傅小玲, 张 聪, 丛 梦, 万如风, 李伟丽, 吴 韬
(西华大学食品与生物工程学院,四川 成都 610039)
郫县豆瓣酱是我国著名的传统调味品,其在不同发酵时期具有显著不同的香气特征[1]。 豆瓣酱中香气物质一部分来自原料,另一部分则由豆瓣酱中蛋白质类成分在微生物发酵过程中生成[2]。 目前市场上郫县豆瓣酱的品质参差不齐,以次充好的现象时有发生,因此有必要根据不同发酵时期的香气物质差异,采用仪器分析手段对郫县豆瓣酱进行快速分级。 传统的香气物质检测方法主要采用气相质谱技术,以评估发酵时间对郫县豆瓣酱香气的影响[3-6]。然而,在气相色谱分离过程中,存在着样品预处理步骤烦琐、 色谱柱老化和分离时间较长等弊端,不适合进行香气物质的高通量快速鉴定。
流过式介质电离质谱(SICRIT-MS)是一种高通量质谱检测技术,结构如图1 所示。 它利用电极放电瞬间激发和电离质谱入口端的气态化学物质,来实时识别流入的化学成分, 极大地简化了分析步骤,缩短了检测时间。 该技术的优势还包括可以同时电离中弱极性、非极性的痕量及超痕量的靶向或非靶向标志物分子,大大提升样品分子检测覆盖率[7]。
图1 SICRIT-MS 结构图Fig. 1 Structural diagram of SICRIT-MS
作者以不同发酵时期的郫县豆瓣酱为样本模型,采用SICRIT-MS 进行数据采集,并利用代谢组学手段对不同发酵时期的郫县豆瓣酱特征香气物质进行统计学分析[8],期望建立一种快速、高效、准确地评价郫县豆瓣酱品质的方法,为实现标准、智能和客观的品质判定提供理论基础。
原料豆瓣酱 (原料时期)、 曲瓣子 (曲瓣子时期)、后发酵(3、6、12 个月)样品:成都市旺丰食品有限责任公司;高纯氦气(纯度99.99%)、高纯氮气(纯度99.99%):成都龙泰工业气体有限公司。
SICRIT®SC-20 离子源: 德国Plasmion 公司;AB SCIEX 3500 三重四级杆质谱仪:美国AB Sciex公司;2020 NX GC-MS 仪:日本岛津公司;SPME 手动进样手柄: 上海安普实验科技股份有限公司;HHS-21-4 电热恒温水浴锅: 上海博迅实业有限公司医疗设备厂。
1.3.1 样品制备及前处理将不同发酵时期豆瓣酱样品,经冻干,打磨成粉,于-18 ℃保藏。测试时称取适量冻干粉末样品于EP 管中。
1.3.2 SICRIT-MS 分析SICRIT-MS 分析系统是由一个SICRIT 离子源串联三重四级杆质谱仪组成。 将装有样品的EP 管打开,放置于SICRIT 离子源入口端3 s 进行质谱数据采集。 SICRIT 条件:放电高压1 500 V。 质谱条件:正、负离子模式,去簇电压(declustering potential,DP)40 V,碰撞能量(CE)10 V。 每个样品进行5 次重复实验。
采用Marker View 软件对数据进行峰对齐、保留时间校正和峰面积提取。 在强度阈值为50、相对分子质量偏差为0.01、 保留时间为0.2 s 的条件下收集峰值。 以NIST17 数据库进行辅助定性分析,确定成分的化学结构式及名称。 处理后的数据经SIMCA-P 14.1 软件进行多元数据分析,进行无监督的主成分分析(PCA)和有监督的正交偏最小二乘判别分析(OPLS-DA)。 将处理后的数据用IBM SPSS Statistics 25 软件进行方差分析(ANOVA),同时满足P<0.05 和VIP>1.0 的化合物为不同样本的差异代谢化合物。
当挥发性物质经过介质通路时,高压放电产生的分子离子会瞬间被质谱检测[9]。 为了提高检测灵敏度,需要对质谱参数优化。由于DP 会显著影响化合物电离效率[10],因此通过测量样品在正、负离子两种模式下一级离子的响应强度来评价DP 对样品检测的影响。图2(a)为样品在正离子模式下一级离子的响应强度,DP 在20~40 V 时呈现上升趋势,DP为40 V 时,响应强度达到最高;DP 大于40 V 后呈现下降趋势。图2(b)为样品在负离子模式下一级离子的响应强度,DP 为20~30 V 时呈现上升趋势;DP为30~40 V 时变化不明显,趋于稳定状态;DP 为40~60 V 时呈现下降趋势,且在DP 大于40 V 后离子响应强度迅速下降。 在正、负离子模式下一级离子的响应强度均在DP 为40 V 时最佳。 因此,选择40 V 作为最佳的去簇电压。
图2 SICRIT-MS 测定豆瓣酱方法优化Fig. 2 Optimization of method for determination of broad-bean paste by SICRIT-MS
主成分分析(PCA)是一种常见的数据分析方式[11],把多个指标转化成少数综合指标的一种多元数据统计方法[12]。 如图3 所示,PC1、PC2 和PC3 分别代表3 个主成分,不同颜色散点表示不同发酵时期豆瓣酱。 从图中可以看,主成分分别解释了正离子模式和负离子模式下总变异的64.6%和73.7%。 在正离子模式3D-PCA 得分图中可以看到原料豆瓣酱和曲瓣子较接近(见图3(a)),说明两者在挥发性物质上有一定相似性。 后发酵12 个月样品则与3 个月以及6 个月样品有明显的区分, 后发酵12 个月样品挥发性物质发生了显著变化。 从负离子模式3D-PCA 得分图中可以看到(见图3(b)),原料豆瓣酱与曲瓣子没有显著的区分,说明在这两个发酵时期的豆瓣酱中挥发性物质有一定的相似性。 后发酵3、6、12 个月样品有明显的分离, 其中后发酵12 个月样品依然区分明显。
图3 SICRIT-MS 正、 负离子模式下豆瓣酱样品的3DPCA 得分图Fig. 3 PCA score of broad-bean paste samples under positive and negative ion modes of SICRIT-MS
本实验中,ESI-数据生成的PCA 模型的质量(R2=0.834,Q2=0.587) 要优于ESI+(R2=0.735,Q2=0.462)。 根据正、负离子模式下PCA 得分图可以看出豆瓣酱在发酵过程中随着发酵时间的延长其挥发性物质有明显的变化,通过后期的不断发酵才形成了豆瓣酱的独特风味。
使用正交偏最小二乘判别分析 (OPLS-DA)生成S-plot 图,对数据进行进一步挖掘[13]。在建立模型时预先提供了豆瓣酱的分组信息,充分提取豆瓣酱在5 个发酵时期样本间的差异信息,能够更加有效降低组内个体差异对模型的影响,有利于排除在发酵过程中由无关变量引起的组间差异放大,同时增强模型的解释能力。
通过SICRIT-MS 数据获得的OPLS-DA 得分图如图4 所示。 在OPLS-DA 中,3 个主成分分别解释了正离子模式和负离子模式下总变异的64.8%和73.7%。
图4 SICRIT-MS 正、负离子模式下豆瓣酱样品的OPLSDA 得分图Fig. 4 OPLS-DA score of broad-bean paste samples under positive and negative ion modes of SICRIT-MS
通过参数指标对模型质量进行评估,ESI+模式下R2y(cum)=0.957,ESI-模式下R2y(cum)=0.934,以及ESI+模式下Q2(cum)=0.925,ESI-模式下Q2(cum)=0.896, 说明在两种采集模式下所得数据建立的OPLS-DA 模型都拟合了较多的信息, 具有良好的预测能力,且Q2均大于0.850,进一步说明了模型的可靠性与预测性。
为了更加有效地防止发生过度拟合的情况,运用置换检验来验证模型的有效性[14]。 图5 为200 次循环迭代置换检验的结果。 通过原始模型与置换检验得出的数据进行比较,ESI+模式下,Q2=-0.424,ESI-模式下,Q2=-0.407, 最右侧Q2大于左侧任何一个y变量随机排列模型的Q2,并且在y轴上的截距小于0,则认为模型质量较好,没有出现过拟合情况[15]。Q2的回归直线与y轴的交点在负半轴,可以说明建立的OPLS-DA 模型是稳健可靠的。
图5 OPLS-DA 模型的200 次循环迭代置换检验结果Fig. 5 Results of 200 cyclic permutation tests of OPLSDA model
为了研究不同发酵时期豆瓣酱的差异性,对其进行特征化合物的筛选与鉴定,这是本研究的重要环节之一。上述实验中通过SICRIT-MS 获得的数据经OPLS-DA 后,样本得到很好区分,模型具有良好的可靠性与预测性。 采用S-plot 图选择差异变量,以VIP 值大于1.0 为标准,选择对模型有较大影响的变量[16],并以P<0.05 作为标准筛选差异变量[17-18],对差异变量的均值进行t检验。 VIP 值即空间投影重要性或者差异权重贡献值,它反映了每个变量对豆瓣酱发酵样本分类判别的影响,以及对模型解释的贡献度。通常认为数值大于1.0 时,变量对组间分离具有显著贡献。 进一步对VIP 值大于1.0 的变量进行方差分析(ANOVA),采用最小差异(LSD)方法确定样本均值之间的差异。 最终在正离子模式下筛选出18 个差异碎片离子, 在负离子模式下筛选出11 个差异碎片离子,结果见表1。
表1 基于SICRIT-MS 正、负离子模式下差异碎片离子筛选结果Table 1 Screening results of differential compounds in positive and negative ion modes based on SICRIT-MS
聚类分析是一种无监督模式的识别方法[19],可以验证数据的有效性,辅助建立预测模型,有利于进一步了解豆瓣酱在发酵过程和不同发酵时期挥发性风味化合物的变化。 将SICRIT-MS 在正、负离子测定模式下所得碎片离子的相对分子质量与GC-MS 建立的数据谱库进行比对,辅助SICRIT-MS对不同发酵时期豆瓣酱的挥发性物质进行定性。正、负离子模式下差异碎片离子的聚类分析结果如图6 所示。
图6 SICRIT-MS 正、负离子模式下豆瓣酱样品的聚类分析热投射图Fig. 6 Thermal projection diagram of cluster analysis of broad-bean paste samples under positive and negative ion modes of SICRIT-MS
通过对5 个发酵时期豆瓣酱的挥发性物质进行检测, 测定出的挥发性呈香物质主要为醇类、醛类、酯类、酸类、酚类、酮类、烃类及芳香烃类。 豆瓣酱在发酵过程中,由于蛋白酶的水解作用,使得游离氨基酸增加, 其中羰基和游离的氨基酸发生Maillard 以及Streeker 反应[20],形成了酯类、醛类、酚类、醇类等挥发性物质[21-23]。 酯类、醇类在正离子模式下更易得到H+形成[M+H]+,因此,在正离子模式下能得到更丰富的化合物信息[24]。
在正离子模式下,选取豆瓣酱在发酵过程中可初步检测到的相对含量变化较为突出的18 个差异碎片离子,进行聚类分析。3-苯丙酸-2-苯乙基酯和己醛两种物质随着发酵时间延长, 相对含量减少。己酸乙酯和芳樟醇两种物质相对含量在曲瓣子时期最多,再随着发酵时间增加而消失,可将己酸乙酯为曲瓣子时期特征香气物质。 大部分乙酯含果味和甜味,有助于豆瓣酱中风味的形成[25]。豆瓣酱后发酵3 个月时期特征香气物质为(4S)-4-甲基-1-己醇和癸酸乙酯。 苯乙醛和正戊酸乙酯为豆瓣酱后发酵6 个月时期特征香气物质。 2-苯基-2-丁烯醛和丙酸-2-苯乙酯相对含量随着发酵时间延长而增多,在豆瓣酱后发酵12 个月时期最多。 乙酸三联酯只在原料豆瓣酱和曲瓣子中检测出,可作为区分后发酵豆瓣酱的特征性风味物质。 在正离子模式下,可以通过以上较明显的挥发性物质的检测来判断豆瓣酱发酵的阶段,从而判断豆瓣酱的最佳发酵时间。 在不同发酵时期检测到的最突出物质是提供豆瓣酱当前时期的主要风味物质,这些物质在其他豆瓣酱发酵时期的相对含量均处于稳定状态,无明显的变化。
在负离子模式下,选取豆瓣酱在发酵过程中可初步检测到的相对含量变化较为显著的11 个差异碎片离子进行聚类分析。 其中,对二甲苯是原料豆瓣酱中的特征性风味物质。 而在曲瓣子时期,3-辛烯-2-酮是主要香气成分, 此外芳樟醇的相对含量也较高。 芳樟醇既有紫丁香、铃兰花香,又有果香气息[26],为豆瓣酱发酵时香气形成提供了一定的贡献。醇类化合物都具有特殊香气, 且芳香阈值较低,对其他成分具有促进作用[27]。随着发酵时间延长,豆瓣酱后发酵3 个月时甲基丙烯酸异戊酯、己酸乙酯相对含量增加。 豆瓣酱后发酵6 个月时产生新物质1,1-二乙氧基-3-甲基丁烷。 豆瓣酱后发酵12 个月时异戊酸异丁酯、4-乙基愈创木酚和苯乙酸乙酯生成, 作为后发酵12 个月时期豆瓣酱的特征性风味物质。 在豆瓣酱发酵过程中产生的酸类、酚类等化合物也是豆瓣酱不可或缺的风味物质,起到调节风味的作用,而酸类、酚类化合物在负离子模式下更易失去H+离子形成[M-H]-[28]。
在豆瓣酱发酵的5 个时期,酯类化合物的种类最多,作为豆瓣酱的主要呈香物质,酸和醇的酯化反应是形成酯的主要反应[29]。 醛类和酮类化合物都是羰基类的化合物, 由醇氧化和酸还原得到的,属于不稳定的化合物, 在豆瓣酱发酵过程中种类少,但提供了豆瓣酱花果香的独特风味[30]。 烃类化合物主要由烯烃类化合物组成, 同时含有少量的烷烃,烃类化合物大多数不具备香味, 风味阈值较高,对豆瓣酱的风味贡献较少。 豆瓣酱中的烯烃类化合物,风味阈值较高,对豆瓣酱的风味贡献较大。 芳香烃类化合物种类最少,但其因为呈味阈值较小[31],本身可能具有发酵豆制品的独特风味,对豆瓣酱的醇厚风味的形成有直接的影响[32]。
本研究中首次成功将SICRIT-MS 技术与代谢组学技术相结合,创立了一种快速评估郫县豆瓣酱发酵过程中香气物质的方法,在质谱正离子模式下筛选出18 个差异成分, 在负离子模式下筛选出11个差异成分,为郫县豆瓣酱的发酵和数字化生产提供了技术支持。