超高效液相色谱-串联质谱法同时测定小麦中4种真菌毒素

胡 莎，袁 梦，葛文静，林翠苹，于业志

（1.青岛市粮油质量检测和军队粮油供应中心，山东青岛 266000；2.青岛市食品药品检验研究院，山东青岛 266000；3.青岛菲优特检测有限公司，山东青岛 266000）

真菌毒素污染是威胁粮食安全的重要因素，粮食在种植、加工、储存及流通等环节中可能被真菌毒素污染[1]，最新发布的《食品安全国家标准 食品中真菌毒素限量》（GB 2761—2017）规定了谷物及其制品中对黄曲霉毒素B1（Aflatoxin B1，AFT B1）、脱氧雪腐镰刀菌烯醇（Deoxynivalenol，DON）、赭曲霉毒素A（Orchatoxin A，OTA）及玉米赤霉烯酮（Zearalenone，ZEN）的限量指标[2-3]，这4种真菌毒素是目前为止认为可能对人们的健康构成较大风险的[3-7]。现在国内外对粮油产品中真菌毒素的检测标准方法一般常见的有胶体金快速检测法[8-9]、薄层色谱法[10]、酶联免疫法[11]、高效液相色谱法[12]及液相液质联用法[13]。

本文旨在建立多功能柱净化、超高效液相色谱-串联质谱法同时测定小麦中DON、OTA、AFT B1和ZEN共4种真菌毒素的含量。

1 材料与方法

1.1 仪器与试剂

Agilent超高效液相色谱串联质谱联用仪（UPLC-QQQ 1290-6460，安捷伦科技有限公司）；离心机（Sartorius sigma 3-18k）振 荡 器（Heidolph Multi Reax）；电 子 天 平（Sartorius）；MycoSpinTM 400 Multitoxin净 化 柱（Romer Labs公司）；微型聚四氟乙烯滤膜（0.22 μm）。

超纯水（娃哈哈）；乙腈（色谱纯）、乙酸（色谱纯）、乙酸铵（色谱纯）、甲醇（色谱纯），德国merck公司；标准溶液DON（100.6 mg/L）、ZEN（100.4 mg/L）、AFT B1（100.3 mg/L）、OTA（100.1 mg/L），Pribolab公司。

1.2 实验方法

1.2.1 样品处理

称取25 g（精确至0.001 g）样品于250 mL具塞三角瓶中，加入100 mL乙腈/水（50/50，V/V），放置于震荡器中混合90 min，静置1 min后过滤，吸取10 mL滤液于50 mL聚丙烯离心管中，并加入500 μL乙酸混匀，从混合液中移取750 μL至MycoSpinTM 400净化柱，盖紧净化柱振荡混合1 min，净化柱底端将净化柱放入离心管中，转速10 000 r/min离心30 s，取上清液过0.22 μm滤膜于进样瓶中，待上机检测。

1.2.2 溶液的配制

（1）混合标准工作液的配制。将4种真菌毒素标准溶液 依 次 稀 释 成DON（100 μg/mL）、ZEN（100 μg/mL）、AFT B1（4.0 μg/mL）、OTA（2 μg/mL）的单标储备液，分别吸取1 500 μL、200 μL、250 μL、1 000 μL的DON、ZEN、OTA、AFT B1单标储备液于10 mL容量瓶中，用水定容至刻度，配制成浓度分别为15.0 μg/mL、2.0 μg/mL、0.1 μg/mL、0.2 μg/mL的混合标准工作液。

（2）标准溶液配制。分别准确移取25 μL、50 μL、100 μL、250 μL、500 μL和1 000 μL混标溶液于10 mL容量瓶中，用标准曲线溶剂（乙腈-水-乙酸混合液35.0∶64.5∶0.5，体积比）定容至刻度，各标准具体浓度见表1。

表1 标准系列溶液浓度（单位：μg/L）

1.2.3 色谱分离条件

色谱柱C18柱（1.8 μm，100 mm×3.0 mm）；柱温：35 ℃；进样体积：4 μL；流动相A：1%乙酸溶液＋5 mmol/L乙酸铵水溶液；流动相B：甲醇，流动相梯度见表2。

表2 液相色谱分离梯度条件

1.2.4 质谱条件

离子源：电喷雾离子源；毛细管电压：4 kV（＋）3.5 kV（－）；干燥气温度：350 ℃；雾化气电压：40 psi；干燥气流量：10 L/min；碰撞气：氮气；扫描模式：多反应监测MRM；驻留时间：30 ms；

2 结果与分析

2.1 液相色谱条件的优化

2.1.1 流动相的优化

流动相对检出目标物质的分离度、响应值、峰型及离子化效率都有影响，根据现有的检测这4种毒素的检测标准及相关文献显示流动相一般采用甲酸水溶液/乙腈，乙腈/乙酸铵，乙腈/甲酸/甲酸铵，乙腈/水，乙酸铵/甲醇-乙腈，结合需检出的这4种真菌毒素的结构特性，一般在ESI正负离子模式下[M+H]+、[M-H]-、[M-CH3COO]-、[M+NH4]+离子峰形式出现，本实验选定流动相为1%乙酸溶液＋5 mmol/L乙酸铵水溶液/甲醇对4种真菌毒素能够有很好的分离效果。

2.1.2 色谱柱的优化

本实验比较了两种色谱柱Eclispse Plus C18（2.1mm×50 mm，1.8 μm）和ZORBAX Eclipse Plus C18（3.0 mm×100 mm，1.8 μm）对4种真菌毒素的分离效果，同样的色谱条件下后一种色谱柱分离效果更佳。

2.2 质谱条件的优化

2.2.1 母离子的选择和碎裂电压的优化

将真菌毒素单标溶液直接连接质谱进样1 μL，分别在正负离子模式下进行MS2 Scan全扫描，确定各毒素母离子质量数。然后进行MS2 SIM选择离子监测，优化碎裂电压。

2.2.2 子离子的选择和碰撞能量的优化

设置母离子质量数和MS2的扫描范围，进行Product Ion Scan 子离子扫描，将响应最高的确定为定量离子，次之确定为定性离子，并优化碰撞能量CE。优化完成后进行MRM多反应监测，主要参数见表3。

表3 质谱条件

2.3 线性范围与检出限

由表4可知，4种真菌毒素在标准曲线溶液浓度范围内有较好的线性关系，以3倍和10倍信噪比分别确定目标物的检出限和定量限。

表4 4种真菌毒素的线性范围、相关系数、检出限和定量限

2.4 回收率与精密度

在空白样品中添加低、中、高3个不同浓度的混合标准溶液，3水平重复测定6次，加标回收率、相对标准偏差结果见表5。3水平加标回收率在86.6%～110.1%，相对标准偏差在3.0%～18.7%，由此可见，方法具有良好的精密度。

表5 4种真菌毒素的加标回收率和精密度

3 结论

本文采用乙腈水提取小麦中4种常见真菌毒素，MycoSpinTM400 Multitoxin 净化柱净化，能有效的去除小麦基质中的杂质，减少基质效应，采用三重四极杆液质联用MRM模式进行检测，该方法高效快捷、操作简单、回收率高，精密度与准确度好，适合同时测定小麦中4种真菌毒素。