刘 平,程莹莹,蔡海燕,杨 森,武建军,丁银秀,3
(1.宁夏医科大学基础医学院人体解剖学系,银川 750004;2.宁夏回族自治区人民医院神经内科,银川 750001;3.宁夏回族自治区医学科学研究所,银川 750004)
颞叶癫痫是最常见的难治性癫痫[1]。癫痫发作时引起的海马神经发生与癫痫易感性、继发性海马功能障碍等密切相关,其具体机制不明。研究[2-3]证实,反复的癫痫发作或癫痫持续状态(status epilepticus,SE)下,严重影响动物的学习记忆等认知功能,且癫痫发作后引起海马萎缩和苔藓样出芽,进一步加重了动物认知功能减退。经典的Wnts/β-catenin信号通路是参与脑内神经发生、癫痫形成的关键途径[4]。因此,阐明癫痫发作时海马神经发生与Wnts/β-catenin信号网络调控机制的关系,对癫痫的靶向防治尤为重要。本实验以SD癫痫大鼠为研究对象,探讨SD大鼠癫痫发作后海马区胶质纤维状酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)、Wnt3a、p-β-catenin和β-catenin表达的变化情况。
选取体质量为150~180 g的雄性SPF级SD大鼠32只,由宁夏医科大学实验动物中心提供。动物饲养室内的温度保持在20℃左右,相对湿度恒定(45%~55%)。常规摄食、饮水,让大鼠适应环境3 d后,进行后续的实验。将大鼠随机分为正常对照组(Con组)、癫痫模型组(SE 1 d、SE 7 d和SE 14 d)共4组,每组SD大鼠8只。
氯化锂、匹罗卡品购自Sigma公司;兔抗GFAP、兔抗Wnt3a、兔抗p-β-catenin和兔抗β-catenin购自Abcam公司;总蛋白提取试剂盒、BCA蛋白定量试剂盒、SDS-PAGE凝胶配制试剂盒以及相应的HRP二抗购自凯基生物公司;高速冷冻离心机购自Thermo Fisher公司,Amersham Imager 600凝胶成像系统购自GE医疗公司。
1.3.1 癫痫大鼠模型的制备及效果评价 采用国际公认并广泛使用的腹腔注射氯化锂-匹罗卡品(lithium-pilocarpine)动物模型制备方法:癫痫模型组大鼠腹腔注射氯化锂(3 mmol·kg-1),18~20 h后腹腔注射匹罗卡品(30 mg·kg-1);Con组大鼠注射0.9%生理盐水(3 mmol·kg-1)。实验动物癫痫发作分级评价标准采用Racine分级标准(0级为无抽搐发作;Ⅰ级为面部阵挛;Ⅱ级为节律性点头发作;Ⅲ级为单侧前肢抽搐;Ⅳ级为双前肢抽搐;Ⅴ级为四肢抽搐或失去平衡、跳跃并跌倒等)。若动物出现Ⅳ级及以上症状且发作45~60 min,则证明造模成功,立即注射水合氯醛(10 mg·kg-1),终止发作。
造模后注意大鼠保暖、保持呼吸道通畅、提供足够的饮水及食物。造模后第1天,密切观察大鼠饮水、进食次数和进食量是否正常,将SE 1 d组大鼠处死,取脑备用;造模后第2天和第8天,SE 7 d组和SE 14 d组大鼠分别进行水迷宫实验。在此过程中,观察大鼠癫痫小发作或大发作的持续时间或频次,且在各组相应的时间节点处死大鼠,取新鲜脑组织-80℃冰箱保存。
1.3.2 水迷宫实验 水迷宫由一直径为180 cm的圆形塑胶桶、摄像头及透明站台组成,水池分为第一、二、三、四象限,将平台放置于第三象限中心位置。从第一象限开始作为大鼠入水点,依次放入水中,每天上午、下午分别进行一次实验。共训练5 d,每个象限60 s,记录4个象限中大鼠的逃避潜伏期,第6天记录大鼠定位巡航的路程,巡航实验结束后记录大鼠首次穿越平台的时间和60 s内穿越平台的次数。
1.3.3 Western blot实验 将大鼠麻醉后,断头取脑,大部分新鲜脑组织-80℃冰箱保存备用。取小部分海马组织提取总蛋白,进行蛋白电泳,转膜,封闭。入一抗,分别是:兔抗GFAP(1∶20 000)、兔抗Wnt3a(1∶1 000)、兔抗p-β-catenin(1∶500)和兔抗β-catenin(1∶10 000),4℃摇床过夜,次日入相应的HRP二抗1~2 h。凝胶成像仪采集图像,进行蛋白条带灰度分析。
数据采用SPSS 26.0软件进行统计分析,计量资料以均数±标准差表示,组间比较采用单因素方差分析(one-way ANOVA)。P≤0.05为差异有统计学意义。
癫痫模型组SD大鼠腹腔注射氯化锂-匹罗卡品后,早期发现大鼠有点头、面部、肢体抽搐、流涎等症状,进而出现后腿站立、前腿抬起并且出现跌倒、全身抽搐强直等癫痫持续状态的行为学改变。Con组大鼠未观察到以上的异常行为学改变。与Con组比较,癫痫模型组大鼠精神萎靡或躁狂不安、活动减少、进食饮水量减少、体质量增加缓慢或未增加。
2.2.1 定位巡航实验 与Con组比较,SE 7 d组、SE 14 d组大鼠第2~5天逃避潜伏时间增长,SE 14 d组大鼠第3~5天逃避潜伏时间短于SE 7 d组(P均<0.05),见图1A。与Con组比较,SE 7 d、SE 14 d组大鼠60 s内定位巡航的路程增长,SE 14 d组大鼠60 s内定位巡航的路程较SE 7 d组短(P均<0.05),见图1B。
2.2.2 空间探索实验 与Con组比较,SE 7 d组大鼠首次穿越平台所用时间延长,SE 14 d组大鼠首次穿越平台所用时间较SE 7 d组少(P均<0.05),见图1C。与Con组比较,SE 7 d组、SE 14 d组大鼠在60 s内穿越平台的次数减少,SE 14 d组大鼠在60 s内穿越平台的次数多于SE 7 d组(P均<0.05),见图1D。
图1 各组大鼠学习和记忆能力的变化情况
蛋白分析结果发现,SE 7 d组、SE 14 d组大鼠GFAP和Wnt3a蛋白灰度值均较Con组和SE 1 d组增加,SE 14 d组大鼠GFAP和Wnt3a蛋白灰度值高于SE 7 d组(P均<0.05),见图2。
图2 各组大鼠海马区GFAP和Wnt3a蛋白含量的变化
Western blot蛋白分析结果显示,与Con组和SE 1 d组比较,SE 7 d组、SE 14 d组大鼠p-βcatenin蛋白含量均减少,β-catenin蛋白含量增加(P均<0.05);SE 14 d组大鼠p-β-catenin蛋白含量少于SE 7 d组,β-catenin蛋白含量高于SE 7 d组(P均<0.05),见图3。
图3 各组大鼠海马区p-β-catenin和β-catenin蛋白含量的变化
癫痫是神经系统最常见的疾病之一。近年来新型抗癫痫药物的不断问世,对癫痫患者有一定的治疗效果,但仍有约30%的癫痫最终转化为难治性癫痫。颞叶癫痫是最常见的难治性癫痫,占难治性癫痫的50%~70%[1]。研究[5-6]表明,海马与大鼠的学习记忆等认知功能密切相关,海马硬化是颞叶癫痫最常见的病理改变,其基本特征为反应性星形胶质细胞异常增生和苔藓纤维出芽。癫痫发作后反应性星形胶质细胞异常激活,促进了海马神经发生的增强[7]。GFAP特异地表达于中枢神经系统星形胶质细胞的胞质内,可以作为星形胶质细胞的特异性标记物。本研究以腹腔注射氯化锂-匹罗卡品成功建立癫痫动物模型,通过蛋白电泳实验结果发现,SE 7 d组和SE 14 d组癫痫大鼠海马GFAP蛋白表达水平升高,在癫痫早期(1~14 d),其蛋白表达量随时间的延长呈上调趋势,提示当癫痫发作后反应性星形胶质细胞异常激活,与有关报道[7]一致。水迷宫实验结果显示,癫痫大鼠的学习记忆能力较Con组大鼠差。在定位巡航实验中,SE 7 d组、SE 14 d组大鼠逃避潜伏期和巡航路程均较长;空间探索实验中,在60 s内SE 7 d组、SE 14 d组大鼠首次通过平台的时间延长,且穿越平台的次数减少。以上结果提示癫痫发作后影响海马神经发生,促使大鼠的学习记忆能力下降,这可能与其神经元丢失、减少及异常放电等多个因素密切相关[8]。
经典的Wnts/β-catenin信号通路是神经发生所必需的保守的发育性信号通路[9],在创伤性脑损伤后,Wnt信号通路的关键分子被激活,与神经元存活和稳态相关的多种基因,如Bcl-1、Cyclin D1和c-myc表达上调,并且涉及这个信号通路的相关基因的变异和失活,最终导致海马神经发育不全和整个大脑畸形,从而诱发癫痫等神经系统疾病的发生。β-catenin在维持机体正常生理功能中起着重要的作用,癫痫发作时β-catenin分子表达含量增高,增多的β-catenin进入细胞核内,刺激细胞的增殖[10]。Wnts蛋白,尤其是Wnt3是神经发生的关键调控因子。实验[11]表明,Wnt3a由周围细胞分泌,并与靶细胞表面的Frizzled受体和共受体Lrp5/6结合,在Wnts分子通道关闭的情况下,细胞质中的Axin/APC/GSK-3β蛋白复合物使β-catenin磷酸化,胞内β-catenin维持在较低水平,其不能进入核内参与细胞的增殖和分化过程。有研究[12]发现,癫痫急性期引起神经细胞的生长异常增多,提示抑制急性期海马神经发生可能降低癫痫的发生、发展过程,同时反馈调节Wnt信号通路的关键分子可能有助于缓解癫痫的发作。本研究发现,SD大鼠癫痫发作后Wnt3a和β-catenin蛋白表达含量增高,且在癫痫发作早期随时间的延长有上调趋势。但p-β-catenin蛋白含量在癫痫发作早期无明显变化,SE 14 d组p-β-catenin蛋白含量低于Con组,提示在癫痫发作后,Wnt信号通路的关键分子Wnt3a被激活,β-catenin磷酸化过程受抑制,胞内游离的β-catenin含量增高,从而转入核内,参与细胞的增殖和分化进程。对于Wnt信号通路上关键分子的表达上调或下调是否对认知、记忆、精神等产生影响还需要进一步研究证实。
综上所述,癫痫发作后大鼠学习记忆能力下降,大鼠海马GFAP、Wnt3a、β-catenin和p-β-catenin蛋白的表达异常。因此推测Wnts/β-catenin信号通路可能参与调控癫痫的发生、发展,至于Wnts/β-catenin信号通路如何发挥作用仍需进一步深入研究。