廖中廷,樊成伟,张发蓉,魏 静,殷世玉,胡琼英
(1.四川省资阳市人民医院血液内科,四川 资阳 641300;2.成都中医药大学附属医院检验科,四川 成都 610072)
急性髓细胞性白血病 (acute myelocytic leukemia, AML)是人骨髓髓系干细胞前体的恶性肿瘤,在成人急性白血病中最为常见[1]。随着蛋白组学、代谢组学和表观遗传学的发展,AML的靶向研究日益受到关注;最新证据表明,AML细胞对线粒体功能的依赖性是AML细胞异质性的能量来源,这一发现为AML的研究提供了新视角[2,3]。原儿茶酸 (protocatechuic acid, PCA)是原花青素、花青素等复合多酚类化合物的主要代谢产物,具有抗炎、抗氧化、抗癌等药理活性作用[4,5]。研究显示PCA可通过降低线粒体膜电位的消散、激活caspase-9和caspase-3及降低磷脂酰丝氨酸暴露,抑制过氧化应激诱导的血小板凋亡[6]。随着PCA抗肿瘤作用的研究进展,其在血液系统疾病中的应用日益引起人们的重视,但相关研究仍较少。本实验旨在探明PCA对AML细胞系HL60和KG-1α的细胞活性及线粒体功能的影响,以期为AML的发生提供新的证据,为AML靶向线粒体治疗提供新的候选药物。
1.1 材料本研究于2020年6~12月在成都中医药大学附属医院中心实验室完成,所需细胞和试剂分别为:人髓系白血病细胞系HL60和KG-1α(飞鸥尔生物,成都),细胞培养基MEM(Life Technologies,美国),澳洲胎牛血清(Gibco,美国),原儿茶酸(Sigma公司,美国)。
1.2 方法①细胞培养及CCK-8检测细胞活力。复苏HL60和KG-1α细胞后先加入含10%的胎牛血清培养基RPMI 1640,在37 ℃、5% CO2培养箱内培养3天后换液。对细胞悬浮、沉淀并计数,之后于96孔板上接种2×104个细胞/孔,加入不同浓度的PCA分别处理24 h后分析。为了检测细胞活性,96孔板上接种2×103个细胞/孔,与10 μmol/L PCA共同孵育,在1~5天内每天加入10 μl CCK-8试剂,4 h后检测OD450的吸光度并绘制生长曲线。②流式细胞术检测细胞周期。不同浓度的PCA分别处理HL60和KG-1α细胞24 h后,用溴化乙锭(PI)染色并进行流式细胞分析检测HL60和KG-1α细胞周期。③免疫印迹(Western blot)法分析细胞凋亡相关蛋白。用10 μmol/L PCA分别处理HL60和KG-1α细胞24 h后收集蛋白,应用10%的十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶分离20 μg总蛋白(细胞凋亡相关蛋白C-PARP、 C-Caspase-3和Caspase-3),先用PVDF膜转移免疫印迹,再使用5%的牛血清白蛋白PBS封闭;将1∶1000稀释后的抗体,加至PVDF膜,然后再室温孵育1 h。将PVDF膜用预冷的T-PBS清洗,再将1∶5 000稀释后的辣根过氧化物酶偶联抗兔二抗与PVDF膜室温孵育30 min,T-PBS清洗3次后,曝光。④细胞活性氧(Reactive oxygen species, ROS)检测。10 μmol/L PCA分别处理HL60和KG-1α细胞24 h,加入10 μmol/L MitoSOX荧光染料,在室温避光条件下孵育10 min,弃去上清液,再加入预冷的5 ml PBS清洗三次后用荧光显微镜观察。
1.3 统计学方法应用SPSS 18.0统计软件对数据进行分析。计量数据以均数±标准差表示,组间差异采用student-t检验和单向方差分析。P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 PCA对AML细胞增殖活性的抑制情况细胞活力结果显示HL6和KG-1α细胞对PCA化疗敏感,PCA对HL60和KG-1α细胞作用的IC50分别是(21.73±0.2) μmol/L和(16.93±0.7) μmol/L;10 μmol/L PCA同时处理HL60和KG-1α 5天后,结果发现PCA可显著抑制细胞活力(P<0.05),见表1。
表1 PCA处理HL60和KG-1α细胞1~5天抑制细胞活力比较
2.2 PCA对AML细胞凋亡的促进情况流式细胞术检测细胞凋亡情况发现:与对照组相比,PCA处理组可显著促进AML细胞HL60和KG-1α凋亡,见图1;与之相似,在图2中,Western blot检测凋亡相关蛋白剪切形式的caspase-3(C-caspase-3)和PARP(C-PARP)在PCA处理组中明显增加。
图1 PCA促进HL60和KG-1α细胞凋亡的流式细胞图 a:AML细胞系HL60对照组;b:20 μmol/L PCA处理AML细胞系HL60组;c:AML细胞系KG-1α对照组;d:15 μmol/L PCA处理AML细胞系KG-1α组
图2 PCA对AML细胞HL60和KG-1α促凋亡作用的蛋白免疫印迹图
2.3 PCA对AML细胞线粒体ROS堆积的促进情况对HL60和KG-1α细胞质ROS进行MitoSOX染色,结果表明:与对照组相比,PCA处理组细胞内的线粒体ROC堆积明显增多,加入ROS清除剂N-半胱氨酸(NAC)后,该现象被逆转,见图3;同时,流式细胞术检测细胞凋亡情况,发现NAC加入后,PCA引起的细胞凋亡下降。见图4。
图3 PCA促进AML细胞HL6和KG-1a线粒体ROS堆积的荧光显微图 a:AML细胞系HL60对照组;b:20 μmol/L PCA处理AML细胞系HL60组;c:20 μmol/L PCA处理AML细胞系HL60后+10 μmol/L NAC组;d:AML细胞系KG-1α对照组;e:15 μmol/L PCA处理AML细胞系KG-1α组;f:15 μmol/L PCA处理AML细胞系KG-1α后+10 μmol/L NAC组
图4 PCA促进AML细胞HL6和KG-1a线粒体ROS堆积的流式细胞图 a:AML细胞系HL60对照组;b:20 μmol/L PCA处理AML细胞系HL60组;c:20 μmol/L PCA处理AML细胞系HL60后+10 μmol/L NAC组;d:AML细胞系KG-1α对照组;e:15 μmol/LPCA处理AML细胞系KG-1α组;f:15 μmol/L PCA处理AML细胞系KG-1α后+10 μmol/L NAC组
近年来AML的治疗取得了长足发展,但复发问题仍十分棘手。针对复发/难治性AML的治疗目前尚无标准,化疗是常见的治疗方案;含阿糖胞苷等新化疗方案虽可提高复发/难治性AML的缓解率,但OS获益仍小于1年;以FLAG方案为代表的化疗方案,治疗毒性较强,常伴有严重的血液学事件和感染[7,8]。目前学术界普遍认为HSCT是唯一具有治愈复发/难治性AML的潜在方法,但移植条件苛刻,移植后并发症难以控制[9]。新型靶向药物的出现为AML治疗提供了更多、更高效的选择,因此不断探索新的靶位点,成为AML治疗的研究热点[10]。
PCA是花青素的主要代谢产物之一,有较强的抗氧化活性[11]。Han等将PCA处理的内皮细胞与棕榈酸处理的细胞相比,发现PCA显著降低了内皮细胞氧化损伤的两个生物标志物3-硝基酪氨酸和8-羟基脱氧鸟苷,同时明显降低了细胞内ROS水平[12]。PCA也具有显著的肿瘤抑制作用,在一项结直肠癌的治疗研究中,研究者发现PCA通过氧化/抗氧化失衡,呈剂量依赖型显著降低结直肠癌的细胞活力;PCA在癌细胞中诱导了促氧化作用,通过调节氧化还原平衡和抑制HO-1系统导致p21激活介导结直肠癌细胞的凋亡[13]。已明确PCA的抗氧化功能和抗癌作用,但PCA在血液恶性疾病的作用研究报道较少,尤其是对线粒体的功能探索尚不明确,而后者对肿瘤的生存至关重要;目前靶向线粒体的抗肿瘤药物较多,但对于血液系统恶性疾病尤其是AML仍需探索筛选。
本研究通过探索PCA对AML细胞增殖、凋亡情况,揭示PCA对AML细胞活性的抑制作用。实验结果显示,与对照组相比PCA能显著抑制AML细胞HL6和KG-1a的增殖活性,同时促进HL6和KG-1a的凋亡,促进细胞凋亡相关蛋白的剪切。为了进一步阐释PCA抗肿瘤的机制,我们又检测了PCA作用AML细胞HL6和KG-1a后,细胞内线粒体的ROS变化情况,发现PCA的处理能引起细胞内ROS堆积,而这种现象可被ROS清除剂NAC逆转,且NAC的加入还能抑制PCA引起的HL6和KG-1a细胞凋亡。以上结果说明PCA引起的HL6和KG-1a细胞凋亡是通过增加细胞内线粒体ROS堆积造成。
综上,PCA抑制AML细胞活性是通过促进细胞内线粒体ROS生成所致,这与国内外已有的研究一致。通过明确PCA的抗AML作用,探讨其作用机制和靶点,可为AML的治疗提供新的思路。