张可欣,杨思熙,王丽娜,刘金霞,邢恩鸿
(1.承德医学院 病原生物学实验中心,河北 承德067000;2.承德医学院附属医院 妇科,河北 承德067000)
乳头瘤病毒(HPV)是一种乳多空病毒科的乳头瘤空泡病毒,目前已发现140余种亚型[1]。不同亚型的 HPV感染所导致的后果也不同,低危型主要可导致寻常疣和良性病变,而高危型主要可导致宫颈上皮内瘤病变或者是宫颈癌[2],最新研究表示, HPV感染也与动脉粥样硬化和口咽癌的形成有关[3-4]。因此,早期识别HPV感染,对预防可能发生的疾病有着重要的指导作用。
目前,临床上对于 HPV的诊断手段主要以斑点杂交或原位杂交为主[5-6],这种方法需要配套的昂贵设备才能完成,不适用于基层医院或社区现场进行 HPV的筛查和分型。环介导等温扩增(LAMP)技术是在2000年由日本学者 Notomi开发的一项适用于基因诊断的技术[7],具有特异性强、结果可用肉眼判定、无需特殊装置的优点。本实验将基于该技术对HPV16、18、52、58亚型临床标本进行检测并分型,旨在探讨LAMP在临床的使用前景。
Bst DNA聚合酶和10X reaction buffer购自美国NEB公司,钙黄绿素购自Sigma公司,100 bp DNA Marker购自TaKaRa公司,PCR Mix购自TIANGEN公司。
收集承德医学院附属医院2018年8月-2018年10月部分就诊患者宫颈脱落细胞悬液共155例,其中4例经该院检验科使用潮州凯普公司HPV分型试剂盒检测后HPV16、18、52、58感染,其余151例未知亚型。
DNA模板制备将标本混合均匀后,15 000 r/min离心5 min,弃上清,留沉淀,加入50 μl核酸裂解液,100℃煮沸5 min,-20℃保存备用。
根据GenBank公布的HPV16亚型(GenBank登录号: EU869318.1)、18亚型(GenBank登录号: KY457840.1)、52亚型(GenBank登录号: EU924144.1)和58亚型(GenBank登录号: KU298920.1) E6、 E7区域为参考序列,应用 Clustal Omega软件进行序列对比,选取其保守区域,用 LAMP专用引物设计软件(Primer Explorer V5)设计每种亚型的4条引物,引物序列见表1,其中 F3和 B3为外部引物,FIP和 BIP是内部引物,所有引物均委托上海生物技术有限公司进行合成。
表1 HPV病毒的LAMP引物序列表
分别应用LAMP和PCR两种检测方法对155例临床标本逐个检验。 LAMP体系根据前期体系优化结果,分别采用以下体系配置反应液(表2),65℃水浴1 h后,置冰上停止反应,观察可视化结果,黄色提示阴性,绿色提示阳性。 PCR扩增实验以LAMP外引物(F3/B3)为上、下游引物。 采用25 μl体系:12.5 μl PCR Mix,1 μl F3/B3,1 μl DNA模板,其余用ddH2O补足。 扩增条件: 94℃ 3 min;94℃ 30 s,55℃ 30 s,72℃ 1 min,30 个循环;72℃ 5 min。 结果判断:取5 μl产物,采用2% 浓度的琼脂糖凝胶开展电泳实验观察结果,在凝胶成像仪下观察电泳条带。
表2 LAMP 反应体系
通过互换模板实验验证 LAMP的特异性,分别以 HPV16、18、52、58亚型 DNA及双蒸水为模板,应用4套特异性引物进行 LAMP扩增,根据琼脂糖电泳结果和染色结果判断引物特异性,每种亚型的特异性检测重复4次以上。
对经荧光定量 PCR检测后所含菌量约为2×106IU/μ L的 HPV DNA进行梯度稀释,对最终拷贝数分别为104、103、100、10 IU/μ L的模板,分别进行 LAMP和 PCR扩增,并通过 LAMP可视化结果及2%琼脂糖凝胶电泳进行灵敏度分析,对 LAMP的灵敏度检测重复4次以上。
应用SPSS21.0软件比较LAMP和PCR对155例标本检测结果的一致性。Kappa值为0.4-0.7时一致性一般,>0.7时一致性好。
分别对HPV四种亚型进行模板互换扩增实验后,琼脂糖电泳结果如图1A、C所示,其中16、18、52、58所囊括的泳道分别代表使用该亚型引物进行扩增后的产物电泳图,泳道16、18、52、58分别对应 HPV四种亚型模板。由图可知,每种亚型的特异性引物仅可扩增该亚型模板,其余模板及阴性对照均未被扩增,表示本文中建立的 LAMP体系特异性较好,不受其他模板的扰乱。
钙黄绿素染色效果如图1 B、D所示,各管按排列顺序同上,经比较可得两种检测产物方法结果一致,可通过简单的肉眼观察代替电泳检测。4次重复实验结果均与以上结果相当。
图1 LAMP检测HPV的特异性
分别应用PCR和LAMP对一系列梯度稀释后的HPV DNA进行扩增,扩增结果如图2所示。图2A表示HPV16亚型的LAMP检测限为100IU/ μl,HPV18的LAMP检测限为103IU/μL;图2D表示HPV52亚型的LAMP检测限为100IU/μL,HPV58亚型的LAMP检测限为103IU/μL; 图2C、F表示HPV16、18、52、58亚型的PCR检测限均为103IU/μL。由此可知LAMP对HPV16、52亚型的检测限均比PCR高一个数量级。
图2B、E表示钙黄绿素的可视化结果,绿色表示阳性、黄色表示阴性,排列顺序同上,与电泳结果对比后可知其染色效果与电泳结果相当。4次重复实验结果如表3所示,均与以上结果相当。
图2 LAMP和PCR的灵敏度检测
表3 LAMP的重复性实验
LAMP扩增105例经 PCR检测为阳性的标本和50例阴性标本后,将两种分型结果进行一致性比较,结果如表4所示。在105例经PCR确认为阳性的标本中,LAMP检测出99例,灵敏度为94.29%。在50例经PCR确认为阴性的标本中,LAMP检测出46例,特异性为92.0%。应用SPSS对其进行一致性检验和卡方检验后得出, LAMP与 PCR检测有极好的一致性(Kappa值=0.854)。
表4 LAMP和PCR的一致性比较
宫颈癌作为世界女性最多见的恶性肿瘤之一,一直受到较大重视。近年来,经研究证实,高危型 HPV的反复持续感染与其产生息息相关[8],且不同亚型 HPV所导致的结果也不尽相同[9]。因此,早期识别HPV感染并对其进行分型检查是防治宫颈癌的必要基础[10]。目前国内医院针对HPV的检测及分型普遍为斑点杂交或原位杂交[11-13],但需要大型仪器和昂贵的设备,不适合基层或现场检测。因此临床上正亟待一种更为方便、简单的诊断方法用来补充甚至替代原有的HPV诊断方法。
本文中所使用的 LAMP技术是在2000年由日本学者 Notomi公布的一项可在恒温状态下进行扩增的基因诊断技术,是一种快速、便携、低成本的检测方法,现已广泛用于疾病检测方面[14-16],本研究在原有的 LAMP技术基础上进行了一些改良,主要改良方面总结如下: 1)模板提取的改良。由于Bst酶的抗干扰能力比较好,因此可以将收集的临床标本直接煮沸进行核酸的粗提,省去繁杂的核酸纯化过程,使核酸提取步骤大大简化。2)结果判定的改良。LAMP的结果判定常用浊度法,该方法单用肉眼难以判定结果,需要用浊度仪检测才能确定扩增结果,判断起来比较不便。本研究在扩增反应开始前向体系中加入钙黄绿素,利用其颜色改变进行结果判定,使其即不抑制扩增,又可使结果可视化,使结果判定更加简单。
本文中建立的 LAMP体系为 HPV的分型检测提供了初步探索经验,如果能在此基础上对该技术进行进一步改良,如制作基于 LAMP技术的便携式核酸扩增检测仪或开发一步法封闭式检测管,必将更有利于应用 LAMP技术在基层或现场进行检测。