好食脉孢菌固态发酵醋糟产木聚糖酶的工艺优化

段 睿 邓永平,2 刘晓兰,2 郑喜群 姜欢笑 马 瑞

(1． 齐齐哈尔大学食品与生物工程学院，黑龙江 齐齐哈尔 161006； 2． 黑龙江省玉米深加工理论与技术重点实验室，黑龙江 齐齐哈尔 161006； 3. 黑龙江八一农垦大学食品学院，黑龙江 大庆 163319)

木聚糖是植物细胞壁中最丰富的半纤维素，是自然界中仅次于纤维素的多糖[1]。木聚糖酶(EC 3.2.1.8)可将木聚糖水解成不同长度的低聚木糖和D-木糖[2]，在工业上应用广泛，如用于纸浆改性[3]、生产生物燃料[4]、澄清果汁[5]、提升饲料质量[6]以及生产木糖醇[7]等。2019年1月3日，澳新食品标准局发布70-19号通告，拟批准来自里氏木霉转基因菌株的木聚糖酶作为烘焙产品生产中的加工助剂[8]。

醋糟为酿造食醋后的废弃物，年产量巨大。由于难降解，纤维含量高，营养价值低，在养殖业中很难达到像酒糟、豆渣等糟渣类原料的高利用率；且由于酸度高，直接排放又易造成环境污染[9]。好食脉孢菌是一种子囊菌属真菌，生长速率快，为常见工业真菌黑曲霉和产黄青霉的2～3倍[10]。好食脉孢菌是FDA组织认证的安全性真菌[11]，已见关于好食脉孢菌降解纤维类底物富集蛋白质及产纤维素酶等产物的报道[12-14]。课题组前期报道了好食脉孢菌发酵产木聚糖酶的工艺[15-16]，原有工艺分别是采用液态发酵和固态发酵产酶，所使用的培养基配方较复杂，且生产成本有进一步降低的空间。

由于固态发酵往往具有比液态发酵更高的产酶活力[17]，试验拟以富含纤维的酿醋废弃物醋糟为发酵底物，经好食脉孢菌固态发酵生产木聚糖酶，对发酵培养基组成及培养条件进行优化，以期为木聚糖酶提供安全、价廉的新来源，也为醋糟的利用提供新途径，提高酿醋行业经济效益和社会效益。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

1.1.1 菌种

好食脉孢菌(Neurosporasitophila)：齐齐哈尔大学食品与生物工程学院生物工程教研室菌种保藏室提供，分离自北方发酵豆制品。

1.1.2 材料与试剂

醋糟：齐齐哈尔市黑龙酿造有限责任公司；

木聚糖：美国Sigma公司；

其余试剂均为国产分析纯。

1.1.3 仪器与设备

压力蒸汽灭菌锅：YXQ-SG46-280S型，上海博讯实业有限公司医疗设备厂；

高速冷冻离心机：Himac CF15RX型，日立(中国)有限公司；

隔水式电热恒温培养箱：PYX-DHS·350-BS-Ⅱ型，上海跃进医疗器械厂；

分光光度计：TU-1810型，北京普析通用仪器有限公司。

1.2 方法

1.2.1 培养方法

(1) 斜面培养：培养基为马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)，配制方法参照文献[18]。将4 ℃保存的好食脉孢菌菌株挑取至PDA斜面上，28 ℃培养3～5 d。

(2) 固态发酵培养：在250 mL三角瓶中装入5 g干醋糟，其他原料及配比根据试验确定。

1.2.2 氮源种类对木聚糖酶活力的影响 培养基碳源为5 g醋糟，氮源分别为1%醋糟质量的玉米蛋白粉、豆粕、干豆渣。料水比1∶3 (g/mL)，初始pH为培养基自然pH，灭菌后接入好食脉孢菌孢子悬液1 mL(含孢子量106个/mL)，28 ℃恒温培养3 d后测定木聚糖酶活力。

1.2.3 干豆渣浓度对木聚糖酶活力的影响 调节培养基中干豆渣浓度分别为醋糟质量的0%，1%，2%，3%，4%，6%，8%，10%。将5 g干醋糟与上述不同浓度干豆渣加入到250 mL三角瓶中，料水比1∶3 (g/mL)，灭菌后接入好食脉孢菌孢子悬液1 mL(含孢子量106个/mL)，28 ℃ 培养3 d后测定木聚糖酶活力。

1.2.4 培养基料水比对木聚糖酶活力的影响 250 mL三角瓶中加入5 g醋糟和0.4 g干豆渣，调节培养基的料水比分别为1∶1，1∶2，1∶3，1∶4，1∶5 (g/mL)，灭菌后接入好食脉孢菌孢子悬液1 mL(含孢子量106个/mL)，于28 ℃培养3 d后测定木聚糖酶活力。

1.2.5 培养时间对木聚糖酶活力的影响 250 mL三角瓶中加入5 g醋糟和0.4 g干豆渣，调节培养基的料水比分别为1∶3 (g/mL)，灭菌后接入好食脉孢菌孢子悬液1 mL (含孢子量106个/mL)，于28 ℃培养2，3，4，5 d后测定木聚糖酶活力。

1.2.6 正交试验优化 利用L9(34)正交试验对好食脉孢菌产木聚糖酶的培养基初始pH、培养温度和接种量进行优化。

1.2.7 粗酶液的制备 培养结束后，向固态发酵培养物中加入100 mL生理盐水，180 r/min浸提酶2 h。浸提结束后，过滤，在4 ℃、10 000 r/min离心10 min，得粗酶液。

1.2.8 酶活力的测定 参考GB/T 23874—2009方法，对酶促反应的温度和pH稍作修改。酶活力定义为在40 ℃、pH 6.0条件下，每分钟水解木聚糖生成1 μmol还原糖所需酶的量为一个酶活力单位，用U/g表示。

1.3 数据统计分析

所有试验均重复3次，利用Excel 2003和SPSS软件对数据进行统计分析，字母不同表示差异显著(P<0.05)。

2 结果与讨论

2.1 标准曲线的测定

由图1可知，标准曲线R2为0.998 4，可用于好食脉孢菌固态发酵醋糟产木聚糖酶活力的测定。

2.2 氮源种类对木聚糖酶活力的影响

由图2可知，当以豆渣为氮源时，好食脉孢菌产木聚糖酶活力显著高于玉米蛋白粉和豆粕的(P<0.05)，可能是豆渣中含有较高含量的膳食纤维(干基中约含60%)[19]，在发酵中起到了木聚糖酶诱导物的作用。

图1 木糖标准曲线

图2 氮源种类对木聚糖活力的影响

2.3 豆渣浓度对木聚糖酶活力的影响

由图3可知，随着豆渣浓度的提高，酶活力显著提高(P<0.05)，当培养基中豆渣添加量为醋糟质量的8%时，木聚糖酶活力最高；当继续增加豆渣浓度至10%时，培养基状态较为黏稠，氧气流通性变差，不利于好氧菌的生长代谢，导致酶活力有所降低，与黑曲霉固态发酵豆渣生产纤维素酶及淀粉酶的研究结果[20]相似。因此，确定培养基中豆渣浓度为醋糟质量的8%。

图3 豆渣浓度对酶活力的影响

2.4 培养基料水比对木聚糖酶活力的影响

大多数丝状真菌在固态基质表面或内部的生长状态取决于固态基质的孔隙率[21]。培养基料水比对于营养物质的溶解状态，以及培养基的孔隙率均会有较大的影响，进而对菌体生长和活性物质的积累产生一定的影响。由图4可知，当料水比为1∶3 (g/mL)时，木聚糖酶活力显著高于其他料水比的(P<0.05)，达400.19 U/g；继续加大培养基含水量会导致酶活力显著降低(P<0.05)，因此，确定料水比为1∶3 (g/mL)。

2.5 培养时间对木聚糖酶活力的影响

由图5可知，随培养时间的延长，木聚糖酶活力呈先升高后逐渐降低的趋势，培养至3 d时酶活力显著增高(P<0.05)，之后无显著性变化(P>0.05)，因此，确定培养时间为3 d。

图4 培养基料水比对酶活力的影响

Figure 4 Effect of the solid-liquid ratio of culture media on enzyme activity

图5 培养时间对酶活力的影响

2.6 正交试验优化

温度、培养基pH和接种量是影响固态发酵效率的3个主要因子[22]。其中，温度的影响尤为显著，低温培养减缓菌丝代谢速率，延长生产周期，高温培养易导致菌丝快速老化，抑制产物生成，适宜丝状真菌产木聚糖酶的培养温度大多在23～35 ℃[23]；培养基pH影响物质的膜间运输，固态发酵过程主要研究培养基的初始pH值对产物的影响[24]，丝状真菌的最佳生长和产酶的初始pH范围大多在3.8～6.0[22]；接种量对于维持固态发酵中菌丝生长和产物合成的平衡具有重要影响，接种量过小会导致生物量过低，而接种量过大会导致不必要的真菌生长和养分消耗，两种情况均导致酶的产量低下[25]，固态发酵中采用的孢子接种量通常为105～107个孢子/g干基[22]。在前期预试验的基础上对好食脉孢菌发酵醋糟豆渣产木聚糖酶的培养基初始pH、培养温度和接种量进行正交试验分析，试验因素水平设计见表1，试验结果及方差分析分别见表2、3。

由表2可知，好食脉孢菌固态发酵醋糟获取木聚糖酶的最优培养条件组合为：培养基初始pH 5.5、培养温度28 ℃，接种量106个孢子/瓶，影响木聚糖酶活力的主次因素依次为培养温度>初始pH值>接种量。

由表3可知，培养温度对木聚糖酶活力有显著影响(P<0.05)，初始pH、接种量对木聚糖酶活力无显著影响。

最终确定好食脉孢菌发酵醋糟制备木聚糖酶的条件为：5 g醋糟与0.4 g干豆渣组合，料水比1∶3 (g/mL)，培养基初始pH 5.5，接种量106个孢子/瓶，28 ℃发酵3 d。

表1 正交试验设计

表2 L9(34) 试验结果

表3 木聚糖酶方差分析结果†

† *表示差异显著(P<0.05)。

该条件下产酶活力为412.34 U/g，较优化前(114.95 U/g)提高了约3.59倍。

3 结论

以酿造食醋下脚料醋糟为主要原料，利用好食脉孢菌固态发酵生产木聚糖酶，得到固态发酵培养基组成和培养条件：5 g醋糟与0.4 g干豆渣组合，料水比1∶3(g/mL)，培养基初始pH 5.5，接种量106个孢子/瓶，28 ℃ 发酵3 d。此条件下产木聚糖酶活力为412.34 U/g，较优化前(114.95 U/g)提高了约3.59倍。

将醋糟废物再利用，作为原料用于木聚糖酶的生产，有助于降低酶的生产成本，且醋糟中的半纤维素经微生物降解可为木聚糖酶提供诱导物，有助于进一步提高酶活力；同时，采用FDA认证的安全菌种好食脉孢菌作为生产菌种，提高了木聚糖酶的安全性，可进一步将其开发为食品或饲料用酶制剂。木聚糖酶是一种诱导酶，在培养基中添加适量的生物或非生物诱导子对酶活力的提高具有一定的促进作用，后续可进一步研究诱导子对酶活力的影响，以期能更大幅度地提高木聚糖酶活力。