崔有为, 王好韩, 金常林
(1.北京工业大学城镇污水深度处理与资源化利用国家工程实验室, 北京 100124;2.北京首钢国际工程技术有限公司, 北京 100043)
聚羟基脂肪酸酯(PHA)是微生物在细胞内积累的一类胞内多聚物,是微生物在不平衡生长条件下对外源碳源的积累,是还原力和能源的储存. PHA可以应用于工业生产、生活和医学等领域. 目前,PHA作为生物可降解塑料替代传统塑料引起了广泛的学术研究[1]. PHA积累菌是在非平衡生长条件下能够储存碳源的一类微生物. 已经发现的具有PHA积累能力的微生物达到300多种[2]. 富集PHA合成混合菌普遍采用丰盛(feast)/饥饿(famine)(F/F)运行模式[3-4],即在好氧条件下碳源充足(丰盛)和碳源缺乏(饥饿)阶段交替运行,而且给予较长时间的饥饿期(即低F/F). 活性污泥在非稳态条件下,能够积累PHA的菌群逐渐占据优势,并激发微生物内源储存能力. F/F选择压机制是一种高效的积累PHA的驯化方式. 好氧F/F(O- F/F)选择模式驯化城市污水处理厂活性污泥是被普遍采用的富集PHA积累微生物的方法[5-6]. 但是,O- F/F模式驯化需要全程曝气,耗能大,且驯化的菌群功能较为单一. 有研究表明,PHA积累菌除了可以利用分子态氧(O2)氧化PHA产生能量外,还能够在缺氧条件下利用化合态氧(NOx-N)氧化PHA产生能量[6-8],这为实现好氧PHA积累和缺氧PHA的利用(O/A- F/F模式)提供理论基础. O/A- F/F选择模式仅在较短的底物丰盛期进行曝气,相较于O- F/F模式可以节约在饥饿期的能耗. 同时也为好氧阶段的生物多聚物的原位利用提供可能. 但是, 由于O/A- F/F模式研究才刚刚起步,尤其是利用实际污水实现O/A- F/F模式及其对该模式的特性研究少有报道.
我国城市污水中碳氮比较低,有机物在曝气池被氧化成为二氧化碳,剩余的有机物不足以用来完成后续的反硝化[7-9],在缺氧段需要投加碳源以完成反硝化,这大大增加了污水处理厂的运营成本. 而O/A- F/F选择模式可以在好氧段将有机物以PHA的形式储存到胞内,在缺氧段以PHA作为反硝化碳源. 这为污水处理碳源不足的问题提供了有效的解决办法.
基于上述研究背景,本文采用O- F/F与O/A- F/F两种选择模式同时驯化活性污泥,从生物功能和生物组成等层面比较2种模式的差别,并对O/A- F/F模式缺氧段PHA内源反硝化的特性进行分析,为O/A- F/F在污水处理中的工程应用奠定基础.
废水采用北京工业大学家属楼的生活污水,生活污水经过化粪池处理,水质指标如表1所示. 由于生活污水挥发性有机酸含量不足影响PHA积累菌群的富集,本研究在进水中投加乙酸钠,控制进水COD在300 mg/L左右. 实验污泥取自北京某污水处理厂,该活性污泥有机物去除、脱氮除磷和污泥沉降性能良好. 污泥接种后,反应器内污泥质量浓度为3 000 mg/L、污泥容积指数(SVI)为54 mL/g.
表1 生活污水水质条件Table 1 Quality of the sewage wastewater
实验采用2个相同的序批式生物反应器(SBR),有效容积8 L,分别采用O- F/F和O/A- F/F两种运行模式运行且均维持F/F=0.1,O/A- F/F选择模式的缺氧饥饿期投加硝酸盐(20 mg/L)提供氧化态氮源. SBR周期运行包括进水5 min,好氧丰盛的时间以监控溶解氧(DO)跃升高于3 mg/L来控制. 沉淀1 h,排水5 min,闲置1 h. 每天运行2个周期,排水比为0.5,污泥龄(SRT)控制在20 d,温度控制在28±2 ℃,曝气量用气体流量计控制在60 L/h. 活性污泥经过O- F/F和O/A- F/F两种运行模式连续3个SRT的选择富集.
污泥中PHA的质量分数:
(1)
式中:w(PHA)为污泥中PHA的质量分数;m(PHA)为PHA的质量,mg;m(VSS)为污泥的质量,mg.
污泥中糖原的质量分数:
(2)
式中:w(糖原)为污泥中糖原的质量分数;m(糖原)为糖原的质量.
内源聚合物产率:
(3)
式中:Y为PHA(Yp/s)或糖原(Ygly/s)的产率;Δpolymer为PHA或糖原产量,mg/L;ΔS为外源基质降解量,mg/L.
好氧丰盛段的比内源生产速率qp和饥饿段的比内源消耗速率rp:
(4)
式中:qp为比内源生产率,mg/(h·g);rp为比内源降解速率,mg/(h·g);ρ(VSS)为污泥质量浓度,mg/L;ΔT为饥饿段内源降解时间,h;Δpolymer为内源PHA或糖原产量,mg/L.
比基质的摄取速率:
(5)
式中:qs为比基质的摄取速率,mg/(h·g);ΔCOD为外源基质降解量,mg/L;ΔT为缺氧反硝化时间,h.
VSS、PHA、糖原的分子式分别是CH1.8O0.5N0.2[10]、CH1.5O0.5[11]和CH2O(糖原检测实际以葡萄糖为标准曲线). VSS、PHA和糖原摩尔质量分别是24.6、21.5和30.0 mg/mmol.
连续运行60 d以后采集O- F/F和O/A- F/F两种运行模式下的驯化稳定后的活性污泥,使用E.Z.N.A.®固体DNA试剂盒(Omega Bi- TEK,Norcross,GA,美国)从样品中提取微生物DNA. 采用扩增细菌16S核糖体RNA基因的V4~V5区且带条形码的引物经PCR扩增. 每个样品设3个平行样,将对应的3个PCR扩增产物混匀为1个样本;将回收阳性克隆条带用Tris HCl进行洗脱,根据2.0%琼脂糖电泳对各阳性胶回收产物的初步定量结果,采用蓝色荧光定量系统(QuantiFluorTM-ST, Promega,美国)定量检测待测样PCR产物后,将各待测样的PCR产物根据测序量要求进行混合. 根据标准方案,在Illumina MiSeq平台上将纯化扩增子整合[15-16]. 原始序列保存到NCBI数据库,存档序列为SRP2905300.
O- F/F和O/A- F/F两种模式下内源聚合物PHA积累见表2. O- F/F模式下PHAmax高于O/A- F/F模式,分别为7.01%和5.50%. 此外,O- F/F模式下的Yp/s也高于O/A- F/F模式,分别为0.75和0.52. O- F/F模式下,根据文献报道,Yp/s在0.20~0.65,Yp/s主要受到底物类型的影响,在本研究中由于在生活污水投加了乙酸,提高了底物转化PHA的比率.
表2 O- F/F与O/A- F/F模式下活性污泥积累PHA的比较Table 2 Biopolymer PHA production by activited sludge using O- F/F and O/A- F/F operation modes
①为未报告;②为PHA浓度,mmol/L;③为挥发性脂肪酸(VFAs),包括乙酸、丙酸和丁酸;④为周期时长分别为24和6 h的PHA产率,分别为0.34和0.20.
对比分析O- F/F和O/A- F/F两种运行模式条件下内源聚合物糖原的积累表明(见表3),O- F/F和O/A- F/F运行模式下微生物的糖原质量分数分别为4%和5%,相差不大. 而在普通活性污泥中,糖原的质量分数为10%左右[30]. 2种模式下并没有实现糖原的有效积累,反而导致糖原的质量分数降低. 表明2种模式下底物可以被充分利用合成PHA.
①为糖原浓度,mmol/L;②为周期时长分别为24和6 h的糖原产率,分别为0.17和0.55.
如图1(b)所示,O/A- F/F模式运行下丰盛期结束时投加的20 mg/L的NOx-N,在缺氧饥饿期可以达到95%的去除率. 在这期间外源COD几乎不变,而PHA含量逐渐降低,证明在缺氧段系统以PHA为内碳源进行反硝化. 经过3个SRT的驯化,系统的PHA产率、比PHA产率和比反硝化速率(SDNR)趋于稳定(见图2). Chen等[32]以不同碳源为基质研究对内源反硝化的影响,结果表明以乙酸钠为碳源时SDNR为8.5 mg/(h·g),以丙酸钠和葡萄糖为碳源SDNR均为7.0 mg/(h·g)左右,以甲醇和乙醇为碳源的SDNR为6.0 mg/(h·g). 本实验的SDNR为2.76 mg/(h·g)可能是因为投加NOx-N量较少所导致的. 另一方面,不同碳源的SDNR也不同,而本实验碳源主要为生活污水加乙酸,碳源成分较为复杂,所以SDNR较低.
2.5 O- F/F和O/A- F/F模式富集的微生物菌群组成
对驯化泥样进行16S rRNA MiSeq 焦磷酸测序分析种群结构. 基于丰度>1%的种属分析,在门水平Proteobacteria和Bacteroidetes在O- F/F和O/A- F/F运行模式下均为优势菌群(见图4). 在2种选择模式下Proteobacteria菌门丰度分别为56.02%和49.11%,Bacteroidetes菌门丰度接近,分别为34.91%和31.51%. 此外,2种模式的系统中都含有一定丰度的Firmicutes菌门微生物. 研究报道Firmicutes、Baterioidetes 和 Proteobacteria 菌门的微生物均具有积累PHA的能力,在驯化后的积累PHA菌群中为优势菌群[6,34],与本研究结论相同. 这些优势菌群和系统功能的发挥具有正相关性. 但是,Chlorobi、Spirochaetes、Lentisphaerae和GN02在O/A- F/F运行模式系统中丰度分别是 8.69%、1.44%、2.72%和2.85%,远高于O- F/F模式系统中该菌群丰度(<1%). 相反,Planctomycetes和Verrucomicrobia在O- F/F模式系统中菌群丰度分别为2.12%和1.41%,但在O/A- F/F模式系统中菌群丰度均很少(<1%). 表明不同模式的优势菌群不同,从而导致系统功能的差异性.
在纲水平(见图5),O- F/F和O/A- F/F两种选择模式下中Betaproteobacteria纲均为各系统中的优势菌纲,丰度分别为29.54%和40.56%. Alphaproteobacteria、Gammaproteobacteria菌纲在O- F/F运行模式下菌群丰度高于O/A- F/F运行模式,丰度分别为8.13%和1.72%、6.48%和2.89%. Deltaproteobacteria纲丰度在2个系统中相似,分别为1.11%和1.02%. Betaproteobacteria纲具有PHA积累能力[6]. Venkateswar等[38]在O- F/F模式下积累PHA的研究中发现Gammaproteobacteria(39%)是优势菌群. Ince和Ciggin等[34,39]发现Gammaproteobacteria和Alphaproteobacteria是优势菌群并负责PHA积累. 本研究O- F/F驯化模式结果和上述研究的结论相似,Gammaproteobacteria和Alphaproteobacteria为优势菌纲,高于O/A- F/F模式,这可能是O- F/F模式具有较高PHA积累能力的原因. O/A- F/F选择下的优势微生物Betaproteobacteria纲中有大量的反硝化菌[35],而且Betaproteobacteria纲中的Acidovorax、Comamonas和Simiplicispira菌属具有以PHA为内碳源进行反硝化的功能[35,37],这可能是O/A- F/F驯化模式得到的菌群具有内源反硝化的原因.
此外,Bacteroidetes门下的Flavbacteriia和Sphingobacteriia纲的丰度在O- F/F模式富集丰度高于O/A- F/F模式,分别为14.83%和2.63%, 5.15%和<1%,Huang等[40]的研究表明Flavbacteriia纲微生物具有PHA积累能力,这与O- F/F模式具有较高的PHA积累能力相一致. Bacteroidetes门下的Unclassified Bacteroidetes,Lgnavibacteria和Bacteroidia这些在O- F/F模式丰度<1%的菌纲在O/A- F/F选择模式下的丰度为13.21%、 8.52%和5.13%,这些菌纲均具有PHA积累的功能[41-42]. 虽然2种驯化模式的优势菌群都有PHA积累能力,但是优势菌群不同,导致2种模式的PHA积累能力有所差异.
1) 本研究证明O/A- F/F选择模式是有效的. 在这种选择模式下可以驯化活性污泥实现好氧PHA积累和缺氧内源反硝化的功能. 这种生物功能的实现为实现好氧有机物储存和PHA在污水处理的原位利用奠定基础.
2) O- F/F选择模式的PHA产率和最大细胞干重大于O/A- F/F模式,糖原在2种模式下没有明显积累.
3) O- F/F选择模式下Alphaproteobacteria,Gammaproteobacteria纲是优势的PHA积累菌. O/A- F/F选择模式下Betaproteobacteria纲微生物是优势菌群. Bacteroidetes门下的Unclassified Bacteroidetes、Lgnavibacteria和Bacteroidia纲也是O/A- F/F选择模式下富集的优势功能微生物.