基于炎症与糖脂代谢探讨连陈汤对肥胖小鼠体质量的影响∗

2023-11-18 13:45王一涵李佳睿杜丽坤
西部中医药 2023年11期
关键词:附睾脂肪组织辛伐他汀

王一涵,李佳睿,杜丽坤

1 哈尔滨医科大学附属第一医院,黑龙江 哈尔滨 150001; 2 黑龙江中医药大学,黑龙江 哈尔滨 150040;3 黑龙江中医药大学附属第一医院,黑龙江 哈尔滨 150040

肥胖是由遗传、环境等多因素引起的能量代谢紊乱,热量摄入大于消耗所致的营养代谢性疾病。是诱发心血管疾病、高脂血症、高血压、多囊卵巢综合征等疾病的重要危险因素[1]。肥胖的发病受遗传、饮食、肠道菌群、炎症因子等多方面影响[2]。病因虽未完全阐明,但肥胖作为一种慢性低度炎症状态被业界广泛认可[3]。肥胖导致脂肪细胞因子合成异常,可激活炎症信号网络,分解过量游离脂肪酸入血,且脂肪组织前体转化为类巨噬细胞,使炎性因子过度表达与释放,包括肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factorα,TNF-α)、白细胞介素6(interleukin-6,IL-6)、单核细胞趋化蛋白1(monocyte chemoattractant protein 1,MCP-1)等[4-5]。研究表明发生胰岛素抵抗(insulin resistant,IR)的重要原因之一是慢性低度炎症的影响[6],TNF-α、IL-6、MCP-1、C 反应蛋白(C-reaction protein,CRP)等都能导致细胞内炎性反应的发生,激活炎症细胞因子信号,阻断胰岛素信号传导,引发IR[7]。

本研究通过建立肥胖小鼠模型,应用连陈汤与辛伐他汀做对照实验,观察连陈汤对肥胖小鼠体质量、糖脂代谢、附睾脂肪组织的影响,现报道如下。

1 材料与方法

1.1 实验动物本研究选用40 只SPF 级8 周龄雄性C57BL/6J 小鼠,购于辽宁长生生物技术有限公司,实验动物许可证号:SCXK(辽)2015-0001。实验获得黑龙江中医药大学医学与实验动物伦理委员会审批准许(2019071502);饲养于黑龙江中医药大学药物安全评价中心。

1.2 药品来源药品采购于黑龙江中医药大学附属第一医院。连陈汤药物组成:半夏15 g,黄连6 g,陈皮15 g,茯苓9 g,甘草5 g,加8 倍量水浸泡1 h,文火煎煮2次后合并药液。药液经四层纱布过滤后于70 ℃水浴锅浓缩至含生药0.38 g/mL,高压灭菌后于4 ℃恒温箱保存备用;辛伐他汀片(海正辉瑞制药有限公司,国药准字20010677,规格:20 mg)碾碎后用蒸馏水配制成混悬液保存于4 ℃冰箱中,药物浓度为0.23 mg/mL。

1.3 方法

1.3.1 小鼠肥胖模型构建 实验开始前所有小鼠适应性喂养1 周,给予普通饲料且单笼饲养。光照周期:12 h 光照/12 h 黑暗;饲养温度:(25±1)℃;相对湿度:(60±5)%。实验期间小鼠自由进食饮水。1 周后将小鼠随机分为空白组10 只,予普通饲料饲养(黑龙江中医药大学实验动物中心提供);模型组、辛伐他汀组、连陈汤组各10 只予高脂饲料饲养(派克生物技术有限公司)。连续饲养4个月,每4周称量小鼠体质量1次。高脂喂养小鼠体质量大于空白组体质量的20%即为造模成功。

1.3.2 给药 给药期间饲料喂养方式不变。给药方式和计量:辛伐他汀组灌胃辛伐他汀混悬液[4.5 mg/(kg·d)];连陈汤组灌胃连陈汤浓缩液[7.47 g/(kg·d)];空白组与模型组灌胃等体积纯净水。每日1 次,连续4 周,给药期间每周测量小鼠体质量1次。

1.3.3 标本取材 小鼠禁食12 h 后腹腔注射4%水合氯醛水溶液(10 mL/kg)麻醉小鼠,眼球取血,离心后取血清置于-80 ℃环境中保存备用。取血后的小鼠立即置于冰盒上,打开腹腔→剥离完整附睾脂肪组织→冲洗→滤纸吸干→称重→记录数据→置于4%多聚甲醛固定液中固定。

1.3.4 代谢指标检测 使用全自动生化分析仪(日立高科技贸易上海有限公司)检测血清甘油三酯(triglyceride,TG)、总胆固醇(total cholesterol,TC)胰岛素水平;尾静脉采血测空腹血糖(fasting blood glucose,FPG);计算胰岛素抵抗指数(homeostasis model of insulin resistance index,HOMA-IR),HOMA-IR=FPG×空腹胰岛素(fasting insulin,FINS)/22.5);使用ELISA检测试剂盒(哈尔滨市盈夏实验仪器经销部提供)检测TNF-α、IL-6、IL-1β含量。

1.3.5 附睾脂肪组织HE染色 将4%多聚甲醛固定液中固定的附睾脂肪组织脱水→石蜡包埋→切片→脱蜡→复水→染色→脱水→透明→固封,待通风干燥后于光学显微镜下观察小鼠附睾脂肪组织形态变化。

1.4 统计学方法应用SPSS 21.0 分析数据,计量资料以xˉ±s表示,若符合正态分布,组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用tukey 法,不符合正态分布时釆用非参数检验,P<0.05 为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 小鼠体质量变化情况饲养16 周时,高脂饲料3组小鼠体质量均高于空白组(P<0.01)。灌胃4周,空白组小鼠体质量无明显变化;模型组小鼠体质量增加,与空白组相比差异有统计学意义(P<0.05);饲养18周时辛伐他汀组小鼠体质量下降,但不如连陈汤组小鼠体质量下降明显;两组比较差异有统计意义(P<0.05);饲养17 周时连陈汤组小鼠体质量与模型组比较差异有统计学意义(P<0.01)。见表1、图1。

图1 各组小鼠治疗前后体质量变化趋势

表1 各组小鼠体质量变化情况(xˉ±s) g

2.2 小鼠糖代谢水平变化情况与空白组相比,高脂饲料3组小鼠FINS水平、HOMA-IR增高(P<0.01)。与模型组比较,连陈汤组FINS 及HOMA-IR 水平降低(P<0.01);辛伐他汀组FINS及HOMA-IR下降不明显(P>0.05)。FPG水平模型组高于空白组(P<0.01);高脂饲料3组比较,差异无统计学意义(P>0.05)。见表2。

表2 各组小鼠FPG、FINS及HOMA-IR比较(xˉ±s)

2.3 小鼠脂代谢水平变化情况与空白组比较,模型组小鼠血脂水平TG、TC 升高(P<0.01)。与模型组相比,TC、TG 水平连陈汤组和辛伐他汀组均下降(P<0.01),辛伐他汀组与连陈汤组比较差异无统计学意义(P>0.05)。见表3。

表3 各组小鼠TG与TC比较(xˉ±s) mmol/L

2.4 小鼠附睾脂肪组织变化情况空白组小鼠脂肪细胞形态规整;模型组小鼠脂肪细胞体积增大,细胞数量减少,脂滴含量较高;与模型组比较,连陈汤组脂肪细胞体积缩小,脂肪细胞数量增多,脂滴含量下降,辛伐他汀组小鼠脂肪细胞体积与细胞大小略减小但不明显,脂肪细胞数量变化不明显。模型组小鼠的附睾脂肪组织质量高于空白组,连陈汤组小鼠附睾脂肪组织质量较模型组降低(P<0.01),脂肪积累减少,连陈汤组与辛伐他汀组比较差异有统计学意义(P<0.05)。见图2、表4。

图2 各组小鼠附睾脂肪组织形态(HE,×400)

表4 各组小鼠附睾脂肪组织质量(xˉ±s)g

2.5 小鼠炎症因子变化情况与空白组比较,模型组小鼠血清TNF-α、IL-6、IL-1β水平升高(P<0.01);辛伐他汀组血清TNF-α水平降低(P<0.05);IL-6、IL-1β水平与模型组相比差异无统计学意义(P>0.05),连陈汤组小鼠血清TNF-α、IL-6、IL-1β水平较模型组降低(P<0.01);连陈汤组TNF-α、IL-6、IL-1β水平低于辛伐他汀组(P<0.05)。见表5。

表5 各组小鼠炎症因子水平比较(xˉ±s) pg/mL

3 讨论

近年来肥胖的发生率逐渐增多且呈年轻化,成为危害健康的公共卫生问题,肥胖是摄入过多或消耗减少导致的脂肪大量累积,血脂代谢紊乱是引起代谢综合征的重要因素之一,尤其内脏脂肪的增加与IR 的发生关系密切[8-9]。白色脂肪会不断扩增,导致TNF-α、IL-6 等水平增高,引起全身性慢性低度炎症状态[10]。研究证实T2DM 的发生发展受肥胖影响,胰岛素抵抗是致病的中心环节[11]。IL-6 在肥胖患者中主要由脂肪细胞分泌,具有促炎活性并使炎症反应加重,降低胰岛素信号转导,引起IR[12]。TNF-α诱导IR 机制有减弱胰岛素引起的葡萄糖跨膜转运、升高血浆游离脂肪酸水平、干扰胰岛素信号传递、抑制产生瘦素和脂联素,使胰岛素信号通路受损等[13-14],TNF-α与IR程度正相关[15]。郭展宏等[16]研究认为肥胖状态下炎症因子、胰岛素水平会增加,减重后FINS 水平、TNF-α和IL-6水平减低。喻松仁等[17]利用温胆汤干预肥胖大鼠时证实控制体质量的同时TNF-α、IL-6、IL-17 水平会降低(P<0.01)。吴腾飞等[18]应用苓桂术连汤治疗肥胖伴IR,患者体质量降低的同时TNF-α、IL-2炎症因子降低,HOMA-IR下降。

中医理论下的肥胖最早记载于《黄帝内经》,《素问·奇病论篇》中有“喜食甘美而多肥”的记载,过食肥甘厚味是引起肥胖的因素。连陈汤以《太平惠民和剂局方》中二陈汤为基础方加减而来,以健脾化湿,清热涤痰为原则。方中君药为半夏、黄连。半夏味辛能行散、性燥入脾胃,可消痰逐饮化痰湿;黄连燥湿化痰、除内郁痰热,可制约本方温燥之性;同时半夏配黄连有疏理气机、辛开苦降之功;陈皮理气健脾、燥湿化痰与茯苓健脾利湿使气机得畅,有“治痰先治气”之功;佐以健脾和中的甘草调和诸药。本方配伍得当,共奏健脾化湿功能,起改善体脂、减重抗炎的作用。

本研究表明,高脂喂养的小鼠体质量增加(P<0.01),其血脂(TG、TC)、炎症因子(TNF-α、IL-6)、FINS 水平以及HOMA-IR 都有升高趋势;附睾脂肪组织的重量也高于空白组(P<0.01);HE 染色的附睾脂肪组织可观察到脂肪脂滴增加、形态不均、数量减少。而连陈汤组小鼠体质量下降(P<0.01),血清TG含量降低(P<0.01)、TC含量降低(P<0.05);TNF-α、IL-6、IL-1β水平及胰岛素抵抗指数降低(P<0.01)。说明连陈汤可缩小脂肪细胞体积,增加脂肪细胞数量,降低脂滴含量。可见连陈汤可以通过缩小脂肪累积、改善血脂紊乱、降低炎症水平而改善IR。

研究表明连陈汤可改善肥胖患者中医证候积分,改善或者临床症状,降低体质量、BMI、腰围并降低血清TG、TC、LDL-C 水平,改善患者脂质代谢紊乱[19]。连陈汤还可增加肥胖患者肠道菌群多样性,降低厚壁菌门数量,升高拟杆菌门数目,这可能是连陈汤治疗脾虚湿阻型肥胖的作用机制之一[20]。连陈汤可使TNF-α、Chemerin水平有下调趋势可能是治疗单纯性肥胖的作用机制之一[21]。连陈汤可提高肥胖患者Omentin-1 水平、降低IL-6水平,改善FBG、FINS、HOMA-IR 水平,证实其可能通过降低血脂水平、减低慢性炎症反应改善IR[22]。

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