异性疫苗的研制和PRRSV的防控难度也是与日俱增。
我国Ⅱ型PRRSV目前属于多种PRRSV亚型共存的状态,PRRS广泛流行至今,仍没有研发出理想的疫苗。田间毒株的多样性及频繁变异增加了PRRS的临床诊断、实验室诊断和疫苗控制的难度,且不同地区PRRSV毒株之间存在较大的抗原性差异[24-25],国内通常大规模使用弱毒PRRSV疫苗对养殖场进行免疫,但低剂量疫苗存在安全问题,可能出现病毒毒力返强的现象,为疾病防控带来了难度和挑战[26]。因此,实时监测 PRRSV 株系的基因突变动态,探索其基因变异和重组模式,可以为该疾病的防控提供更科学的参考依据。
陕西和河南地区猪场存在谱系1和谱系5毒株的混合流行,但在河南猪场同一样品的Nsp2基因与ORF5基因均在谱系1,推测该猪场目前还未发生毒株重组的现象,PRRS依然是我国猪场中普遍存在且最具威胁的传染病之一。