符小春,刘秀玲,王茹娜
(驻马店市中心医院 肿瘤妇科,河南 驻马店 463000)
我国宫颈癌发病率、病死率高,大部分患者确诊时已处于中晚期,临床常采用同步放化疗进行治疗,5 a生存率为60%~70%,但40%左右患者存在肿瘤复发、转移[1-2]。血清因子水平已成为临床病情评估、预测预后的重要手段,因而需寻找新型血清因子预测宫颈癌患者预后,有助于临床调整治疗方案。淋巴细胞/单核细胞比值(lymphocyte/monocyte ratio,LMR)降低与宫颈癌侵袭转移有关[3]。微小RNA(microRNA,miRNA)可调控RNA转录水平功能,参与宫颈癌发生发展过程,研究表明微小RNA-21(microRNA-21,miR-21)表达异常与宫颈癌发病密切相关[4]。转录因子含同源结构域蛋白同源盒(homeodomain-only protein homeobox,HOPX)与DNA靶定、细胞分化、蛋白复合体加工等有关,其在肿瘤组织中表达量降低,可发挥抑制肿瘤作用[5]。目前LMR、miR-21、HOPX与宫颈癌同步放化疗患者预后关系尚未明确,本研究主要探讨LMR、miR-21、HOPX与瘤体体积变化参数关系,并分析其对预后的预测效能。
选取2019年6月至2022年3月医院收治的108例接受同步放化疗宫颈癌患者为研究对象,收集研究对象临床资料,包括年龄、体重指数、生育史、Karnofsky功能状态(Karnofky performance status,KPS)评分[6]、肿瘤家族史、宫颈癌浸润深度、国际妇产科联盟FIGO分期、放疗剂量、合并疾病。纳入标准:符合宫颈癌诊断标准[7],且经病理检查确诊为宫颈癌;首次接受同步放化疗;无腹部手术史;无放化疗病史;签署知情同意书。排除标准:已行宫颈癌根治术;合并或继发性宫颈癌;伴有血液系统相关疾病;对本研究所用药物等过敏;合并严重感染性疾病;合并其他恶性肿瘤。本研究经医院医学伦理委员会批准。
采用铂类为基础的同步化疗联合外照射(external beam radiotherapy,EBRT)、腔内后装治疗(intracavitary brachytherapy,ICBT)为标准治疗方式,EBRT选用适形调强放疗(intensity- modulated radiotherapy,IMRT),依据治疗前MRI、CT图像由靶区勾画系统,定义肿瘤靶区、临床靶区(clinical target volume,CTV)、计划靶区,使用剂量为45 Gy,每次1.8 Gy,每周5次;高剂量率近距离ICBT(HDR-ICBT)。靶区处方剂量:中危靶区每次CTV 5~6 Gy,高危靶区每次CTV 7 Gy,每周2次,共4次,并统计患者放疗总剂量。化疗方案:顺铂(Hospira Australia PtyLtd,生产批号H20140372)75 mg·m-2,每3周使用1次,以21 d为1个周期,共化疗3个周期。治疗结束后通过电话、门诊复查等方式进行随访,随访时间为3个月,采用腹盆腔B超、MRI、胸片、妇科检查等评估有无宫颈癌复发或转移征象,有宫颈癌复发或转移征象纳入预后不良组,否则纳入预后良好组。
研究对象分别于治疗前、治疗后14 d采集空腹肘静脉血5 mL,以3 000 r·min-1离心处理10 min,获得上清液。采用Coulter LH750型血常规自动分析仪(美国贝克曼库尔特公司)检测淋巴细胞计数、单核细胞计数,并计算LMR。采用qRT-PCR法检测miR-21、HOPXmRNA表达量:采用miRNA提取试剂盒(用于检测miR-21)、Trizol试剂(用于检测HOPXmRNA)分别提取血清总RNA,参照反转录试剂盒合成cDNA,使用qRT-PCR试剂盒进行扩增,反应体系为模板cDNA 2 μL,Real-Time Master Mix 10 μL,正反向引物各1 μL,RNase-Free ddH2O补足体系至20 μL;反应条件为95 ℃2 min,95 ℃ 30 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 60 s(循环35次)。采用2-ΔΔCt法计算miR-21、HOPXmRNA表达量。所有引物均使用Primer 6.0设计,委托上海生工生物公司合成。miR-21:F为5’-ACGTTGTGCAGCTTATCAGACTG-3’,R为5’-AATGGTTGTTCTCCACACTCTC-3’。HOPX:F为5’-CAGATCCGTCACAGACTAAG-3’;R为5’-GACTCAAAGGGAAATGCT-3’。
治疗前行MRI检查,获取治疗前瘤体最大径、瘤体体积,经1.5 T MRI扫描,肿瘤呈现层厚5 mm图像,MRI有效图像定义为肿瘤T2加权高信号病灶且与附近组织分界清晰。由2名放疗科医师确定图片中肿瘤区面积,全部肿瘤平面面积与层高乘积即为肿瘤体积,按照美国肿瘤放射治疗协作组指南进行瘤体勾画,得到肿瘤体积数据。
预后不良组宫颈癌浸润深度≥50%、FIGO分期Ⅳ期占比高于预后良好组(P<0.05),见表1。
表1 两组临床资料比较
治疗前两组血清LMR、miR-21、HOPX水平差异无统计学意义(P>0.05)。治疗后14 d两组血清LMR水平、HOPXmRNA表达量高于治疗前,miR-21表达量低于治疗前;预后不良组治疗后14 d血清LMR水平、HOPXmRNA低于预后良好组,miR-21表达量高于预后良好组(P<0.05)。治疗后14 d,预后不良组TVRR(76.85±5.61)低于预后良好组(86.54±6.88),差异有统计学意义(t=7.379,P<0.001)。见表2。
表2 两组血清LMR、miR-21、HOPX水平及TVRR比较
治疗前血清LMR、HOPX与宫颈癌浸润深度、FIGO分期呈负相关,miR-21与宫颈癌浸润深度、FIGO分期呈正相关;治疗后14 d血清LMR、HOPX与TVRR呈正相关,miR-21与TVRR呈负相关(P<0.05)。见表3。
表3 血清各指标与TVRR相关性分析
以宫颈癌同步放化疗患者预后为因变量(预后良好=0、预后不良=1),以前述单因素分析(表1、2)中P<0.05指标/因素作为自变量,所有自变量均进行两分类转化:连续数值指标参考两组均值进行分层,回归过程采用逐步后退法,以进行自变量选择、剔除。回归结果显示,LMR、miR-21、HOPXmRNA与宫颈癌同步放化疗患者预后相关(P<0.05),见表4、5。
表4 赋值情况
表5 宫颈癌同步放化疗患者预后影响因素的logistic回归分析
LMR、miR-21、HOPX对患者预后均有预测价值,且三者联合预测价值最高(P<0.05),见表6。
表6 血清各指标联合预测预后的ROC分析
宫颈癌发生发展与炎症反应、肿瘤细胞侵袭及转移有关,炎症反应可促进中性粒细胞转移至肿瘤细胞周围,增加破坏细胞核酸物质释放量,为肿瘤生长提供有利条件[8]。宫颈癌中晚期患者预后不佳,因而选择可靠指标预测患者预后,对临床调整治疗方案及个体精准化治疗具有重要意义。
淋巴细胞、单核细胞可反映全身炎症反应,并可预测肿瘤细胞侵袭、转移,研究表明LMR降低时机体免疫应答、抗肿瘤免疫能力较弱,肿瘤进展较快,且与宫颈癌患者不良预后密切相关[9-10]。本研究结果显示,预后不良组治疗后14 d LMR低于预后良好组,提示LMR降低与宫颈癌同步放化疗患者预后不良有关。由此推测LMR降低可促进肿瘤侵袭转移,降低抗肿瘤免疫细胞的攻击能力,促进肿瘤细胞增殖、黏附,影响肿瘤生长及转移,并可促使中性粒细胞转移至肿瘤细胞周围,增加活性氧释放量,造成预后不良。TVRR可反映放化疗敏感度,且与宫颈癌预后有关[11]。本研究结果显示,LMR与宫颈癌浸润深度、FIGO分期呈负相关,而与TVRR呈正相关,提示LMR降低可能促进宫颈癌发生发展,并可能作为判断患者预后的潜在指标。miR-21具有癌基因特性,可促进肿瘤细胞增殖、侵袭,抑制肿瘤细胞凋亡,进而参与肿瘤发生发展过程[12-13]。研究表明miR-21可调节激酶磷酸化水平,促进肿瘤生长,致使肿瘤患者预后不良[14]。本研究结果显示,预后不良组治疗后14 d血清miR-21表达量高于预后良好组,其与宫颈癌浸润深度、FIGO分期呈正相关,且与TVRR呈负相关,提示miR-21表达量升高可能促进宫颈癌恶性进展,增加预后不良发生风险。分析其原因可能为miR-21可通过调节磷脂酰肌醇-3-激酶(PI3K)/蛋白激酶 B信号通路,促进肿瘤细胞增殖,抑制细胞凋亡,并可促进上皮-间质转化,增强宫颈癌细胞侵袭性,进而诱发预后不良[15]。
HOPX在多种肿瘤中呈低表达,其高表达可抑制肿瘤细胞增殖、迁移及侵袭[16]。HOPX过表达可促进p21表达,抑制细胞周期蛋白D1、CDK4表达,诱导细胞周期停滞、肿瘤细胞凋亡,抑制体内移植瘤生长[17]。本研究结果显示预后不良组治疗后14 d血清HOPX表达量低于预后良好组,且与临床病理特征、TVRR密切相关,提示HOPX可能参与宫颈癌发生发展过程,且与宫颈癌同步放化疗患者预后不良相关。由此可知HOPX低表达可能促进上皮-间质转化发生,增强宫颈癌细胞侵袭转移能力,促进细胞周期进展,进而降低同步放化疗的治疗效果,致使预后不良发生。目前LMR、miR-21、HOPX单一预测宫颈癌同步放化疗患者预后具有一定局限性,因而本研究选取联合预测模型,结果发现联合预测预后的AUC大于单一指标预测,提示早期实施联合检测血清LMR、miR-21、HOPX水平可能作为临床预测宫颈癌同步放化疗患者预后的有效辅助手段。
血清LMR、miR-21、HOPX水平与宫颈癌同步放化疗患者TVRR及其预后密切相关,联合检测其水平对预后具有一定预测价值,可为宫颈癌同步放化疗患者诊疗提供科学指导。