肉鸭病毒性肝炎诊治

黄忠群

（贵州省玉屏侗族自治县畜牧渔业发展中心，贵州 玉屏 554000）

肉鸭病毒性肝炎（DVH）是一种常见的内科疾病，该病由鸭病毒性肝炎病毒（DHV）引起，1周龄内的雏鸭发病率高达95%，死亡率约80%。

1 病原

导致DVH 的病原为DHV，研究表明DHV 可分为DHV-I、DHV-II 和DHV-III 三种血清型，其中DHV-I、DHV-III同属小RNA病毒科，而DHVII属星状病毒科。

病原学研究发现DHV-I型较为耐热，高温环境下（50 ℃）仍可保持活力不衰减，是致使肉鸭发生DVH的主要病原型别，也是威胁肉鸭养殖行业发展的罪魁祸首。

2 流行病学

2.1 鸭病毒性肝炎1 型（DHV-I 型）1945 年在美国纽约长岛鸭场首次发现DHV-I，随后加拿大、英国、日本、德国等国家相继报道了DHV-I在本国的流行情况。

DHV-I的主要传染源为病鸭，棕色大鼠也可作为传染源传播该病。由DHV-I 引起的DVH一年四季均可发生，季节交替时本病发生概率增加。在自然条件下，DHV-I 型传播速度快、潜伏期短，主要引起1.5 月龄以内的肉鸭发病死亡。流行病学研究表明，DHV-I感染的肉鸭发病率为95%，死亡率最高可达95%。通常肉鸭的死亡率与年龄呈反比，年龄越大的肉鸭死亡率越低，1周龄以内的肉鸭死亡率最高为95%，2 周龄次之，3周龄再次之，而1.5 月龄以上的肉鸭基本不会死亡。

2.2 鸭病毒性肝炎2 型（DHV-II 型）DHV-II首次于1965 年在英国诺福克港口中发现。该型在世界范围内的相关病例较少，通常为个例散发，暂未出现大规模暴发或流行。

DHV-II 型主要传染源也为病鸭，部分野禽、野鸟等可成为传播媒介。DHV-II 型的死亡率相对I型低，最高可达50%，死亡率随病鸭年龄增长而降低。

2.3 鸭病毒性肝炎3型（DHV-III型）继DHVI 型发现后24 年，1969 年在美国纽约长岛鸭场又发现了DHV-III型。

目前研究表明DHV-III 型的传染源为病鸭，肉鸭的感染率和死亡率均低于30%，在我国尚未大规模流行。

3 发病原因

DVH可由多种因素诱发，其中饲养管理水平低下是主要诱因。鸭舍简陋，无法有效满足肉鸭生长需要，舍内过于潮湿，滋生各种细菌及病毒时，可导致鸭群免疫力下降而患病。

养殖密度过大、舍内通风不良、粪尿不及时清理、消毒不到位时，也会导致病菌滋生及各类有害气体超标，而诱发DVH等相关疾病。

饲料中缺乏维生素和矿物质等也是诱发DVH 的因素。维生素是肉鸭为维持正常生理功能而必需的有机物。矿物质与维生素相似，也是肉鸭机体必需的营养素。当肉鸭长期无法从食物中摄入足够的营养物质时，一些抵抗力、免疫力差的肉鸭便会发生疾病，进而传播疾病。

4 临床症状

由DHV-I 型引起的DVH 发病极快、传播极快。雏鸭感染后精神沉郁，两翅下垂，无法挺立，困倦、行动迟缓，行为明显异于其他肉鸭。

发病初期病鸭轻微厌食，部分鸭严重腹泻，长卧不起等。发病中后期，90%以上的病鸭会出现口渴和大量排泄尿酸盐的症状，其会出现神经症状，如腿部痉挛，全身抽搐等，进而在数小时内死亡。

死亡后的肉鸭喙端和爪尖有瘀血，呈紫红色。部分病鸭在感染后出现暴毙，见不到任何症状即突然死亡。DHV-II与DHV-III型引起的DVH临床表现与DHV-I型相似。

5 诊断

DVH的诊断需要结合临床症状、流行病学特点、病原检测及组织病理学等进行综合判断。

5.1 病原学诊断 对DVH的简易诊断方法主要是肉鸭接种试验、鸭胚或鸡胚接种试验等。

肉鸭病亡后，进行病毒分离，将肝脏等病料无菌处理后充分研磨，用灭菌缓冲液配制成20%～25%的组织悬液，在高速离心后，使用5%的三氯甲烷溶液处理上清液15 min 左右后，进行后续的雏鸭接种试验、鸭胚接种试验等病理学试验，进而对该病进行诊断。

5.2 血清学诊断 血清学诊断也是有效诊断DVH的方法。血清学诊断包括雏鸭保护试验、被动免疫试验、中和试验、胶体金免疫电镜技术等。

5.2.1 雏鸭保护试验 是用已知的抗DVH 抗体或高免血清皮下注射于健康雏鸭，1 mL/只。雏鸭注射抗体24 h后，再注射病毒分离物，以毒攻毒，同时设立对照组，对照组雏鸭同时攻毒。经饲养观察，若7 d后实验组雏鸭有80%以上存活，而对照组雏鸭80%以上死亡，则可判定分离毒株为鸭病毒性肝炎病毒。

5.2.2 被动免疫试验 使用一定浓度的病毒分离物攻毒含有DHV 母源抗体的雏鸭，并以此作为实验组，对照组使用相同浓度的病毒分离物攻毒同日龄同数量的易感雏鸭。经饲养观察，若实验组雏鸭存活率达80%，而对照组雏鸭死亡率达80%，则可判定分离毒株为鸭病毒性肝炎病毒。

5.2.3 中和试验 使用已知的病毒或抗原检测病鸭体内中和抗体的存在及效价，称为中和试验。中和试验是一种经济、实用、快速且靠谱的诊断方法，但试验耗时较长，实验步骤繁琐。

5.2.4 胶体金免疫技术 该技术原理为将含有DHV的溶液或悬液与胶体金充分接触，使两者完全反应，当样品中的病毒含量达到一定程度时，在试剂板中便会显出检测线与对照线，且能变色。在显微镜下观察，便可较清晰地判断病毒情况。胶体金试验成本较高，限制了该方法使用。

5.3 分子生物学诊断 随着诊断技术的不断发展，分子生物学诊断逐渐成为了检测该病毒的主流方法。该方法可利用病毒中特定的核苷酸序列，使用实时荧光定量PCR 技术快速检测样本中的核苷酸序列，进而进行对比判断。该方法灵敏度高、操作简单，能较好地用于DHV 的精确判断。

6 综合防治

6.1 预防

6.1.1 环境安全 隔离和消毒是预防本病的两个有效措施。

基于5周龄以下雏鸭DHV易感的特点，需将雏鸭与成年鸭隔离饲养，且间距最好在1 km 以上，防止成年鸭将病毒传给雏鸭。

应定期清洗和严格消毒鸭舍、设备。为确保消毒安全，可选择高效广谱的消毒剂交替使用。消毒前将鸭舍打扫干净，以免影响消毒效果。定期带鸭消毒可使用0.1%浓度的新洁尔灭、15%浓度的百毒杀与0.2%浓度的过氧乙酸混匀后喷雾，建议每周带鸭消毒一次。

外来人员及车辆进场前进行严格消毒，消毒可使用2.5%的火碱溶液。非本鸭场的人员禁止进入生产区，运输活禽的车辆也禁止驶入生产区。倘若有疫情发生，要加大消毒频率，每2 d消毒一次。

6.1.2 加强饲养管理 为雏鸭提供舒适的生长环境。因雏鸭出生不久，各项机能尚不健全，免疫力较弱，故需加强环境控制，防止鸭舍过潮，滋生细菌，并注意保温，防止雏鸭发生应激，同时及时通风，将舍内各种有害气体排出。

其次，鸭群要严格全进全出。雏鸭进入新鸭舍前，使用福尔马林、高锰酸钾进行熏蒸。饲养后控制雏鸭养殖密度，5周龄内雏鸭密度20～22羽/m2为佳。

最后，给雏鸭提供新鲜、营养的全价饲料，提高雏鸭的抵抗力。给雏鸭提供干净的饮水，可在饮水中添加营养物质，如电解多维、黄芪多糖等，增强雏鸭的体质。

6.1.3 免疫接种 免疫接种是预防本病的重要手段。各个养殖场需根据实际情况合理制定免疫程序。鸭群免疫接种可分为种鸭免疫接种与雏鸭免疫接种两类。

种鸭免疫一般是在开产前的一月龄注射弱毒疫苗，然后分别在注射后的第一周、第二周再次注射弱毒疫苗强化效果。疫苗的免疫期一般为半年左右，种鸭首次注射后半年应考虑第二次免疫。

雏鸭的免疫一般在出壳后2d 时皮下注射DVH弱毒疫苗，使雏鸭在1周龄时获得免疫力。

6.2 治疗

6.2.1 中草药治疗 方剂1：每100 只雏鸭可使用板蓝根2.5 g、甘草1 g、当归1 g、黄芪4 g、黄柏3 g、龙胆草3 g、钩藤1 g，药物用500 mL 温水搅拌均匀，小火慢煎30min左右，煎好的药液以1.5mL/只让雏鸭灌服，每天两次，连续服用5 d。

方剂2：每100 只雏鸭用栀子3 g、葛根粉2 g、大枣4 g、连翘2g、甘草1g、广木香2 g，加入约100 mL的水混匀后小火慢煎，每只雏鸭灌服1 mL药液，连续用药1周。

6.2.2 高免卵黄抗体治疗 发病早期可使用高免卵黄抗体、康复鸭血清或高免血清对雏鸭进行治疗，使雏鸭获得被动免疫力而减少死亡率。

具体措施如下：将0.1 g左右的头孢噻呋钠粉末溶解在15 mL 0.9%的NaOH 溶液中制成悬液，随后将悬液与高免卵黄抗体（规格500 mL/瓶）充分混匀，给雏鸭肌肉注射，1 mL/只。若雏鸭患病较重，可于初次注射后的第3d 再次注射以加强免疫效果。注射后可在雏鸭饮水中加入多维鱼肝油与黄芪多糖进行辅助治疗，连续服用7 d。