【摘 要】目的:探讨黄芪多糖(简称APS)对人红白血病K562细胞凋亡产生的影响。方法:经流式细胞术来研究APS对人红白血病K562细胞凋亡产生的影响,而APS在K562细胞之中对Caspase-3产生的影响可通过Caspase-3活性测定法进行检测;经Western blot以及RT-PCR对对照组(K562细胞)及APS组(通过200mg/L的APS进行48h诱导形成的K562细胞)之中的Bcl-XL、Bcl-2、IAP-1、Bax、Smac mRNA和蛋白进行表达。结果:APS组细胞凋亡数量相较于对照组更高,两组有显性差异,有统计学意义,P<0.05;APS组K562细胞中的Caspase-3相较于对照组明显增加,但IAP-1及Bcl-2的mRNA和蛋白的表達都显示降低,而Smac以及Bax的mRNA和蛋白的表达均明显增加,两组有显性差异,有统计学意义,P<0.05;两组在Bcl-XL的mRNA和蛋白方面的表达无显性差异,无统计学意义,P>0.05。结论:APS对人红白血病K562细胞进行诱导凋亡可能是通过对Smac、Bax上调以及对IAP-1、Bcl-2下调来实现的。
【关键词】黄芪多糖;人红白血病;K562细胞;凋亡
白血病是一种常见的恶性肿瘤,此症使人类健康受到严重的威胁,白血病细胞在生长的过程中具有凋亡受阻、增殖失控以及分化障碍等特点[1]。而APS属于黄芪的活性成分之一,其具有抗应激、降血压、降血糖、强心以及抗病毒等功效,相关研究表明[2]APS能够有效抑制多种恶性肿瘤,为了研究APS对人红白血病K562细胞凋亡的影响,本次研究通过试验检测对APS组和对照组中的Bcl-XL、Bcl-2、IAP-1、Bax、Smac mRNA和蛋白进行表达,目的旨在研究APS对白血病治疗的依据,现做如下报道。
1 一般资料以及主要方法
1.1 一般资料
1.1.1 细胞来源和培养
K562细胞主要来源于本地细胞库,通过使用10%(体积分数)的胎牛血清(简称FBS)、100mg/L链霉素以及100U/mL青霉素所形成的RPMI培养基参与细胞培养,并置于5%(体积分数)的CO2培养箱之中进行细胞培养,培养箱温度为37℃。
1.1.2 试剂
(1)FBS:杭州四季青有限公司生产;
(2)Trizol试剂、RPMI培养基以及100bp DNA Marker:美国Invitrogen公司生产;
(3)Taq DNA聚合酶、RT-PCR试剂盒、dNTPs:日本TAKARA公司生产;
(4)Annexin V-FITC/PI:碧云天生物科技有限公司生产;
(5)化学发光试剂盒:美国Santa Cruz公司生产;
(6)Colorimetric试剂盒、CaspACETM Assay System试剂盒:美国Promega公司生产。
1.2 实验检测
1.2.1 细胞凋亡检测
收集对照组(K562细胞)及APS组(通过200mg/L的APS进行48h诱导形成的K562细胞)样本,并对细胞数量进行计量。通过195μL的Annexin V-FITC结合也将收集的细胞进行重悬,然后向其中加入5μL的Annexin V-FITC,进行10min的避光孵育,离心5min,1000r/min,去除上清。并通过190μL的Annexin V-FITC再次对细胞进行重悬,然后向其中加入10μL的染色液(碘化丙啶),并于冰上对其进行避光孵育,然后通过上流式细胞仪完成凋亡细胞数量的计量。实验的过程中需要设置3个平行样本。
1.2.2 Caspase-3活性测定
将APS组和对照组中的K562细胞总蛋白进行提取,并对其进行定量。然后进行Caspase-3活性测定,测定方法需严格按照说明书规定操作,并将相应试剂依次加入到96孔板中使反应混合物得以制备完成。两组各设3个复孔,并设置空白对照孔(不加蛋白)。然后向每孔加入2μL的AC-DEVA-PNA底物,避光培育,温度设定为37℃,时间设定为4h,并对405nm位置的光密度值进行测定,同时将各组的平均值进行计算,将各组所得平均值检出空白对照平均值所形成的差值来对Caspase-3活性进行表示。
1.2.3 Western blot及RT-PCR检测
(1)Western blot检测:将两组K562细胞总蛋白进行提取,同时进行定量,应用Western blot法进行检测。将β-actin当做内参照。上样量设定为100μg,Bcl-XL、Bcl-2、Bax、IAP-1、Smac、β-actin克隆抗体的稀释度分别为100倍、150倍、150倍、100倍、150倍。并通过软件对目的条带同内参照条带之间的灰度比值进行分析。
(2)RT-PCR检测:将两组K562细胞总RNA进行提取,同时进行定量,完成cDNA第一条链的体外合成,并将cDNA当做模板来完成PCR反应,然后使用软件对PCR扩增物的目的条带同内参照条带之间的灰度比值进行分析。
1.3 观察指标
本次研究选择的观察指标为Caspase-3、Bcl-XL、Bcl-2、IAP-1、Bax、Smac mRNA和蛋白。
1.4 统计学方法
此次研究在数据统计方面使用的软件版本为SPSS20.0,以()表示计量资料,采用t检验,以率(%)表示计数资料,采用X2检验,当显性差异出现时,有统计学意义,P<0.05。
2 结果
2.1 APS对人红白血病K562细胞凋亡产生的影响
通过检测,APS组中K562细胞凋亡数量为(3319.00±408.64)个,相较于对照组(104.84±19.17)个更多,两组有显性差异,有统计学意义,P<0.05,t=14.2831。
2.2 APS对Caspase-3产生的影响
APS组Caspase-3活性为(0.349±0.032),相较于对照组Caspase-3活性(0.092±0.011)更高,两组有显性差异,有统计学意义,P<0.05,t=4.7436。
2.3 APS对Bcl-XL、Bcl-2、IAP-1、Bax、Smac表达产生影响
如表1~2,APS组K562细胞中的IAP-1及Bcl-2的mRNA和蛋白的表达相较于对照组都显示降低,而Smac以及Bax的mRNA和蛋白的表達均明显增加,两组有显性差异,有统计学意义,P<0.05;两组在Bcl-XL的mRNA和蛋白方面的表达无显性差异,无统计学意义,P>0.05。
3 讨论
常规下细胞凋亡及增殖之间达到动态平衡时,可对机体稳定性进行维持,而凋亡和增殖一旦出现失衡,将可能造成肿瘤产生[3]。而细胞凋亡受基因调控的影响较大,其中,Caspase家族便是关键分子,Caspase家族成员一般都具备半胱氨酸蛋白酶活性,Caspase-8以及Caspase-9在凋亡途径中处于上游位置,而Caspase-3则属于凋亡效应因子,Caspase家族形成的级联激活共同导致细胞凋亡出现[4]。
对于Caspase家族激活方面,Bcl-2家族在对其激活过程中能够发挥调控作用,其属于一种蛋白因子,在参与细胞凋亡调控过程中,具体以线粒体这一途径来实现调控的[5]。从Bcl-2家族在细胞凋亡方面发挥的作用来看,其家族蛋白通常可分两类,分别为促进凋亡蛋白(Bax等)和抑制凋亡蛋白(Bcl-XL、Bcl-2等),后者能够对细胞出现的凋亡进行抑制,从而使细胞的寿命得到延长,而前者则能够使Caspase家族得以激活,从而造成细胞凋亡产生[6]。此外,还有研究表明[7],Smac能够同IAPs之间进行结合从而使Caspase得以释放,最终促进细胞凋亡;而XIAP、Livin则能够使Smac释放减少,从而使细胞凋亡被抑制[8],为此,此次研究特将上述指标加入到研究之中,以明确APS对K562细胞凋亡发挥的机制影响。
本次研究中,APS组细胞凋亡数量多于对照组,且APS组K562细胞中的Caspase-3相较于对照组明显增加,但IAP-1及Bcl-2的mRNA和蛋白的表达都显示降低, Smac以及Bax的mRNA和蛋白的表达均明显增加,两组有显性差异,有统计学意义,P<0.05;两组在Bcl-XL的mRNA和蛋白方面的表达无显性差异,无统计学意义,P>0.05。此结果能够与上述机理对应,说明APS可对K562细胞凋亡产生重要影响。
综上所述,APS对人红白血病K562细胞进行诱导凋亡可能是通过对Smac、Bax上调以及对IAP-1、Bcl-2下调来实现的。
参考文献
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作者简介
赵淑敏(1990-),女 ,山东省菏泽市人。住院医师。研究方向为血液内科。