应用FITC系统建立雌二醇直接竞争化学发光免疫分析方法

2019-08-10 09:07潘国华
标记免疫分析与临床 2019年2期
关键词:稀释液雌二醇试剂

潘国华

(北京北方生物技术研究所有限公司,北京100076)

雌二醇(estradiol,E2)分子式C18H24O2,在女性雌激素中是生物学活性最强的,主要是促进子宫内膜转变为增殖期以及促进女性第二性征的发育。女性体内雌二醇主要来源于卵泡、黄体、和胎盘,妊娠后母体和胎儿血液中的脱氢异雄酮(dehydroisoandrosterone,DHA)在胎盘组织内转化为E2和雌酮(E1)。男性雌二醇则主要来源于睾丸。在循环系统中的E2主要结合在性激素结合蛋白(sex hormone binding protein,SHBG)上,并在肝脏中代谢成水溶性硫酸脂和葡萄糖醛脂,再经肾脏从尿液中排出体外。血清E2浓度是检查下丘脑-垂体-生殖腺轴功能的重要指标,对辅助检测某些内分泌及妇科疾病具有一定的临床价值。目前用免疫学检测雌二醇的主流方法包括放射免疫法、酶联免疫法、化学发光法等,反应原理也有直接法与间接法两类。本工作是利用抗-FITC与FITC标记抗体形成桥接模式,以微孔板为载体,采取直接竞争一步法,构建了化学发光检测雌二醇的免疫检测方法,性能分析评估以及临床评价的结果都比较满意。

材料与方法

1 主要试剂与仪器

雌二醇单克隆抗体(Anti-E2Mab)与雌二醇-牛血清白蛋白(E2-BSA)购自Biospacific,辣根过氧化物酶(HRP)货号P8375、雌二醇(E2)货号E8875、异硫氰酸荧光素(FITC)货号F7250购自Sigma-Aldrich,白色不透明化学发光板购自ThermoFisher Scientific,新生牛血清、牛血清白蛋白(BSA)均购自兰州民海生物工程有限公司,其它化学试剂为国产分析纯,血清样本由北京中同蓝博临床检验所提供。化学发光仪200S为厦门天中达生物科技有限公司生产。

2 方法

2.1 FITC偶联BSA与E2Mab 参考李铮[1]的方法并略作改变,FITC溶于二甲基甲酰胺(DMF)中,逐滴加入用碳酸缓冲液配制的蛋白溶液中,磁力搅拌反应4h,G25分离收集蛋白峰。分光光度计扫描,通过A495/A280计算偶联比,最终用于免疫的FITC-BSA偶联比为6∶1(F/P),用于免疫分析的FITC-E2Mab的偶联比为3∶1(F/P)。

2.2 兔抗FITC抗体的制备 FITC-BSA用弗氏完全佐剂混合乳化后,多点注射免疫新西兰兔,2周一次,共5次,ELISA测定抗体效价约为1∶10万。辛酸-硫酸铵法进行多克隆抗体纯化,0.02M PBS透析,-15℃以下保存。

2.3 辣根过氧物酶标记E2-BSA的制备 改良过碘酸钠法,HRP中滴加NaIO4进行活化,加入E2-BSA于碱性条件下反应,NaBH4中止反应,透析后加入等体积甘油,在-15℃以下保存。E2-BSA与HRP的质量比为1∶2。

2.4 预包被板的制备 将兔抗FITC抗体用0.02mol/L PB(pH7.4)稀释至5μg/mL,100μL/孔,4℃放置过夜,弃去包被液。将FITC-E2Mab用0.02mol/L PB(pH7.4)、1% BSA、10%蔗糖溶液稀释至不同工作浓度,100μL/孔,4℃放置过夜,弃去液体,拍干,在湿度低于30%条件下自然晾干。

2.5 校准品的制备 将雌二醇纯品用乙醇溶解为10μg/mL,再用100%去激素血清稀释为50、200、500、1000、3000pg/mL,作为校准品。标识为S1~S5,S0为100%去激素血清。

2.6 免疫分析程序 每孔加50μL校准品或样本、酶结合物50μL于预包被板,37℃孵育1h。用洗涤液洗板5次,加1∶1预先混合发光底物100μL,室温避光5min,测定发光值(RLU)。采用logit-ln模型进行直线拟合。方程为:log(Y)=Alog(X)+B,Y为百分结合率,由Y=(Bi/B0)/(1-Bi/B0)计算而得。

结 果

1 工艺的优化

1.1 E2特异性抗体(FITC-抗-E2)的预包被浓度、酶结合物稀释比例的选择

参考贺敏[2]的免疫试剂浓度选择的方法。当兔抗-FITC抗体(二抗)的包被浓度为5μg/mL时,选取FITC-抗-E2(一抗)的预包被浓度和HRP-E2-BSA稀释比例为考察因素,每个因素拟定3个水平,进行交叉实验。分别考察校准曲线的线性和空白检测限,结果如表1所示,各因素各水平的均值如表2所示。考察线性时,A因素(一抗预包被浓度)的K2值最大,B因素(酶结合物稀释比例)的K2值最大;考察最低检出限时A因素的K1最小,B因素的K2最小。A2B2组合线性最优且最低检出限与A1B2相差不大。综合二者考虑,免疫试剂最佳工作浓度为一抗的预包被浓度为20 ng/mL,酶稀释比例为1∶20000。按以上条件,校准曲线︱R︱为0.9990,空白检测限为4.8pg/mL。

表1 免疫试剂浓度的选择

表2 各因素水平的均值比较

1.2 酶结合物缓冲体系的选择

用0.02mol/LPBS(pH7.4)分别配制含20%小牛血清稀释液(A)和含1% BSA稀释液(B)。用以上两种稀释液分别配制工作浓度的酶结合物。分别考察与二抗板(只进行了二抗的包被,未进行E2特异性抗体的包被)的非特异性结合,以及37℃7天的加速热稳定性。考察非特异结合时,A、B稀释液的非特异性结合率(使用二抗板时的S0的光子数与一抗预包被板S0光子数的比值)均小于0.01%,表现均较好。将两种稀释液配制的酶结合物置于37℃7天后,分别与4℃保存的试剂进行对比实验。计算37℃试剂与4℃试剂实验的各校准品点RLU偏差百分比,结果如表3所示,A稀释液的稳定性好于B。

表3 两种稀释液热稳定性对比

2 反应时间选择

本分析采用一步法,对比分析20、40、60、100、120min对发光值的影响。由图1可以看出37℃孵育60min,反应即可达到平衡。

图1 反应时间的选择

3 性能指标评价

3.1 校准品曲线及空白检测限

同时测定20孔S0,计算RLU的均值x,和标准差s,以为Y值,代入校准品曲线公式,计算出相对应的的浓度值为4.8 pg/mL,即为本方法的空白检测限。

3.2 定量检测限

将浓度为50pg/mL的校准品用去激素血清依次稀释为40、30、20、10、5pg/mL,分别进行10孔重复测试,TE%=|相对偏倚|+1.96CV%,各浓度的TE%分别为12%、21%、35%、46%、52%。以TE%不超过30%为定量检测限,定量检测限为30pg/mL。

3.3 线性

将一份已知浓度为3032ng/mL的雌二醇高值样本用校准品稀释液倍比稀释,其中最大稀释比例为1/100,浓度约30.32。样本稀释曲线如图2所示,E2样本的稀释度与本方法测定值得相关方程Y=3069X,r=0.9982,表明在本方法在30~3000 pg/mL范围内的线性关系良好。

3.4 回收率

将浓度为1900pg/mL的雌二醇样品(A)分别加入到41pg/mL、462pg/mL的血清样本(B)中,加入比例为1:9,测定值分别为213pg/mL、604pg/mL。根据公式R=[C×(V0+V)-C0×V0]/(V×CS)×100%计算回收率分别为92.7%、99.1%,平均回收率为95.9%。(式中:R—回收率;V—样品A液的体积;V0—样品B液的体积;C—样品B液加入A液后的检测浓度;C0—样品B液的浓度;CS—样品A液的浓度。

3.5 分析特异性

配 制100ng/mL雌 三 醇、100ng/mL孕 酮、100ng/mL睾酮,测定结果为0.10ng/mL、0.07ng/mL和0.03ng/mL,交叉反应率分别为0.1%、0.07%、0.03%。根据人血清内甾体激素的含量,雌三醇、孕酮、睾酮浓度的变化,不影响雌二醇测定结果的分析。

3.6 分析内精密性与批间精密性

取低中高3份样本,在1次实验中平行测定10孔,计算分析内精密度;用3批试剂重复分析内精密度实验,用30孔的测量结果计算批间精密性。结果如表4、表5所示。分析内平均变异系数为5.6%,分析间平均变异系数为8.7%。

表5 分析间精密度(n=30,pg/mL)

3.7 稳定性实验结果

使用37℃保存7天、4℃保存12个月的试剂盒、新制备试剂盒,同时进行测试10份浓度不同样本,结果如表6所示,稳定性试验的试剂计数均有下降,相关系数及测值偏差可以接受,使用配对t检验,P均>0.05,表示测值差异无统计学意义。

表6 稳定性实验结果

3.8 临床比对结果

使用雌二醇全自动化学发光试剂(Beckman Coulter,Inc.)与本方法同时测定164份样本的雌二醇浓度,二者相关性如图3,相关性方程为Y=0.862 X+26.084,r=0.979。

图3 两种试剂盒样本测定结果的相关性

根据相关性方程计算本方法与贝克曼在不同浓度的测值相对偏倚,结果见表7。

表7 本方法与贝克曼试剂测值的相对偏倚

本方法与贝克曼试剂测定结果用EXCEL进行配对t检验,t=0.01,P>0.05,两者差异无统计学意义。

讨 论

小分子的检测是临床免疫检验的一个难点,除了高亲和力的抗体、合适位点的人工抗原[3]外,其反应模式的设计也非常耗费精力。小分子的基本反应模式可分为直接竞争法与间接竞争法[4],直接竞争法是用辣根过氧化物酶标记抗原[5-6],间接竞争法则是将人工抗原固定于固相载体[7-8]。一般而言直接竞争法反应更迅速,但两种方法的灵敏度高低则没有固定的规律。在两种基本的竞争模型上,还可以应用二抗、荧光素、生物素等构成多级联动反应,以获得更好的效果。

异硫氰酸荧光素(FITC)-抗-FITC在免疫检测中有不少成功的应用[9]。陈茶[10]等应用抗-FITC包被固相,FITC标记抗原,建立非均衡竞争雌二醇化学发光法。本文利用FITC进行二次包被抗体,可以有效减少空间位阻,通过两层包被,特异性抗体远离固相载体,其与小分子抗原、酶标记抗原的反应受到微孔板的干扰小,结合速率更快,对小分子与酶标记抗原的识别更趋向一致,从而检测效果更好。此外还可以提高E2单克隆抗体的包被效率。一般物理包被单克隆抗体的利用率在30%左右,而每个IgG分子有86个赖氨酸残基,可以结合多个FITC分子,再通过免疫反应连接到抗-FITC上,单抗利用率在80%左右,有效节约成本。

本方法构建的试剂盒,检测范围内线性关系良好,空白检测限4.8pg/mL,定量检测限30 pg/mL,与雌三醇、睾酮、孕酮均无明显交叉反应,与进口全自动化学发光试剂同时测定164份样本,二者测定结果的相关系数为0.979。反应仅需1小时,能够满足批量快速检测的市场需求,在临床检验工作中具有一定的应用价值。

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