中国东海倪氏异冒藻(Heterocapsa niei)的超微形态结构及其分子特征*

冷天泽 顾海峰 王瑞芳, 3 郭卓然 陆斗定 戴鑫烽

中国东海倪氏异冒藻()的超微形态结构及其分子特征*

冷天泽1顾海峰2王瑞芳1, 3郭卓然1陆斗定1戴鑫烽1①

(1. 自然资源部海洋生态系统动力学重点实验室 自然资源部第二海洋研究所 浙江杭州 310012; 2. 自然资源部海洋生态保护与修复重点实验室 自然资源部第三海洋研究所 福建厦门 361005; 3. 浙江大学海洋学院 浙江舟山 316000)

异冒藻属()包含多种可致有毒有害赤潮的物种, 其中2019年在福建近海赤潮中分离的倪氏异冒藻()被证明有毒, 然而对其超微形态结构, 特别是对作为该属重要的分类保守特征的体鳞, 研究还不充分。利用多种形态学方法和ITS片段分析了从厦门湾附近分离的藻株(SIO-H3), 形态学和遗传学结果都显示该藻株属于倪氏异冒藻。其细胞呈双锥形, 长14.3～18.2 μm, 宽8.4～10.9 μm,甲板方程式为Po, cp, 5′, 3a, 7″, 6c, 5s, 5″′, 2″″。同时, 发现了两个与之前描述不同的形态特征, 该藻株细胞具有多个蛋白核(pyrenoid)和两种形态体鳞(body scale): 一种体鳞基底层(basal layer)为粗网状纹, 上层中心处有一长中心刺(central spine)向上立起, 中心刺所在位置等长向外辐射三根中心脊(central ridge), 中心脊末端有三根直立的次长外围刺(sub-peripheral spine); 另一种体鳞有三层结构, 其中基底层为致密网状纹, 并有三个次中心孔(sub-peripheral pore), 中层和顶层各有一三叉中心脊。该研究改变了异冒藻分类研究中一种异冒藻对应一种体鳞结构的观点。

异冒藻; 体鳞; 蛋白核; 赤潮; 分类学

异冒藻属()是一类重要的具壳板的甲藻, 包含一些赤潮种, 如环鳞异冒藻(Horiguchi)、极小异冒藻(Loeblich Lii)、圆形异冒藻(Hansen)、斯氏异冒藻(Tillmann)和渤海异冒藻(J Xiao & R Li)(Baek, 2011; Tas, 2015; Sunesen, 2020), 由其形成赤潮的区域包括温带和亚热带海域的绝大多数海区(Tas, 2015; Ojamäe, 2016; Xiao, 2018)。其中环鳞异冒藻和渤海异冒藻产毒, 尤其环鳞异冒藻因其赤潮期间多次引起鱼虾死亡而备受关注(Hansen, 1995; Baek, 2011; Millette, 2017)。

异冒藻属是Stein在1883年建立的, 但由于早期缺少清晰的形态学特征描述和分子学数据, 其模式种有过变动。Stein最初在三角薄甲藻(Ehrenberg)的基础上建立了该属的模式种为三角异冒藻(Stein)(Tillmann, 2017), 130年后, 依据更清晰的形态学和分子学特征, Gottschling等(2019)建议将三角异冒藻改为Tillmann, 而把斯氏异冒藻定为异冒藻属的模式种(Tillmann, 2017)。在Morrill等(1981)描述了该属的完整甲板方程式之后, 甲板的排列方式成为该属种间鉴定的重要参考依据(Iwataki, 2008)。到目前为止, 异冒藻属一共包含29个种(Hanifah, 2022; Wu, 2022), 该属公认的甲板方程式为Po, cp, 5′, 3a, 7″, 6c, 5～8s, 5″′, 0～1p, 2″″(Tas, 2015)。异冒藻属不同种之间的细胞大小差异较大, 如微小异冒藻(Pomroy)长为7.4 μm, 而太平洋异冒藻(Kofoid)长为45 μm (Pomroy, 1989; Iwataki, 2008)。体鳞是异冒藻属一个十分重要的分类保守特征, Iwataki等(2004)提出可以根据不同特征的体鳞来进行种间区分。20世纪80年代, 在香港暴发了多次环鳞异冒藻赤潮, 这是首次在中国海域报道异冒藻(Iwataki, 2002a)。之后, 在东海发现了微小异冒藻和斯氏异冒藻(刘瑞玉, 2008)。近几年, 多次在长江口、大连和青岛近岸检测到环鳞异冒藻和圆形异冒藻(王金辉等, 2006; 刘霜等, 2014)。2008和2012年, 在辽宁盘锦养殖池中暴发了赤潮, 造成大量虾和中华绒螯蟹幼虫死亡, 最后该赤潮原因种被描述为一个新种: 渤海异冒藻(Xiao, 2018; 冯彤彤, 2019)。2019年, 福建霞浦暴发的赤潮导致大量鲍鱼死亡, 分离出的堀口异冒藻()、极小异冒藻和倪氏异冒藻对卤虫有致死效应, 且在有光照时对兔的红细胞有溶血性(Wu, 2022)。这是倪氏异冒藻在中国首次被报道, 林森杰教授团队对其形态学和分子学做了一定的描述(Wu, 2022)。本次研究是在此基础上开展的更为细致的超微形态学研究, 并详细阐述了多层膜藻类的激光共聚焦显微镜、扫描电镜、透射电镜样品和体鳞染色制作过程, 希望能给后来者提供参考。

1 材料与方法

1.1 藻株分离与培养

实验藻株(编号: SIO-H3)于2016年6月在福建省厦门湾采用单细胞分离法得到。采用f/2培养基进行培养(Guillard, 1975), 取远洋海水, 用0.2 µm GF/F膜进行过滤, 加入纯水调节盐度在31～33, 于121 °C下高温高压灭菌30 min, 浓缩培养基和灭菌海水以1 mL︰1 L比例进行配置。培养环境温度(20±1) °C, 光照强度130 µmol/(m2·s), 光照周期12 h︰12 h (光︰暗)。

1.2 光学显微镜和激光共聚焦显微镜观察

取1 mL指数生长期的藻株培养液,置于光学显微镜(BX53, Olympus, 日本)下观察并拍照,使用Olympus cell Sens Standard 2.3 (Olympus, 日本)软件测量细胞大小, 测量细胞数50个或以上。利用激光共聚焦显微镜观察叶绿体和细胞核的形态和分布特征, 为观察到细胞核, 在拍摄前, 加入SYBR green I (Sigma- Aldrich, 上海, 中国, 终浓度0.1 µg/mL)试剂进行染色30～60 s, 在630× (TCS SP5 II, Leica Mannheim, 德国)下拍摄。

1.3 扫描电子显微镜样品处理

1.3.1 固定 取2 mL指数期藻液于2 mL离心管中, 以3 000 r/min转速离心10 min (22331, Eppendorf AG, Hamburg, 德国), 去除上清液, 加入1.5 mL 2.5%浓度戊二醛溶液(盐度30)中固定(生工生物工程(上海)股份有限公司,中国), 于冰箱内4 °C冷藏过夜。

1.3.2 脱盐和脱水 用天然灭菌海水(盐度30)和纯水配置不同盐度梯度(海水与纯水体积比依次为9︰1, 7︰3, 5︰5和3︰7)混合处理液, 将样品浸入其中进行脱盐, 每个梯度30 min, 最后用纯水进行两次30 min的脱盐。再用30%、50%、70%、90%和100%浓度系列乙醇进行梯度脱水, 每一步30 min, 最后用100%乙醇再进行一次30 min脱水处理。

1.3.3 干燥、喷金和观察 样品干燥使用二氧化碳临界点干燥仪(大连卓尔高科技有限公司, 中国), 将干燥舱温度调节至10 °C, 之后放入样品, 充入二氧化碳液体, 待液体覆盖样品后, 等待5 min, 之后排气, 充-排气一共循环3次。然后用导电胶将样品贴到铜制载物台上, 进行表面喷金处理(MSP-1S, Vacuum Device, 日本), 样品制作完成。利用扫描电子显微镜(Ultra 55, Zeiss, Carl 115 Zeiss AB, 德国)进行拍照, 照片通过软件Adobe Photoshop 2021 (Adobe Systems, San Jose, California, 美国)进行后期处理。

1.4 透射电子显微镜样品处理

1.4.1 固定 取2 mL指数生长期藻液于2 mL离心管中以3 000 r/min离心5 min (22331, Eppendorf AG, Hamburg, 德国), 去除上清液后, 加入1.5 mL 2.5%浓度的戊二醛溶液(盐度30天然灭菌海水配置), 室温下固定4 h。之后用中性磷酸缓冲液漂洗样品3次, 每次15 min, 再用锇酸溶液(盐度30灭菌天然海水配置, 终浓度1%)固定1～2 h, 用中性缓冲液洗涤3次, 每次15 min。

1.4.2 脱水 将上述样品依次置于梯度浓度(30%, 50%, 70%, 80%, 90%和95%)乙醇溶液中, 每个梯度15 min, 用100%乙醇和丙酮(100%浓度)依次再各脱水20 min。

1.4.3 渗透与包埋 在室温下, 将上述样品加入到用Spurr包埋剂(SPI-CHEM, 美国)与丙酮的混合液(体积比1︰1)中渗透1 h, 再加入到用Spurr包埋剂与丙酮的混合液(体积比3︰1)中渗透3 h, 之后加热100% Spurr包埋剂到70 °C, 包埋样品, 过夜。

1.4.4 切片、染色和观察 过夜包埋后的样品用超薄切片机(Leica Microsystems, Buffalo Grove, 美国)切片, 获得厚度70～90 nm的细胞切片; 切片经柠檬酸铅溶液、醋酸双氧铀(SPI-CHEM, 美国)和50%乙醇溶液各染色5～10 min后在透射电镜(Hitachi-Science & Technology, 日本)中观察。

1.4.5 体鳞染色观察 吸取一滴指数生长期藻液于网状碳支持膜(Formvar-coated)上, 然后用暖灯照射等待液滴干燥后, 用双蒸水洗涤3次, 之后用乙酸铀酰水溶液(2%浓度)染色10 min, 着色后的体鳞在透射电镜下观察。

1.5 DNA提取, PCR扩增和测序

取200 mL指数生长期的藻液(密度超过10 000 cells/mL)进行离心收集, 采用DNA提取试剂盒(TaKaRa Mini BEST Plant Genomic DNA Extraction kit, 宝日医生物技术(北京)有限公司)进行DNA提取, 提取方法按说明书进行。将提取的基因组DNA作为PCR反应模板来扩增ITS序列,扩增引物为Tits(+)和Tits(-)(唐祥海等, 2006)。于0.2 mL PCR管中, 配置20 μL反应体系: 10 × PCR buffer, 2 µL dNTP (2.5 mmol/L), 正向引物与反向引物各1 μL, 超纯水12.8 µL, 0.2 µL Takara Ex Taq polymerase (5 U; TaKaRa, Osaka, 日本)和1 µL DNA。使用PCR扩增仪T100TMThermal Cycler (Bio-Rad, CA, 美国)进行ITS片段基因扩增, PCR程序如下: 95 °C下预变性5 min; 95 °C下变性30 s, 52 °C退火30 s, 72 °C延伸90 s, 共35个循环; 72 °C延伸90 s。PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,然后选取条带清晰的PCR扩增产物送于生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序。

1.6 系统发育分析

将测序所得DNA正反向序列用Contig C Express软件拼接查看并进行编辑。将编辑好的序列放入基因库(NCBI)进行比对并选择下载构建系统发育树所需的序列。使用Bio Edit v7.0.5 (Hall, 1999)软件将目标藻株提取的序列与从GenBank中下载的序列进行对比及整理, 切除首尾多余碱基, 利用MEGA-11构建系统进化树, 采用最大似然法和邻接法计算相似度。

2 结果

2.1 显微光学和激光共聚焦照片

倪氏异冒藻为一种浮游甲藻, 细胞呈双锥形, 形似花生, 通过对50个以上指数期细胞进行测量, 该藻株体长14.3～18.2 μm [平均(16.1±2.1) μm], 体宽8.4～10.9 μm [平均(9.6±1.4) μm], 长宽比1.3～2.2, 上锥(8.4～10.9 μm)与下锥(9～10.9 μm)宽基本相当(图1a～1c)。叶绿体遍布周身(图1a～1c黄褐色和1e～1f红色区域), 细胞核呈球状(图1d和1f绿色区域), 能看到游动鞭毛(图1a), 有多个蛋白核(pyrenoid), 呈透明液滴状(图1c)。

注: 图a: 腹面观; 图b～c: 背面观; 图d～f: 使用细胞核染色剂SYBR Green I染色后的细胞核(绿色)和叶绿体(红色)。py: 蛋白核; ab: 聚集体; n: 细胞核; lf: 鞭毛。比例尺: 5 μm

2.2 扫描电镜照片

本实验藻株(SIO-H3)的甲板方程式为Po, cp, 5′, 3a, 7″, 6c, 5s, 5″′, 2″″ (图2a～2d), 体鳞(body scale)分布于整个藻细胞表面(图2e), 横鞭毛缠绕在横沟内(图2c), 体鳞的最小组成单元呈圆三角形, 边长在180～200 nm之间, 每个最小组成单元边长几乎相等, 且每个最小单元被三条中心相连的脊(ridge)均分成3块, 每一小块的形状和排列方式一致(图2f)。

图2 倪氏异冒藻扫描电子显微镜照片

注: 图a, e: 腹面观; 图b: 背面观; 图c, d: 上锥部细节; 图e: 体鳞覆盖细胞表面; 图f: 体鳞细节特征。as: 沟前板; las: 左沟前板; lps: 左沟后板; rs: 右沟板; ps: 沟后板; cp: 顶板; po: 顶孔板; tf: 横鞭毛。图a～e比例尺: 2 μm; 图f比例尺: 100 nm

2.3 透射电镜照片

利用透射电镜可以观察到细胞内各细胞器的形态。细胞壁(膜)由多层膜构成(图3a～3b, 3f); 叶绿体位于细胞壁(膜)下方, 紧贴细胞壁(膜), 由许多片层堆叠而成(图3a～3b, 3f); 细胞核位于下锥, 由多个棒状染色体(interphase chromosome)聚集组成(图3b, 3f); 多个蛋白核分布在细胞各个区域, 其横截面近似圆形(图3a～3b); 横鞭毛孔周围分布着基体(basal body)(图3a); 淀粉鞘(starch sheath)横截面呈椭圆形, 比蛋白核大(图3a)。细胞存在两种不同形状的体鳞(图4): 一种边长为328～406 nm(所测体鳞数目>10个), 底层为粗网状纹理的近圆三角结构, 每个鳞片上层正中央有一直立中心刺(central spine), 以此为中心呈约120°角向外辐射出三根中心脊(central ridge, 长约100 nm), 在中心脊末端有1根与直立中心刺平行的外围刺(peripheral spine), 同时中心脊末端分别向两侧再以约120°角辐射出相对细长的拱形外围脊(peripheral ridge), 3个底层外围脊末端之间通过拱形外围脊相连形成3个钟形曲线结构(图3c～3d, 3k～3m, 4a), 拱形外围脊与底层交汇处共长有6根相对较短的次长外围刺(sub-peripheral spine)(图3d～3k), 故每个鳞片由1根中心刺、3根中心脊、3根拱形外围脊、3根底层外围脊、3根外围刺和6根次长外围刺组成, 拱形外围脊与中心脊、外围刺和中心刺一起构成一个凸起立体结构(图3d, 3k～3m); 另一种鳞片呈圆角内凹边三角形, 边长为290～575 nm (所测体鳞数目>10个), 鳞片有三层结构, 基底层为致密网状结构, 有3个次中心孔, 外边缘有共有15条立柱(upright), 立柱顶端变尖成短刺(有6根立柱无短刺, 图3b), 横脊(horizontal beam)将15根立柱顶端连接起来, 横脊所在平面为中层, 在中心以约120°角等长向外辐射三根中心脊(central ridge), 将中层均分成三部分, 每部分的外形近似规则多边形, 三根中心脊末端与横梁相连构成中间层, 与中心脊相邻两立柱无短刺, 中心脊所连横梁上方有一“人”形斜脊, 斜脊最高处向上伸出一直立刺, 立刺近顶端位置向内伸出3根中心脊, 汇交于体鳞中心点并构成顶层, 顶层中心上方有一直立短刺(图3h～3j, 4b)。

图3 倪氏异冒藻透射电子显微镜照片

注: 图a, b: 细胞纵切面; 图f: 细胞横切面; 图c～e 和g～n: 体鳞; n: 细胞核; py: 蛋白核; bb: 基体; ch: 叶绿体; ss: 淀粉鞘; ic: 染色质

图4 倪氏异冒藻两种体鳞结构示意图

注: a: 体鳞结构1; b: 体鳞结构2。1: 外围刺; 2: (直立)中心刺; 3: 次长外围刺; 4: 中心脊; 5: 底层外围脊; 6: 拱形外围脊; 7: 短刺; 8: 斜脊; 9: 附中心; 10: 横脊; 11: 立柱

2.4 系统发育分析

本次实验藻株提取了一段包含18S、ITS和28S三个片段在内的长基因(用于建树的ITS长度为571 bp, NCBI登录号为ON682372)。以微小原甲藻作为参考株, 与其他文献中的异冒藻一起建立系统发育树。利用最大似然法和邻接法两种方法构建的发育树其主干拓扑结构基本一致, 其中个别节点略有不同(用“*”表示); 来自不同地区的三株倪氏异冒藻聚成一支, 其中: ON682372(厦门湾)和JN020158 (阿曼海)两株的自展值(bootstrap values) 93/97, 这两株与另一株(福建海域ON459702)的自展值为100/98 (图5)。

图5 基于ITS序列所构建的异冒藻属的系统发育树

注: 节点数字代表最大似然法(左)和邻接法分析的置信值(右),省略70%以下置信值,可信度检测1 000次

通过基于ITS分子序列的Jukes-Cantor遗传距离矩阵比较发现, 三株倪氏异冒藻的核苷酸差异为0.015 7和0.026 6, 与同属藻株之间的核苷酸差异范围为0.015 7～0.237 0, 与外属微小原甲藻的核苷酸差异是0.431 7 (表1)。

3 讨论

在温带和亚热带都暴发过多种异冒藻赤潮, 其呈现的地理扩张需引起我国的重视(Matsuyama, 1997; Matsuyama, 2012; Tas, 2015; Benico, 2021; Choi, 2021)。2008和2012年, 在我国大连近岸养殖池中暴发了渤海异冒藻赤潮(Xiao, 2018)。2019年, 在福建海域赤潮暴发期间分离出的倪氏异冒藻、堀口异冒藻和极小异冒藻对卤虫有致死性, 在有光条件下对兔的红细胞具有溶血性(Wu, 2022), 这反映了在我国暴发各种有毒有害异冒藻赤潮可能性在增大。然而, 由于异冒藻细胞较小, 其种间形态特征不明显, 存在一定的鉴定难度(Pomroy, 1989; Iwataki, 2008)。根据上锥和下锥大小比例可将该属划分成两大类: 上锥比下锥大(北极异冒藻Horiguchi,披针异冒藻Iwataki & Fukuyo,微小异冒藻和圆形异冒藻), 其余种类上锥和下锥大小基本一致(Iwataki, 2003; Iwataki, 2008)。倪氏异冒藻的长度和宽度与北极异冒藻和渤海异冒藻(Iwataki, 2008; Rintala, 2010; Xiao, 2018)相当, 该藻是一种世界广布种, 在西北太平洋(Morrill, 1983)、贝尔海(Belt Sea)(Hällfors, 2004)、日本(Yoshida, 2003)、厦门海域(Wu, 2022)和马来西亚(Razali, 2022)均有检测到, 且在马来西亚野外环境中, 密度达到7 000 cells/L(Razali, 2022)。2018年福建福宁湾海域表层沉积物中检出了倪氏异冒藻孢囊(王朝晖等, 2022), 一定程度上表明该藻在早期就可能在此海域发生过赤潮事件(黄海燕等, 2009)。

异冒藻与多种甲藻形态较为相似, 如环胺藻()(Luo, 2016)和别什莱藻() (Luo, 2013), 加之细胞较小, 其属内种间就更加难以区分。细胞核和蛋白核的相对位置是异冒藻属种间鉴定的重要特征(Iwataki, 2008), 倪氏异冒藻、喜沙异冒藻(Tamura)和极小异冒藻的细胞核处于下锥部, 堀口异冒藻、卵形异冒藻(Iwataki & Fukuyo)和拟三角异冒藻()的细胞核位于蛋白核上方(Iwataki, 2008)。本实验藻株细胞核处于下锥底部(图1a～1b, 1f), 结合细胞核位置(图4b), 基本可以确认在细胞核下方没有蛋白核的空间, 即倪氏异冒藻蛋白核位于细胞核上方, 这和之前研究结果一致(Iwataki, 2008)。而且本藻株(SIO-H3)甲板方程式Po, cp, 5′, 3a, 7″, 6c ,5s, 5″′, 2″″ (图2a～2d)与Iwataki(2008)描述一致。

在分类学上, 异冒藻有一个明显的特征是细胞表面布满了体鳞(Morrill, 1981; Iwataki, 2008), 除异冒藻外, 目前只在Watanabe, Suda, Inouye, Sawaguchi & Chihara(Watanabe, 1987, 1990)和海洋尖尾藻(Dujardin)(Clarke, 1972, 1976)中见到过体鳞的详细描述(Iwataki, 2003, 2004)。海洋尖尾藻的体鳞是扁平的, 呈椭圆形, 遍布细胞表面和鞭毛(Loeblich III, 1968; Pennick, 1977),.和异冒藻的体鳞是立体结构(Iwataki, 2004)。异冒藻中第一个体鳞被清晰描述的物种是三角异冒藻(Pennick, 1977; Morrill, 1983)。随着环鳞异冒藻(Horiguchi, 1995)、披针异冒藻和堀口异冒藻(Iwataki, 2002b)的体鳞也被逐渐详述后, 体鳞被视为该属一种重要的分类保守特征用于属内物种鉴定(Iwataki, 2002c; Yoshida, 2003)。Iwataki等(2004)集中描述了12种异冒藻的体鳞特征, 提出利用体鳞基底形状(the shape of basal plate)、中央孔(central hole)的有无和刺(uprights, spine, bars)的数量来区分不同异冒藻, 如斯氏异冒藻的基质底部(basal plate)为三角形, 环鳞异冒藻为圆形, 披针异冒藻为六边形(Iwataki, 2004); 披针异冒藻和圆形异冒藻有一个中央孔(central hole), 其他异冒藻则没有或还没发现(Iwataki, 2004); 三角异冒藻、圆形异冒藻、极小异冒藻、拟三角异冒藻、卵形异冒藻、东方异冒藻(Iwataki, Botes & Fukuyo)、Herman & Sweeney和堀口异冒藻在基底面上有6根脊(ridge), 披针异冒藻和倪氏异冒藻只有3根, 而北极异冒藻(Horiguchi T)有3或6根(Iwataki, 2004)。在之前的研究中, 倪氏异冒藻只报道了一种类似图4b的体鳞结构(Iwataki, 2004; Iwataki, 2008), 不同的是, 次中心为刺而非本次研究观察到的圆孔(图3e～3f)。本次研究我们不仅在倪氏异冒藻中同时记录到了两种体鳞结构, 而且描述了一种新的体鳞结构(图3c～3d、3k～3n, 4a)。除倪氏异冒藻外, 北极异冒藻和环鳞异冒藻在不同的生长阶段也具有不同的体鳞(Iwataki, 2004), 成熟细胞的体鳞(mature scale)相比不成熟细胞的体鳞(immature scale)基底外形更圆润, 层次更为丰富, 刺或脊(spine)更多更长; 圆形异冒藻和堀口异冒藻基底的网状结构随着室内培养多代后会消失(Iwataki, 2004)。虽然本次实验藻株采用的是指数生长期的细胞, 但是目前还无法完全排除这两种体鳞为不同时期细胞所有。不同倪氏异冒藻藻株的体鳞边长也不相同, 如有210 nm (藻株编号: UTEX1654)(Morrill, 1981), 300 nm (藻株编号: CCMP447, NIES420和TG607-1)(Iwataki, 2004)和(290～433 nm)(藻株编号: SIO-H3)。

此外, 在之前的文章中(藻株号: UTEX1564), 只有一个或者两个(细胞分裂时)蛋白核(Iwataki, 2008), 而本研究中的倪氏异冒藻含有多个蛋白核, 这说明倪氏异冒藻蛋白核数量存在多种可能。

ITS系列作为非编码区, 承受的选择压力较小, 相较于其他区域变化较大, 通过ITS系列的系统发育分析, 常常用于解决一些甲藻类的分类学模糊问题(Yoshida, 2003; Wayne, 2007; Stern, 2012)。但使用ITS序列进行系统进化研究有条件性, 对分析对象的序列必须做出谨慎选择和调整(谢子强等,2017)。在对基于ITS的甲藻物种内和物种间遗传距离的总体评估中, Wayne等(2007)发现大多数不同甲藻间的未校正距离总是在0.04以上, 本实验中的藻株和另外两株倪氏异冒藻在此区间内。对于微小物种鉴定而言, 无论是传统的形态学方法还是利用分子技术手段, 两者都必须相互借鉴和补充(谢子强等, 2017)。

4 结论

根据对藻株(SIO-H3)形态学和分子特征研究, 以及相关的研究报告得到以下结论:

(1) 形态学特征和分子进化发育分析证实该研究藻株为倪氏异冒藻。

(2) 先前研究倪氏异冒藻只有一个蛋白核, 本次研究发现倪氏异冒藻细胞质中有多个蛋白核。

(3) 先前研究只观察到倪氏异冒藻的一种体鳞形态, 本次研究发现了倪氏异冒藻有两种形态体鳞: 一种体鳞基底层为粗网状纹路, 上层中心处有一长中心刺向上立起, 中心刺所在位置等长向外辐射三根中心脊, 中心脊末端有三根直立的次长外围刺(该种体鳞结构为第一次报道); 另一种体鳞有三层结构, 其中基底层为致密网状纹, 并有三个次中心孔, 中层和顶层各有一三叉中心脊。

(4) 一种异冒藻不唯一对应一种体鳞分类特征。

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ULTRAMORPHOLOGICAL AND MOLECULAR CHARACTERS OF(DINOPHYCEAE) FROM THE EAST CHINA SEA

LENG Tian-Ze1, GU Hai-Feng2, WANG Rui-Fang1, 3, GUO Zhuo-Ran1, LU Dou-Ding1, DAI Xin-Feng1

(1. Key Laboratory of Marine Ecosystem Dynamics, Second Institute of Oceanography, Ministry of Natural Resources, Hangzhou 310012, China; 2.Key Laboratory of Marine Ecological Conservation and Restoration, Third Institute of Oceanography, Ministry of Natural Resources, Xiamen 361005, China; 3. Ocean College, Zhejiang University, Zhoushan 316000, China)

The genusincludes several toxic or harmful bloom-forming species, among themwas recently isolated from a harmful algae bloom off the coastal water of Fujian, SE China, and has been proven toxic. However, its ultrastructure, especially the body scale, the important taxonomic feature of the genus, has not been well studied. A strain (SIO-H3) isolated from the Xiamen Bay in Fujian was analyzed using morphological methods along with phylogenetic analysis based on internal transcribed spacer (ITS) gene sequences. Both the morphological and molecular results show that the strain (SIO-H3) was. Its cell had a biconical shape in length of 14.3～18.2 μm and width of 8.4～10.9 μm, with a plate formula of po, cp, 5′, 3a, 7″, 6c, 5s, 5″′, 2″″. Unlike previous descriptions, the cells had several pyrenoids and two different types of body scales. One has a rough reticulate pattern in basal layer with a central spine standing upward in the top layer center, and three central ridges radiating outward in equal length from it. There are also three sub-peripheral spines standing upward at the end of each central ridge.The other one features a three-layered structure with a dense reticulate pattern in the basal layer with three sub-central pores and trigeminal central ridge in the middle and top layers. This study corrected previous view in the taxonomic study ofthat one species corresponds one type of body scale structure.

; body scale; pyrenoid; harmful algae; taxonomy

* 国家自然科学基金, 42276131号, 41876139号; 中央级公益性科研院所基本科研业务费专项资金项目, JG2108号; 宁波市自然科学基金, 2022J195号。冷天泽, 硕士研究生, E-mail: lengtz@sio.org.cn

戴鑫烽, 副研究员, E-mail: xinfengdai@sio.org.cn

2023-04-12,

2023-05-12

Q948

10.11693/hyhz20230400084