金 秋,石永利,林 波,王海啸,张 晓,季润元*
(1江苏护理职业学院医学基础部,江苏 淮安 223005;2南京医科大学附属淮安第一医院病理科,3胃肠外科,江苏 淮安 223300;4南京医科大学国家卫生健康委抗体技术重点实验室,江苏 南京 211166)
结肠癌是全球第三常见的恶性肿瘤,2018年新增病例109.6万并导致50万患者死亡[1]。手术切除和放化疗是早期结肠癌的有效治疗手段,但对晚期结肠癌患者效果不佳,由于发病隐匿,超过半数的患者确诊时已为中晚期[2]。因此,应加大对结肠癌癌变关键调控因子的识别,确定新的诊断标志物和治疗靶点,最终提高结肠癌的治疗效果。
核孔蛋白(nucleoporin,Nup)是核孔复合物(nuclear porecomplexes,NPC)的主要成分,它能够调节细胞质和细胞核之间的信号转导[3]。Nup在许多类型的癌症,如乳腺癌、结肠癌和前列腺癌中过表达,这表明它们可能参与了肿瘤的发生[4]。Nup107是Nup107亚复合物的关键组成部分,位于NPC的中心支架上,是NPC组装和mRNA输出的关键。目前关于Nup107在结肠癌中表达与预后的研究较少。
本研究检测Nup107在结肠癌组织中的表达,并证明其与结肠癌患者临床病理特征及预后的关系,为结肠癌的诊断、预后和靶向治疗提供理论依据。
所有参与研究的结肠癌患者于2012年12月—2016年5月在南京医科大学附属淮安第一医院接受活检或手术,共226例。患者年龄32~76岁,平均年龄53岁。手术前患者均未接受化疗或放疗。另选取38例正常结肠组织作为对照。纳入研究的患者临床病理资料包括性别、年龄、肿瘤位置、组织学类型、分化、肿瘤大小、淋巴结转移、远处转移、美国癌症协会(American Joint Committee on Cancer,AJCC)分期、Ki67表达。本研究获得了南京医科大学伦理委员会的批准和患者的知情同意。
1.2.1 Ualcan检索
Ualcan(http://ualcan.path.uab.edu/index.html)是一个有效的癌症数据在线分析和挖掘的网站,主要是基于TCGA数据库中的相关癌症数据进行分析。本研究分析比较了41例正常结肠组织和286例结肠癌组织的mRNA表达情况。
1.2.2 实时定量聚合酶链反应(quantitative realtime PCR,qRT-PCR)
使用TRIzol Plus RNA纯化试剂盒(Invitrogen公司,美国)从19对新鲜结肠癌和癌旁正常组织中提取总RNA。使用High-Capacity cDNA逆转录试剂盒(Thermo公司,美国)将RNA逆转录为cDNA。使用Power SYBR Green PCR预混液(Applied Biosystems公司,美国)在QuantStudio 5实时PCR系统上进行扩增。实验中使用的引物序列如下:Nup107上游5′-CACGGACTGCACGGAAACA-3,下游5′-GAGTTCGAGGGATAACCTGGT-3′;GAPDH上游5′-CTGGGCTACACTGAGCACC-3′,下游5′-AAGTGGTCGTT GAGGGCAATG-3′。以GAPDH为内参照基因分析Nup107 mRNA表达,以2-ΔΔCt计算Nup107相对表达量。以上实验重复2次。
1.2.3 组织芯片(tissue microarray,TMA)制作
所有组织标本均在4%多聚甲醛固定24 h,常规石蜡包埋。提前观察结肠组织蜡块,确定典型组织位置。利用TMAGrand Master(3DHISTECH,匈牙利)从供体蜡块中钻取核心组织柱,直径1.5 mm,然后包埋于受体块中。将受体块切成厚度为3 μm的切片,置于含聚赖氨酸涂层的玻片上。
1.2.4 免疫组织化学(immunohistochemistry,IHC)染色
采用SP法对结肠TMA样本进行IHC染色,具体步骤见Histostain SP免疫组化染色试剂盒说明书。一抗为兔抗人Nup107多克隆抗体(Abcam公司,英国),稀释比例1∶200。IHC结果由2名病理医师在双盲情况下进行评估。结肠组织中细胞的Nup107染色强度被评为0分(阴性)、1分(弱阳性)、2分(中阳性)、3分(强阳性)。组织最终染色得分=(3×强染色细胞百分比+2×中度染色细胞百分比+1×弱染色细胞百分比)×100,最终染色评分范围0~300。根据结肠癌患者的生存预后情况,使用X-tile软件将Nup107表达情况分为高表达和低或无表达,计算出截断值为115。
1.2.5 基因集富集分析(gene set enrichment analysis,GSEA)
检索TCGA数据库,获取结肠癌患者转录组测序数据。使用GSEA v2.2.2软件进行分析。根据Nup107 mRNA中位表达水平将样本分为高表达组和低表达组进行比较,根据分子标签数据库中的KEGG基因集定义功能基因集。P<0.05且FDR>0.25为有统计学意义。
所有数据均在SPSS 18.0软件上进行分析。计量资料以均值±标准差()表示,采用成组t检验比较两独立研究组间均数。对例数和率的比较采用Pearsonχ2检验,计算Nup107与临床病理特征的相关性。采用Kaplan-Meier法分析累计生存率。建立Cox比例风险回归模型,先进行单因素分析,对P<0.01的组别再进行多因素分析,确定预后因素。P<0.05为差异有统计学意义。
通过检索Ualcan数据库,比较了41例正常结肠组织和286例结肠癌组织中Nup107 mRNA的表达水平,发现Nup107 mRNA在结肠癌中的表达显著高于正常肠黏膜组织(P<0.05,图1A)。通过qRTPCR检测17对结肠癌组织和正常结肠组织的Nup107表达,验证了Nup107在结肠癌组织中高表达(P<0.05,图1B)。
IHC结果显示,Nup107蛋白定位于细胞核膜,在结肠癌细胞中高表达(图2)。在结肠癌组织中,Nup107高表达率为65.93%(149/226),高于正常结肠黏膜组织(42.11%,16/38),差异有统计学意义(P<0.05,表1)。
图1 Nup107 mRNA在结肠组织中的表达情况Figure 1 Expression of Nup107 mRNA in colon tissue
图2 结肠组织中Nup107表达的免疫组化染色Figure 2 IHC staining for Nup107 expression in colon samples
表1 Nup107蛋白在结肠组织中的表达Table 1 Expression of Nup107 protein in colon tissues
通过收集226例结肠癌患者的临床资料,分析Nup107表达水平和患者临床病理特征之间的关系(表2)。结果表明,Nup107表达与肿瘤大小(χ2=13.188,P=0.004)、淋巴结转移(χ2=12.080,P=0.002)、远处转移(χ2=7.167,P=0.007)、AJCC分期(χ2=14.135,P=0.003)和Ki67表达(χ2=10.683,P=0.001)显著相关,而与性别、年龄、组织学类型或分化程度无相关性。
使用单因素和多因素Cox回归分析确定结肠癌的预后因素。单因素分析中Nup107表达(HR:1.891,95%CI:1.627~2.250,P<0.001)、远处转移(HR:2.124,95%CI:1.942~2.307,P<0.001)、AJCC分期(HR:1.227,95%CI:1.112~1.436,P<0.001)和Ki67表达(HR:0.673,95%CI:0.582~0.706,P<0.001)与总生存期相关(表3)。多因素分析中,Nup107表达(HR:1.492,95%CI:1.179~1.845,P<0.001)、远处转移(HR:2.283,95%CI:1.679~2.872,P<0.001)和AJCC分期(HR:1.201,95%CI:1.145~1.384,P<0.001)是结肠癌患者预后的独立风险因素(表3)。Kaplan-Meier生存分析证实,Nup107高表达结肠癌患者的生存时间明显短于Nup107低表达患者(图3)。
表2 Nup107表达与结肠癌患者临床病理特征的关系Table 2 Relationships between Nup107 expression level and clinicopathological characteristics of patients with colon cancer
自TCGA数据库下载结肠癌患者的RNA-seq数据,并分析Nup107高表达结肠癌患者组织中基因富集的通路。结果显示,Nup107高表达的结肠癌组织中基因富集于基础转录因子、错配修复、同源重组、核糖体、剪接体、RNA降解等途径(表4)。
NPC由约30种不同的Nup组成,是细胞核和细胞质之间大分子交换的唯一通道[5]。NPC由Nup93复合物、Nup107/Nup160复合物和Nup62复合物3部分组成[6]。越来越多的证据表明,NPC与肿瘤发生密切相关。Tpr是第1个被确认参与肿瘤发生的Nup,其在人类结直肠肿瘤中表达降低[7]。Nup98在小鼠和人肝癌中表达下降,并通过调控p53靶基因发挥潜在的抑癌作用[8]。Nup88在结直肠癌、子宫内膜癌、乳腺癌等肿瘤中过表达[9]。在鳞状细胞癌中,Nup62高表达且升高,通过调控p63核转运调控细胞活动[10]。POM121在结肠癌中高表达,并能促进前列腺癌细胞的侵袭性和耐药性[11-12]。由此可见,不同Nup在肿瘤中发挥着促癌或抑癌的作用。
Nup107是Nup160/Nup107亚复合结构的重要组成部分,是NPC组装的关键,并参与信号调节分子的易位[13]。在DNA损伤诱导的基因毒性应激中,Nup107能够介导凋亡蛋白酶激活因子1的核转位[14]。Nup107的缺失导致真核细胞凋亡,且干扰Nup107表达可使衰老细胞的生长因子信号通路减弱[13,15]。Nup107与鼻咽癌细胞间期和有丝分裂期的NPC生成有关,并调控着丝点处的微管聚合[16-17]。Nup107单核苷酸变异极可能与卵巢癌患者化疗敏感性有关[18]。这些发现提示Nup107在肿瘤组织中是一个重要的调节因子。
本研究首先通过Ualcan数据库和qRT-PCR证明了Nup107在结肠癌组织中的mRNA水平高于正常肠黏膜组织,随后对38例正常结肠组织和226例结肠癌组织进行IHC染色,发现结肠癌组织的Nup107高表达率(65.93%)高于正常结肠组织(42.11%),与其在宫颈癌组织中的表达趋势一致[19]。分析Nup107表达水平和结肠癌患者临床病例特征的相关性,发现Nup107高表达与较大肿瘤体积、发生淋巴结转移、远处转移、较差AJCC分期和Ki67表达阳性有关,表明Nup107可能促进了结肠癌细胞的增殖和转移。单因素和多因素Cox回归分析证明Nup107表达是结肠癌患者预后的风险因素,Kaplan-Meier生存曲线也显示Nup107高表达结肠癌患者总体生存率低于Nup107低表达患者。以上结果表明,Nup107可能成为结肠癌新的预后标志物。
目前Nup107在结肠癌发生发展中的作用机制尚不清楚,本研究通过对TCGA数据库结肠癌患者RNA-seq信息进行GSEA,发现相较于Nup107低表达结肠癌组织,Nup107高表达的结肠癌组织中基因富集于基础转录因子、错配修复、同源重组、剪接体、RNA降解、核苷酸切除修复、细胞周期、DNA复制等途径。转录因子参与了大量的人类疾病,约占目前为止发现的所有致癌基因的20%[20]。Nup107对肿瘤相关转录因子的调节可能是肿瘤发生的一大诱因。Nup107对错配修复、同源重组、核苷酸切除修复、DNA复制的影响表明Nup107可能通过调控DNA损伤修复促进结肠癌的发生[21]。此外,GSEA结果表明Nup107可能通过干预细胞周期调控结肠肿瘤的生长增殖。
表3 单因素和多因素Cox回归分析结肠癌患者总生存期的预后因素Table 3 Univariate and multivariable Cox regression analysis of prognostic factors for overall survival in patients with colon cancer
图3 结肠癌患者的Kaplan-Meier生存曲线Figure 3 Survival curves of patients with colon cancer using the Kaplan-Meier plots
表4 Nup107高表达的结肠癌患者的基因通路富集分析Table 4 GSEA of colon cancer patients with high Nup107 expression
综上所述,Nup107在结肠癌组织中高表达,且Nup107高表达与结肠癌患者预后不良相关。Nup107有可能成为结肠癌患者新的预后标志物和治疗靶点,但其在结肠癌中的作用和机制仍需进一步研究。