马齿苋多糖对幼年糖尿病大鼠糖脂代谢、肾功能的影响及其作用机制

2021-01-28 11:32王成祥刘玉霞常绍鸿邢二庆谢遂亮
中国医科大学学报 2021年1期
关键词:马齿苋多糖肾功能

王成祥,刘玉霞,常绍鸿,邢二庆,谢遂亮

(1.新乡市中心医院儿科,河南 新乡 453000;2.新乡医学院第四临床学院儿科,河南 新乡 453000)

近年来,儿童糖尿病患病人数逐年上升[1]。儿童患者多为1型糖尿病,由于儿童生长发育过程中食物消耗及运动量变化大,1型糖尿病患儿血糖较难控制,且由于发病早、病程长,后期多出现并发症,严重危害患者的生命健康[1]。糖尿病肾病是糖尿病患者死亡主要原因之一,也是终末期肾病的主要病因,如何保护糖尿病患者肾脏功能亦是重要研究课题。已有研究发现,高糖环境能够刺激转化生长因子β1 (trasnforming growth factor β1,TGF-β1)大量分泌,TGF-β1与Smad-3蛋白结合刺激炎症细胞聚集,诱发结缔组织生长因子 (connective tissue growth factor,CTGF)增加,促进糖尿病肾病进展[2];而抑制TGF-β1/Smad3信号通路能够保护肾功能[3]。

马齿苋是我国常见草本植物,具有清热解毒、止消渴、去肿消炎等作用,主治腹泻、疖痈、皮炎、丹毒、痢疾等疾病[4]。近年来研究发现,马齿苋具有降血糖、降血脂等效果。研究显示,服用马齿苋能够改善糖尿病患者的血糖水平[5];马齿苋多糖亦能够改善糖尿病大鼠的血糖水平[6]。但马齿苋对幼年糖尿病大鼠影响未见报道。本研究探讨马齿苋多糖对幼年糖尿病大鼠的糖脂代谢、肾功能的影响及其可能的作用机制,旨在为临床儿童糖尿病防治提供新的思路和研究基础。

1 材料与方法

1.1 实验动物及药品

4周龄雄性SD大鼠63只,SPF级,体质量90~108 g,购自北京维通利华公司。链脲佐菌素 (streptozotocin,STZ)购自美国Sigma公司,HE和PAS染色试剂盒购自北京索莱宝科技有限公司。TGF-β1、Smad3和CTGF多克隆兔抗购自英国Abcam公司;β-actin多克隆鼠抗、羊抗兔、羊抗鼠二抗购自中杉金桥有限公司;蛋白质定量试剂盒 (Bradford法,P1510)购自北京普利莱基因技术有限公司;ECL化学发光液购自美国Millipore公司。

马齿苋多糖提取见文献[7],马齿苋全株洗净烘干后粉碎,分别使用石油醚脱脂和95%乙醇回流提取各2次,滤渣干燥后,加入20倍水70 ℃ 250 W超声30 min提取2次,提取液抽滤后置于75%乙醇24 h后过滤,洗涤干燥后得到马齿苋多糖,提取率约为6.5%。

1.2 动物分组及模型建立

63只SD雄性大鼠,喂养7 d适应环境后,测量空腹血糖均为正常值。随机分为对照组 (Con组,n=20,正常饮食),另外43只大鼠高脂饮食4周后,后腹腔一次性注射STZ (60 mg/kg),72 h后测量大鼠尾静脉血糖,血糖>16.7 mmol/L则表示2型糖尿病大鼠造模成功。3只血糖不达标大鼠淘汰。40只造模成功大鼠随机分为糖尿病模型组 (Mod组)和马齿苋多糖组 (PP组),每组20只。PP组采用马齿苋多糖[200 mg/ (kg· d)]灌胃,Mod组和Con组给予等体积生理盐水灌胃,连续干预6周。

1.3 糖脂代谢、肾功能指标测定

3组大鼠分别在干预6周后剪尾取血,离心留取血清,采用全自动生化仪测甘油三酯 (triglyceride,TG)、总胆固醇 (total cholesterol,TC)、低密度脂蛋白胆固醇 (low density lipoprotein cholesterol,LDLC)、尿素氮、肌酐、24 h尿蛋白。计算肾指数 (kidney weight index,KWI),KWI (mg/g)=肾质量/体质量。血糖仪测定大鼠空腹血糖 (fasting blood glucose,FBG)。

1.4 肾组织HE染色和PAS染色

干预6周后处死3组大鼠,取肾,低温冰冻切片,晾干后先用二甲苯脱脂、苏木素液染色、盐酸乙醇分色、伊红染液染色,再放入梯度浓度乙醇溶液中脱水 (100%、95%、85%、70%、50%乙醇各放置3 min),然后在蒸馏水中浸泡2 min透明,中性树胶封片,显微镜下观察HE染色结果。冰冻切片入蒸馏水浸洗,乙醇固定10 min,置入过碘酸溶液5 min,蒸馏水冲洗,干燥后放入雪夫染液30 min,蒸馏水冲洗后苏木精复染,清洗、透明、封片观察。

1.5 肾组织免疫组化

干预6周后取肾组织,4%甲醛固定,梯度乙醇脱水,二甲苯脱脂,包埋切片,3%过氧水室温20 min孵育,蒸馏水冲洗3次,TGF-β1、Smad3和CTGF一抗室温孵育60 min,PBS漂洗3次后二抗室温孵育30 min,PBS漂洗3次,DAB染色 (15 ℃,10 min),PBS漂洗3次,最后再经苏木素复染,树胶封片后观察。随机选取每只大鼠组织切片3张,每张随机抽取5个视野,用平均光密度值作为统计数值,采用Image J软件统计分析。

1.6 Western blotting检测

大鼠干预6周后灌注固定取肾组织,放置于冰上研磨肾组织,加入蛋白裂解液,4 ℃离心30 min,根据试剂盒说明进行操作,采用Bradford法定量计算。取相同量的样品进行12%凝胶电泳 (SDS-PAGE),转移到PVDF膜上,然后用5%脱脂奶粉过夜,封闭阻断抗体,TGF-β1、Smad3和CTGF多克隆兔抗和β-actin多克隆鼠抗采用0.5%BSA溶液稀释,室温下孵育2 h后TBST洗膜10 min,重复3次;羊抗兔、羊抗鼠二抗采用0.5%BSA溶液稀释,室温下孵育2 h后TBST洗膜 15 min,重复3次,加入ECL试剂,凝胶成像仪观测。

1.7 统计学分析

2 结果

2.1 3组大鼠血脂水平比较

结果显示,与Con组比较,Mod组TG、TC和LDLC水平显著升高,差异有统计学意义 (P< 0.01);与Mod组比较,PP组TG、TC和LDLC水平显著降低,差异有统计学意义 (P< 0.01)。见表1。

表1 3组大鼠血脂水平比较 (mmol/L)Tab.1 Comparison of blood lipid levels among three groups (mmol/L)

2.2 3组大鼠血糖和肾功能比较

结果显示,与Con组比较,Mod组FBG、KWI、尿素氮、肌酐和尿蛋白显著升高,差异有统计学意义 (P< 0.01);与Mod组比较,PP组FBG、KWI、尿素氮、肌酐、尿蛋白显著降低,差异有统计学意义 (P< 0.01)。见表2。

2.3 3组大鼠HE染色及PAS染色结果

HE染色结果显示,Con组肾组织形态正常;Mod组系膜细胞增生,基底膜增厚,肾小管肿胀,管腔狭窄,间质可见大量渗出红细胞;PP组HE染色表现与Mod组相同,但肾组织受损程度明显减轻。见图1。PAS染色主要为糖类着色,Con组PAS染色较淡,未见明显糖原沉积,而Mod组大量糖原在肾单位沉积,PP组PAS染色表现与Mod组相同,但肾组织受损程度明显减轻。见图2。

2.4 3组大鼠免疫组化结果

TGF-β1、Smad3和CTGF是TGF-β1/Smad通路的关键蛋白,主要在胞质表达,免疫组化显示为棕黄色。免疫组化结果显示,与Con组比较,Mod组肾组织TGF-β1、Smad3和CTGF阳性表达明显增高,差异具有统计学意义 (P< 0.05)。与Mod组比较,PP组肾组织TGF-β1、Smad3和CTGF阳性表达明显下降,差异有统计学意义 (P< 0.05)。见图3、表3。

表2 3组大鼠血糖水平及肾功能比较Tab.2 Comparison of blood glucose level and renal function among three groups

图1 3组大鼠肾组织HE染色结果×400Fig.1 HE staining results of renal tissue among three groups×400

图2 3组大鼠肾组织PAS染色结果×400Fig.2 PAS staining results of renal tissue among three groups×400

图3 各组大鼠肾组织TGF-β1、Smad3和CTGF阳性表达比较 ×400Fig.3 The positive expressions of TGF-β1,Smad3 and CTGF in renal tissues of rats in each group ×400

表3 3组大鼠TGF-β1、Smad3和CTGF阳性表达及蛋白表达比较Tab.3 Comparison of positive expression and protein expression of TGF-1,Smad3 and CTGF in three groups

2.5 3组大鼠肾脏组织TGF-β1、Smad3和CTGF蛋白表达比较

Western blotting结果显示,与Con组比较,Mod组、PP组TGF-β1、Smad3和CTGF表达明显增加,差异有统计学意义 (P< 0.05)。与Mod组比较,PP组TGF-β1、Smad3和CTGF的表达明显降低,差异有统计学意义 (P< 0.05)。见表3、图4。

图4 3组大鼠肾组织TGF-β1、Smad3和CTGF蛋白表达Fig.4 The protein expression of TGF-β1,Smad3 and CTGF in renal tissues of rats in three groups

3 讨论

马齿苋多糖是马齿苋的主要有效成分,研究发现,马齿苋能够改善糖尿病血糖水平[8-9];能够通过NF-κB信号通路改善糖尿病肝功能损害[9]。马齿苋种子能够降低糖尿病患者血糖水平和血脂水平[10],改善动脉粥样硬化[5];亦能够降低血压[11]。马齿苋提取物能够改善肥胖[12]和高糖诱导的认知功能受损[13]。马齿苋提取物能够降低糖尿病患者血压和糖化血红蛋白水平[14]。本研究结果显示,马齿苋多糖能够降低幼年糖尿病大鼠血糖和血脂水平,与以往研究结果一致。幼年糖尿病大鼠PAS染色可见大量糖原沉积,胞外基质增多,KWI增高,提示肾脏肥大,而马齿笕多糖能够改善幼年糖尿病大鼠肾单位糖类沉积,改善系膜增生及肾脏肥大,降低肌酐、尿素氮、KWI、24 h尿蛋白水平,提示马齿苋多糖能够减轻幼年糖尿病导致肾功能损害,对肾功能有保护作用。

TGF-β1/Smad3信号通路在肾纤维化进程中起关键作用。TGF-β1是肾纤维化起始因子,在高糖环境下大量分泌激活后与Smad-3蛋白结合,刺激炎症细胞聚集,引起级联反应,促进下游CTGF大量分泌,导致肾小管上皮增生,肾脏纤维化进展,最终导致肾功能衰竭[15]。研究显示,早期糖尿病肾病发生发展与TGF-β1/Smad3信号通路上调密切相关[16],高糖环境能够诱导肾小球上皮细胞TGF-β1高表达[17],抑制该通路能够保护肾功能,延缓糖尿病肾病进展[3]。本研究结果显示,与Con组比较,Mod组TGF-β1、Smad3和CTGF蛋白表达明显增加 (P< 0.05);而与Mod组比较,PP组能够显著降低TGF-β1、Smad3和CTGF蛋白表达 (P< 0.05),提示马齿苋多糖可能通过TGF-β1/Smad3信号通路保护肾功能。

综上所述,马齿苋多糖能够改善幼年糖尿病大鼠的糖脂代谢,降低尿蛋白水平,并且对幼年糖尿病大鼠肾功能起保护作用,其机制可能与TGF-β1/Smad3信号通路有关。

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