陈定安 魏小武 张敏
摘 要:为了获得高效解有机磷细菌,从油茶植株根际土壤中分离到21株解有机磷细菌,采用透明圈法进行复筛,仅有4株细菌能在有机磷培养基上形成明显的透明圈。4株细菌的D/d值在1.62~2.71之间,其中菌株Y6的D/d值最大,为2.71;发酵上清液有效磷含量为8.50~14.79 mg/L,较CK增加7.88~14.17 mg/L,其中菌株Y6发酵上清液有效磷含量最多,为 14.79 mg/L,较CK增加14.17 mg/L。根据菌株Y6的菌落形态特征和生理生化特征及16S rDNA序列分析结果,初步确定菌株Y6为假单胞菌属。该菌株有利于改善油茶磷素供应,促进油茶生长,在生物有机肥研制中具有较大潜力。
关键词:解有机磷细菌;假单胞菌;有效磷;油茶
中图分类号:S154.3文献标识码:A文章编号:1006-060X(2019)10-0008-04
Abstract: In order to obtain high-efficiency organophosphate-dissolving bacteria, 21 strains of organophosphate-dissolving bacteria were isolated from the tea-oil rhizosphere soil, and the transparent circle method was used for rescreening. Only 4 bacteria could form obvious transparent circles on the organic phosphorus medium. The D/d values of the four bacteria ranged from 1.62 to 2.71, and the strain Y6 had the largest D/d value of 2.71. The effective phosphorus content of the fermentation supernatant was 8.50-14.79 mg/L, which was 7.88-14.17 mg/L higher than that of CK. The strain Y6 had the highest soluble phosphorus content of 14.79mg/L in the fermentation supernatant, which was 14.17mg/L higher than CK. According to 16S rDNA sequence analysis, morphological, physiological and biochemical characteristics, strain Y6 was initially identified as Pseudomonas. Strain Y6 is beneficial to improving the supply of phosphorus in tea-oil rhizosphere soil and promoting the growth of tea-oil tree. It has great potential in the development of bio-organic fertilizer.
Key words: organophosphate-dissolving bacteria; Pseudomonas; effective phosphorus; tea-oil tree
磷是植物生长所需的主要营养元素之一。农田土壤中全磷的含量高,但是有效磷的含量却很低。这是因为土壤中的磷主要是以难溶性的化合物存在,绝大部分不能被植物直接吸收利用。我国有74%的耕地土壤存在缺磷现象[1],有机态磷约占土壤全磷量的20%~50%[2]。通常采用施用化学磷肥的方式提供植物所需的磷元素,但是化学磷肥利用率很低,通常只有 5%~25%[3]。解磷菌能将难溶性或不溶性磷转化为植物可利用的形态,提高土壤中磷元素的利用率。林启美等[4]通过对农田、草坪、林地和菜地根际土壤溶磷微生物数量和种群结构的研究,发现有机磷细菌主要为芽孢杆菌属,其次是假单胞菌属。
油茶是我国所特有的世界4大木本油料树种之一[5]。截至2018年末,湖南省油茶林总面积达到140.74万hm2,茶油总产量26.2万t,产值450亿元,居全国首位[6]。茶籽油中含有单不饱和脂肪酸——油酸,能够降低血液中胆固醇和低密度脂蛋白的浓度,预防心血管疾病的发生[7]。研究表明,油茶根际土壤中存在溶磷菌,可以改良土壤理化性质,促进植物生长,增加作物产量,对生态环境友好[8]。
课题组从健康的油茶植株根际土壤采样,分离获得一批可分解有机磷的菌株,从中筛选出一株高效解有机磷细菌,对其解磷能力进行了分析,通过菌落形态特征和生理生化特征以及16S rDNA序列分析,初步确定菌株的分类地位,为微生物肥料的研制提供理论依据,进而达到减少化肥施用量、提高产品质量、降低生产成本的目的。
1 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 样品采集 采集邵阳市油茶林健康的油茶植株根際土壤,置于阴凉处自然风干后于4℃的冰箱内保存备用。
1.1.2 培养基 (1)有机磷培养基:葡萄糖 10 g,(NH4)2SO4 0.5 g,NaCl 0.3 g,KCl 0.3 g,MgSO4·7H2O 0.3 g,FeSO4·7H2O 0.03 g,MnSO4·4H2O 0.03 g,卵磷脂 0.2 g,CaCO3 5.0 g,酵母膏 0.4 g,琼脂 20 g,dd H2O 1 000 mL,pH值7.0~7.5。(2)LB培养基参见文献[9]。
2.6 解有机磷细菌Y6的生长曲线
微生物的生长曲线,可以分为延缓期、对数期、稳定期和衰亡期4个阶段。从图4可以看出,在LB液体培养基中,菌株Y6的延缓期在4 h以内,4 h后OD600值迅速增加,进入对数生长期,22 h后OD600值达到最大,为5.21,随后进入稳定期,并保持相当长时间。
3 结论与讨论
目前,解有机磷细菌的分离,主要以卵磷脂作为单一的有机磷来源,解有机磷细菌分泌的磷酸酶将卵磷脂分解为胆碱、甘油、脂肪酸、磷酸,胆碱被进一步分解为胺、有机酸、二氧化碳、醇,最终在有机磷培养基上形成透明圈[11]。课题组从健康的油茶植株根际土壤采样,共分离到21株在有机磷培养基上有透明圈的菌株,采用溶磷圈法进行复筛,仅有4株细菌能在有机磷培养基上形成明显的透明圈,其余17株菌没有透明圈,失去解磷现象。Venkateswarlu 等[12]也报道过大多数解磷细菌经过几次传代培养后,会失去解磷能力。
30℃恒温箱中培养4 d,4株细菌的D/d值在1.62~2.71之间,其中菌株Y6的透明圈直径(D)为24.9 mm,菌圈直径(d)为9.2 mm,D/d值最大,为2.71。D/d比值的大小只是说明细菌具有解磷能力,不能判定细菌解磷能力的大小,很多学者有类似的观点[13-14]。
4株细菌在30℃恒温摇床振荡培养4 d后,发酵上清液有效磷含量为8.50~14.79 mg/L,CK上清液有效磷含量为0.62 mg/L,上清液有效磷增加量为7.88~14.17 mg/L,其中菌株Y6发酵上清液有效磷含量最高,为 14.79 mg/L,较CK增加14.17 mg/L。4株细菌的D/d值从大至小排列依次为Y6>Y12>Y11>Y3,而4株细菌发酵上清液有效磷含量由高到低排列依次为Y6>Y3>Y12>Y11,表明解磷细菌D/d 值和发酵上清液有效磷含量之间并不总是呈正相关,这与伍善东等[15]的研究结果一致。
菌株Y6的发酵液pH值随着培养时间的增加逐步降低,培养144 h后发酵液pH值稳定在6.01。发酵上清液有效磷含量先升高后降低,培养108 h后发酵上清液有效磷含量达最大值,为17.11 mg/L,说明菌株Y6发酵液pH值的变化不是其解有机磷的必要条件。赵小蓉等[16]的研究表明,发酵液有效磷含量与培养液pH值存在一定的相关性,但是培养液pH的下降,并不是解磷的必要条件,对此,很多学者也发现二者的相关性较为微弱[17-18]。发酵培养液pH值的下降与解磷菌分泌有机酸有关,H+还有其他来源,如NH4+/H+交换机制和呼吸作用。目前,认为解有机磷细菌分泌磷酸酶是主要的解磷机理之一,张淑红[19]认为解有机磷细菌分泌的有机酸、蛋白质和多糖可能也具有一定的溶磷效果。
根据菌株Y6的菌落形态特征和生理生化特征及16S rDNA序列分析结果,初步确定菌株Y6为假单胞菌属。
参考文献:
[1] 赵小蓉,林启美. 微生物解磷的研究进展[J]. 土壤肥料,2001(3):7-11.
[2] 韩 梅,温志丹,肖亦农,等. 解磷细菌的筛选及对植物病原真菌的拮抗作用[J]. 沈阳农业大学学报,2009,40(5):594-597.
[3] Brookes P C,Poelson D S,Jenkinson D S. Phosphorus in the soil microbial biomass[J]. Soil Biology and Biochemistry,1984,16:169-175.
[4] 林启美,赵小蓉,孙焱鑫,等. 四种不同生态系统的土壤解磷细菌数量及种群分布[J]. 土壤与环境,2000,9(1):34-37.
[5] 彭绍峰,陈永忠,张日清,等. 油茶果形果色分类及经济性状[J]. 中南林业科技大学学报,2007,27(5):33-39.
[6] 2018年湖南油茶产值达450亿元--ZAKER新闻[EB/OL]. http://hunan.ifeng.com/a/20190517/7434108_0.shtml,2019-05-17.
[7] 王雁灿,杨 灿,唐小武,等. 油茶籽的营养价值及其应用现状[J]. 畜牧与饲料科学,2017,38(6):29-32.
[8] 苟志辉. 油茶根际功能菌株的组合优化及菌肥研究[D]. 长沙:中南林业科技大学,2010.
[9] 黄秀梨,夏立秋,辛明秀,等. 微生物学实验指导[M]. 北京:高等教育出版社,1999.
[10] 东秀珠,蔡妙英. 常见细菌系统鉴定手册[M]. 北京:科学出版社,2001.
[11] 王 琛,张学雷,崔龙波,等. 印度洋可培养解有机磷细菌的多样性及解磷特性[J]. 微生物学通报,2015,42(10):1847-1857.
[12] Venkateswarlu B,Rao A V,Raina P. Evaluation of phosphorus solubilisation by microorganisms isolated from aridsoil[J]. Journal of the Indian Society of Soil Science,1984,32(2):273-277.
[13] 王继雯,甄 静,谢宝恩,等. 有机磷降解菌的分离筛选及初步鉴定[J]. 河南科学,2011,29(1):31-34.
[14] 刘小玉,付登强,陈良秋,等. 油茶根际溶磷菌的分离、鉴定及溶磷能力研究[J]. 生物技术通报,2015,31(7):169-173.
[15] 伍善东,刘清术,付祖姣,等. 解有机磷拮抗细菌的筛选及其解磷特性和拮抗作用[J]. 江苏农业学报,2017,33(4):843-847.
[16] 赵小蓉,林启美,孙焱鑫,等. 细菌解磷能力测定方法的研究[J]. 微生物學通报,2001,28(1):1-4.
[17] 陈 俊,陆俊锟,康丽华,等. 红树林溶磷菌的初步鉴定、溶磷能力测定及其优化培养[J]. 微生物学通报,2009,36(8):1183-1188.
[18] 王 琛,田欣欣,曲凌云. 九龙江口解有机磷细菌的解磷特性[J]. 海洋环境科学,2013,32(5):736-740.
[19] 张淑红. 1株溶磷细菌的筛选及其溶磷物质分析[J]. 河南农业科学,2014,43(8):64-67.
(责任编辑:成 平)