史卫军,林彦星,黄超华,曹琛福,曾少灵,吴 江,刘建利,陈 兵,阮周曦,花群义
(深圳海关动植物检验检疫技术中心,广东深圳 518045)
非洲马瘟(African horse sickness,AHS)是由非洲马瘟病毒(African horse sickness virus,AHSV)感染马属动物引起的一种急性或亚急性非接触性虫媒传染病[1],拟蚊库蠓(Culicoides imicola)是其主要传播媒介[2],动物发病后以发热、水肿、脏器出血为主要特征。所有马属动物均可感染AHSV,马最易感,骡和驴次之,易感动物感染后病死率可达95%[3]。该病主要分布在非洲撒哈拉沙漠以南地区,地中海周边国家、中东、欧洲等地偶有发生,近年来在亚洲个别国家也有流行,我国尚未有AHS 流行的报道[4]。世界动物卫生组织(WOAH)将其列为法定报告动物疫病,我国将其列为一类动物疫病和要重点防范的外来动物疫病。
AHSV 属于呼肠病毒科(Reoviridae)环状病毒属(Orbivirus genus)成员,已知有9 种血清型,不同血清型病毒毒力不同,各型之间具有交互免疫关系,如1 型和2 型,3 型和7 型,5 型与8 型,6型与9 型[5-6]。AHSV 基因组由10 个大小不等的双链RNA 片段构成,编码7 种结构蛋白(VP1—VP7)和4 种非结构蛋白(NS1—NS3、NS3A)。其中,VP7 蛋白在AHSV 各血清型中高度保守,是病毒血清群的特异性抗原[7],因此编码VP7 蛋白的S7基因常被用于AHSV 检测[8]。
目前国内外学者已建立了多种AHSV 检测方法,如常规RT-PCR、实时荧光RT-PCR、RT-LAMP 等,但这些方法均耗时较长,且操作复杂。重组酶聚合酶扩增技术(RPA)是一种在恒温(37~42 ℃)条件下即可实现核酸扩增的新技术,反应程序简单,没有PCR 的高温变性、退火和延伸等步骤,而且反应时间不到PCR 的20%。实时荧光RPA 方法是将荧光探针技术与RPA 技术相结合,在20 min 内直接通过便携式等温扩增仪读取检测结果的新方法,在动物疫病现场快速诊断方面具有广阔的应用前景[9]。本研究选取AHSVS7基因保守序列为靶基因,通过设计特异性引物和探针,建立了AHSV 实时荧光RT-RPA 检测方法,以期为AHS 防控提供技术支撑。
根据GenBank中发布的AHSVS7基因序列(登录号:KT187143.2),合成该基因片段并克隆到pMD18-T 载体中,构建重组质粒,命名为AHSVVP7。蓝舌病病毒(BTV)灭活抗原、鹿流行性出血症病毒(EHDV)灭活抗原,由作者所在实验室保存;马流感病毒(EIV)灭活抗原、马传染性贫血病病毒(EIAV)灭活抗原、马动脉炎病毒(EAV)灭活抗原,由中国农业科学院哈尔滨兽医研究所提供;40 份马血和20 份驴血临床样品,采自云南、内蒙古、广西等地。
RNA 提取试剂盒MagMAXTM-96 Viral RNA Isolation Kit,购自美国Thermo 公司;实时荧光RT-RPA 扩增试剂盒Twist Amp exo RT kit,购自英国TwistDx 公司;一步法荧光定量RT-PCR 试剂盒AgPath-IDTMOne Step RT-PCR Kit,购自美国ABI 公司。全自动磁珠提取纯化系统,购自美国Thermo 公司;T16-ISO 等温扩增仪,购自澳大利亚Axxin 公司;7500 实时荧光PCR 仪,购自美国ABI 公司。
分析GenBank 中公布的AHSV 9 种血清型S7基因保守序列,根据RPA 引物和探针设计原则,设计多条特异性引物和探针,通过交叉试验筛选最佳组合。
按照RNA 抽提试剂盒说明书,分别提取灭活抗原和临床样品核酸,于-80 ℃冻存备用。
按照Twist Amp exo RT Kit 试剂盒说明书进行RPA 扩增。分别吸取水化缓冲液29.5 μL,上、下游引物(10 μmol/L)各2.1 μL,探针(10 μmol/L)0.6 μL,DEPC 水11.2 μL,模板2.0 μL,混合均匀后转移至含有冻干酶粉反应管中,震荡混匀后加入醋酸镁溶液(280 mmol/L)2.5 μL,混匀后将反应管置入等温扩增仪中,在恒温条件下反应4 min 后取出再次混匀,继续反应16 min,实时监测FAM荧光信号。反应温度分别设置为37、38、39、40、41、42 ℃,筛选最佳温度。
在最佳反应温度下,分别对AHSV-VP7、BTV、EHDV、EIV、EIAV、EAV等进行RT-RPA检测,并设置阴性和空白对照。
测定重组质粒AHSV-VP7 浓度,根据公式:拷贝数(copies/μL)=6×1023×重组质粒浓度×10-9/ 碱基数×660,得到AHSV-VP7 拷贝数为2.36×109copies/μL[10]。用DEPC 水 对AHSV-VP7 进行10 倍梯度稀释,得到浓度范围为2.36×104~2.36×100copies/μL 的系列稀释样品。同时使用RT-RPA 法和实时荧光RT-PCR 法[11]对上述系列稀释样品进行检测,测定本方法的灵敏度。
选取浓度为2.36×104、2.36×101、2.36×100copies/μL 的重组质粒AHSV-VP7 作为模板分别进行RT-RPA 试验,重复检测3 次,分析该方法的稳定性。
利用本研究建立的RT-RPA 法和实时荧光RTPCR 法,同时对40 份马血样品和20 份驴血样品进行平行检测,计算两种方法的符合率。
通过交叉试验筛选最佳引物和探针组合,即选择其中1 条上游引物和探针,对所有下游引物进行筛选,然后根据筛选出来的最优下游引物,筛选其他上游引物,通过比较荧光增量初始时间、荧光增量大小等确定最佳引物探针组合(表1)。采用以上引物探针组合,在相同反应体系和等量模板条件下,确定最佳反应温度为40 ℃。
表1 实时荧光RT-RPA 引物和探针
以AHSV-VP7、BTV、EHDV、EIV、EIAV、EAV 核酸为模板进行RT-RPA 特异性试验。试验结果(图1)显示,仅AHSV-VP7 出现扩增曲线,其他病毒核酸及阴性和空白对照均未出现扩增曲线,说明本方法特异性强,能准确检测AHSV 核酸,而与其他病原无交叉反应。
选取浓度为2.36×104~2.36×100copies/μL 的AHSV-VP7 核酸作为模板分别进行RT-RPA 试验和实时荧光RT-PCR 试验。试验结果(图2~3)显示,2 种方法的最低检出限均为2.36×101copies/μL,说明本研究建立的RT-RPA 法与WOAH 推荐的实时荧光RT-PCR 法灵敏度相当,且RT-RPA 反应条件简单且无需大型仪器设备,检测时间仅需20 min,适合现场快速检测。
将浓度为2.36×104、2.36×101、2.36×100copies/μL 的AHSV-VP7 分别用RT-RPA 法 重复检测3 次。结果(图4)显示,2.36×104和2.36×101copies/μL 两个浓度均观察到相应的荧光曲线,表明重复性良好;而2.36×100copies/μL 未出现荧光曲线,再次验证了本方法的最低检测限为2.36×101copies/μL。
对临床收集的40 份马血样品和20 份驴血样品分别进行RT-RPA 和实时荧光RT-PCR 检测。结果显示,60 份临床样本的检测结果均为阴性,符合率为100%。
AHS 是所有马疫病中致死率最高的疫病,曾在欧洲和非洲发生过大流行,给当地的养马业造成了严重经济损失,是全球养马业发展最大的潜在威胁[12]。我国虽为AHS 无疫国,但近两年周边临近国家陆续发生AHS 疫情,增大了AHSV 传入我国的风险。2020 年3 月27 日,泰国农业与合作部向WOAH 通报AHS 疫情[13],此次疫情造成泰国4 个省至少131 例马死亡。2020 年9 月2 日,马来西亚农业与农基产业部向OIE 紧急报告[14],该国登嘉楼州(Terengganu)发生AHS 疫情。根据农业农村部办公厅关于做好非洲马瘟防范工作的通知[15],泰国疫情是我国周边国家首次报告的AHS 疫情,最近疫点与我国边境直线距离不足800 km,且我国已监测到AHSV 传播媒介的存在,AHSV 引入风险较高。另外,随着我国对外交流的不断加深和赛马业的蓬勃发展,AHSV 通过跨境比赛马匹、进口种马和马产品等传入我国的风险也在增大。该病目前尚无有效治疗手段,一旦传入我国,不仅会危及到养马业的健康发展,也会带来巨大的经济损失和社会影响。因此,建立一种快捷有效的AHSV 检测方法是防控AHS 的必要措施之一。
与PCR 方法不同,RPA 是一种新型等温核酸扩增技术。该技术反应条件要求低,反应时间短,耗能少且气溶胶污染风险低,是目前动物疫病诊断中应用较为广泛的一种新技术。本研究以AHSVS7基因保守序列为靶基因,设计并筛选出一组特异性引物和探针。试验结果表明:本研究建立的实时荧光RT-RPA 方法特异性好,与其他常见马病病原无交叉反应;灵敏度高,与WOAH 推荐的实时荧光RT-PCR 法灵敏度相当,最低检出限为2.36×101copies/μL;20 min 即可实现AHSV 的快速检测且重复性好。本方法的建立为AHS 防控提供了技术支撑。