噬菌体展示布鲁氏菌蛋白文库构建及差减筛选融合蛋白

布鲁氏菌病(简称布病)是由布鲁氏菌引起的一种人兽共患病，感染动物表现睾丸炎、不孕、不育、流产等症状，人类感染为波浪热、关节炎、脾脏肿大，也可引起生殖系统障碍[1-2]。布病严重影响动物生产性能和产品品质，对畜牧业的生产和健康发展带来重大损失。近年来在我国北方部分地区、特别是牧区出现上升趋势，严重影响畜牧业发展和农牧民身体健康[3-4]。该病治疗效果较差，以预防为主。故建立快速、准确诊断方法是控制、净化布病的必要手段。

目前布病的检测方法主要有病原学检测、血清学检测及分子生物学检测。现以血清学方法最为成熟，常用的方法有平板凝集(RBT)、试管凝集(SAT)、补体结合实验(CFT) 、ELISA等。其中RBT由于操作简单，但敏感性、特异性均不高，而广泛地被用作现场的大规模初筛性试验；SAT虽然能用于定性检测，但主要检测血清中的IgM, 由于IgM在血清中存在时间较短、含量也不如IgG高等原因，导致该方法敏感性、特异性也不高；CFT也能用于定性检测，但由于操作繁琐、耗时长也不常被采用。ELISA由于其快速、操作简单，在国际贸易中被世界动物卫生组织(OIE)规定为检测布病的指定方法，被公认为是一种比较有前途的方法。但是血清学方法检测的是菌体表面的脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)，布鲁氏菌的LPS与伤寒沙门氏菌、副伤寒沙门氏菌、霍乱弧菌、小肠耶尔森菌O∶9等存在相似结构，故在诊断中存在假阳性[5]。因此，新型诊断抗原的研制是建立ELISA方法的关键。

布鲁氏菌表面蛋白具有较强的免疫原性，而且在布鲁氏菌各个种间具有高度的保守性，以表面蛋白作为诊断抗原不容易和其他细菌，如大肠杆菌、小肠耶尔森菌等发生交叉反应，减少假阳性[5-7]。很多表面蛋白，如omp25、 omp28、omp31和bp26都曾被用做诊断抗原研究，但究竟哪个/些表面蛋白的特异性强、敏感性高，目前仍在探索。

由于噬菌体展示技术可以构建大容量文库并具有高通量筛选等特性，本研究利用噬菌体展示技术构建布鲁氏菌蛋白文库，通过差减筛选，选择具有良好特异性、亲和力及反应原性的表面蛋白，为确定诊断用抗原奠定基础。

1 材料与方法

1.1材料 TG1大肠杆菌(广州碧云天生物有限公司)；羊型布鲁氏菌16M株(标准热灭活,本室保存)；辅助噬菌体VCSM13(海军总医院周丽君教授惠赠)；噬菌粒载体pYW01(梅西大学Jasna教授惠赠)。 VCSM13及pYW01经测序鉴定，序列全部正确。

Taq Master Mix、细菌基因组提取试剂盒、胶回收试剂盒、DNA Marker(康为世纪公司)；T4 DNA ligase、末端快速补平试剂盒、SmaI内切酶、虾碱性磷酸化酶(NEB公司)；超声波细胞粉碎仪(新芝SCIENTZ-IID型)；电转仪(BIO RAD公司)。噬菌粒载体pYW01引物由长春库美生物科技有限公司合成，上游引物5′- AACATATGAAATACCTGCTGCCGAC-3′，下游引物5′- TCTTCCTCAGAGATCAGCTTCTGCT-3′。

1.2 噬菌体展示布鲁氏菌16M株基因组文库构建

1.2.1布鲁氏菌16M株基因组提取及基因组片段化 以布鲁氏菌16M株菌液(经热灭活)为模板，利用细菌基因组提取试剂盒提取16M株基因组，具体操作按试剂盒进行。

将超声条件设定为输出功率40%,每次超声3 s,间隔6 s,超声次数为10下，超声DNA总体积约500 μL，将基因组DNA随机打断。利用胶回收试剂盒对线性片段回收，以除去小于200 bp大于3 000 bp的片段。

1.2.2破碎基因组片段末端补平 将细菌基因组超声片段进行随机片段末端平齐化，体系如下：DNA随机片段38 μL、T4 DNA polymerase 1 μL、10×T4 DNA polymerase reaction buffer 5 μL、dNTP Mixture 2 μL、H2O 4 μL，11 ℃反应20 min,70 ℃灭活10 min。补平后利用胶回收试剂盒对其进行纯化，准备连接。

1.2.3酶切质粒pYW01及去磷酸化SmaⅠ单酶切噬菌粒载体pYW01，体系如下：10× buffer 5 μL、SmaI 1 μL、pYW01 30 μL，Water 14 μL。25 ℃，反应5 h。然后利用虾碱性磷酸酶(rSAP)直接进行去磷酸化，以防止载体自连，即直接在酶切反应结束后的体系中加入rSAP 1.5 μL，37 ℃温育60 min后65 ℃热灭活20 min。去磷酸化后胶回收试剂盒进行纯化，准备连接。

1.2.4感受态细胞制备 取1 mL TG1母液接种到200 mL新鲜的LB培养液中,37 ℃,170 r/min 振荡培养2.5 h，使OD450达到0.7左右。冰浴30 min，4 000 r/min，4 ℃离心20 min，弃上清收集菌体。用含有10%甘油的无菌水洗涤菌体2次。最后用400 μL 10%甘油无菌水重悬细胞沉淀,分装，每管100 μL，-80 ℃保存备用。

1.2.5连接 利用T4 DNA ligase将末端补平的布鲁氏菌16M株基因组超声片段和酶切质粒pYW01(去磷酸化)以4∶1比例(摩尔比)进行连接，体系如下：DNA随机片段12 μL、pYW01 1 μL、T4 DNA ligase 1 μL、10×ligation buffer 2 μL、H2O 4 μL。22 ℃连接1 h 后70 ℃热灭活5 min。

1.2.6电转化 将连接产物20 μL电转化至100 μL 感受态细胞中。(冰浴条件下，将连接产物和感受态细胞用枪头缓慢混合均匀)电转化条件为：1 mm电击槽、电压1 800 V、电阻200 Ω、电容25C，同时将2 μL 噬菌粒载体pYW01转入100 μL TG1中作为对照，以检测感受态转化效率。电转完成后立即加入900 μL LB液体培养基,震荡活化45 min(37 ℃，170 r/min)，此即为噬菌体展示布鲁氏菌16M株基因文库。

1.3基因文库容量计算及随机性检测 取上述10 μL连接菌液用LB液体培养基稀释至100 μL，均匀涂布于LB固体培养基(20 μg/mL氯霉素)37 ℃过夜培养。观察各平板菌落形成数量，以公式计算库容量(cfu/mL)=菌落数×稀释倍数×10。

随机挑取菌落，LB液体培养基(20 μg/mL氯霉素)摇动约6 h，取菌液行PCR，鉴定文库插入效率。 PCR体系如下：上、下游引物各0.5 μL，Taq Master Mix 5 μL，菌液1 μL，用水补足体积至10 μL。 Touch-down PCR运行程序：94 ℃ 1 min, 94 ℃ 30 s, 65 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s, 72 ℃ 10 min。 其中退火温度从65 ℃依次降落到50 ℃，温度每降落一度运行两个循环，最后50 ℃运行10个循环，共计40个循环,1%琼脂糖电泳检测结果。

1.4 噬菌体展示布鲁氏菌16M株蛋白文库构建

1.4.1辅助噬菌体滴度检测 10 μL辅助噬菌体VCSM13 用LB液体培养基10倍稀释，稀释成10-1～10-1010个稀释度。分别取100 μL(10-6、10-8、10-10)稀释辅助噬菌体和新鲜培养的宿主菌(TG1)100 μL混合均匀后，加入5 mL软琼脂混匀后快速倒入已预热的LB固体培养基中(20 μg/mL氯霉素)，37 ℃倒置培养12～16 h。具体操作按照文献进行[8]，噬菌体滴度(pfu/ mL)=斑数×稀释倍数×10。

1.4.3纯化噬菌体蛋白文库 上述培养物，室温4 000 r/min 离心10 min；弃上清，用100 mL LB培养基重悬沉淀，加入卡那霉素使其终浓度达到50 μg/mL，37 ℃培养过夜；次日将菌液 4 000 r/min 离心 20 min，将上清转移至无菌离心管内，分别加入1/4 体积的PEG8000- NaCl溶液，剧烈摇晃后，4 ℃过夜放置，沉淀噬菌体；4 ℃，10 000 r/min 离心 30 min；弃上清，用 3 mL PBS 重悬沉淀，即为辅助噬菌体包装后的展示蛋白文库，0.22 μm滤膜过滤除菌即得到纯净的噬菌体悬液。

1.4.4测序鉴定蛋白文库 利用质粒小提试剂盒提取此悬液质粒DNA，电转化至TG1感受态细胞，条件同1.6.2。将转化菌液涂布于含氯霉素的LB平板上，37 ℃过夜培养，随机挑取20个单克隆送公司测序。将测序序列与GenBank中16M株序列比对，鉴定蛋白文库。

1.5 差减淘选

1.5.1差减筛选 将噬菌体展示文库作为流动相,将M5免疫羊血清作为固定相。将免疫血清包被在孔内，加入噬菌体展示蛋白文库，二者进行吸附。以未被吸附的噬菌体展示文库作为流动相，阳性血清作为固定相。提前将阳性血清包被在孔内，加入免疫血清未吸附的噬菌体展示蛋白文库，进行淘选。对差减淘选的噬菌体文库进行2轮富集。

1.5.2扩增阳性克隆，测序 ① 对淘选到的阳性克隆进行扩增:挑取每个单克隆转接至新鲜2×YT液体培养基中，37 ℃振荡培养过夜。再转接TG1菌液中，培养至OD=0.4左右后，加入辅助噬菌体VCSM13d3(MOI=1∶100)超感染，以扩增单个阳性克隆噬菌体文库。② 用质粒小量抽提试剂盒提取重组质粒，操作方法按说明书进行。③ 对阳性重组质粒进行Touch-down PCR鉴定，分析插入片段大小；对鉴定阳性的质粒送公司测序。

1.6噬菌体阳性克隆筛选 竞争ELISA、Western-blot评价阳性克隆的亲和力、特异性及反应原性，筛选具有良好抗原性的噬菌体阳性克隆。① 提取LPS，按试剂盒操作进行；② 竞争ELISA评价阳性克隆的亲和力：以筛选到的噬菌体融合蛋白包被，以提取16M株LPS作为竞争相，检测阳性克隆的亲和力；并利用prism软件分析阳性克隆亲和力；③ Western-blot评价阳性克隆的特异性及反应原性，DS-PAGE检测：取纯化后的噬菌体融合蛋白进行SDS-PAGE电泳，同时以辅助噬菌体VCSM13作为阴性对照。转膜：剪下和凝胶大小吻合的6 张3M滤纸和1张PVDF膜(戴手套操作)，PVDF膜先在甲醇溶液中浸泡15 s，转入去离子水中漂洗后，连同3M滤纸转入半干转印缓冲液中，浸泡30 min。将胶用去离子水冲洗后，也放在半干缓冲液中平衡。然后将胶、膜、滤纸制成三明治，注意每一层都不能有气泡，否则影响转印效果。叠好后，根据膜的大小，来确定转印时电流的大小(具体条件的设定参考仪器说明书)。本试验采用200 mA电流下转印60 min。

免疫检测：转印完成后将膜用丽春红染色，看胶上的目的条带是否转到膜上；然后用蒸馏水漂洗膜，用10%马血清封闭1 h后，用PBS洗涤3次，每次5 min；然后用新鲜配置的一抗(阳性血清)室温封闭膜70 min，再用PBST漂洗3次，每次5 min；用新鲜配置的二抗(兔抗羊血清)封闭膜35 min，洗膜3次，操作同上，然后再用PBS洗涤1次，3 min；用DAB染色3～5 min至膜上的条带清晰后，用蒸馏水终止反应。

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2 结 果

2.1羊型布鲁氏菌16M株基因组提取及超声破碎结果 羊型布鲁氏菌16M株(标准热灭活)基因组提取结果见图1。从图中可见DNA提取浓度较高；经OD260/280分析，基因组纯度也达到要求。取DNA约500 μL进行超声裂解，结果见图1。琼脂糖凝胶电泳显示，基因组裂解后随机片段大小集中分布在0.3～2 kb之间。

1：Marker从上到下大小依次为100 bp，250 bp，500 bp，750 bp，1 000 bp，1 500 bp，2 000 bp，3 000 bp，5 000 bp，10 000 bp；2：马尔他布鲁氏菌16M株DNA提取结果；3： Marker；4：基因组DNA超声裂解结果图1 布鲁氏菌基因组及超声破碎电泳检测结果Fig.1 Result of DNA extraction and cleavage

2.2酶切噬菌粒载体pYW01结果 提取载体质粒pYW01，经1%琼脂糖凝胶电泳显示条带大小与预期质粒大小相符(图2)。质粒经测序(长春库美生物有限公司)表明，提取结果正确。经SmaI单酶切后，在目的位置发现单一条带(图2)。 对其进行去磷酸化后，准备连接。

2.3构建羊型布鲁氏菌16M株全基因组文库 取100 μL转化后菌液涂板，经37 ℃过夜培养后，有菌落在含氯霉素的LB平板上长出，证明重组噬菌粒载体pYW01成功电转至TG1感受态细胞。菌落大小、形态一致。经计算库容量约为108pfu/ mL，达到建库要求。

随机挑取17个单菌落，利用Touch-down RCR程序鉴定插入文库的片段，结果见图3。结果表明，插入片段具有较好随机性，且插入片段大小分布在0.2～3.0 kb间。

1：Marker从上到下大小依次为100 bp，250 bp，500 bp，750 bp，1 000 bp，1 500 bp，2 000 bp，3 000 bp，5 000 bp，10 000 bp；2：提取噬菌粒pYW01；3：SmaI单酶切噬菌粒pYW01图2 提取质粒pYW01及SmaI单酶切结果Fig.2 Result of plasmid extraction and SmaI enzyme digestion

1：Marker从上到下大小依次为100 bp，250 bp，500 bp，750 bp，1 000 bp，1 500 bp，2 000 bp，3 000 bp，5 000 bp，10 000 bp；2～18：PCR鉴定结果图3 1%琼脂糖电泳检测全基因文库中插入片段结果Fig.3 Insert fragments of the library

2.4构建羊型布鲁氏菌16M株蛋白文库 基因文库经辅助噬菌体VCSM13感染后，即可包装成蛋白文库。经PEG纯化后，对原始蛋白文库电转化增殖，37 ℃过夜培养，即为增殖的蛋白文库。随机挑取LB平板上20个单克隆送公司测序。将测序结果与16M株序列比对，基因同源性达到98%以上。结果表明，成功构建羊型布鲁氏菌16M株表面蛋白文库。

2.5差减淘选，扩增阳性克隆，测序 利用免疫血清及感染血清对噬菌体展示蛋白文库进行差减淘选、两轮富集后，得到37个阳性克隆。每轮富集结果见表1。

表1 每轮淘选后阳性克隆数Tab.1 Number of positive clones each round of panning

第一轮(pfu/mL)第二轮(pfu/mL)富集率噬菌体投入量2.0×1072.0×107-洗脱物滴度1.0×1043.0×105300×

对阳性克隆进行扩增，提取质粒进行Touch-down PCR鉴定，分析插入片段大小；对鉴定阳性的质粒送公司测序。经Blast，筛选出6个噬菌体融合蛋白，结果见表2。

表2 阳性噬菌体融合蛋白Tab.2 Positive phage fusion protein

ACCESSIONlocus_tagproductAE008917BMEI1242hypothetical membrane spanning proteinCP007763DK63_1291hypothetical proteinCP007763DK63_1023outer membrane autotransporter barrel domain proteinCP007763DK63_628glutamate racemaseCP007763DK63_1659outer membrane autotransporter barrel domain proteinAE008918BMEII0036outer membrane protein oprf(an outer membrane porin)

2.6竞争ELISA评价阳性克隆的亲和力 以筛选到的噬菌体融合蛋白包被，以提取16M株LPS作为竞争相，检测阳性克隆的亲和力，以辅助噬菌体VCSM13d3作为对照，结果表明，以融合蛋白BMEI1242、DK63-1291、BMEII0036亲和力最强见图4。且经统计学分析，3个融合蛋白之间差异没有统计学意义(F=0.038 22,P>0.05)。

2.7Western-blot评价阳性克隆的特异性及反应原性 以布鲁氏菌病阳性血清为一抗，进行Western-blot分析各个阳性克隆的特异性及反应原性，以VCSM13d3为阴性对照，结果见图5。结果表明，这6个噬菌体融合蛋白均具有较好的反应原性及特异性，而与辅助噬菌体不发生发应。

图4 噬菌体融合蛋白c-ELISA结果Fig.4 Result of c-ELISA of phage-fusion proteins

1：低分子量蛋白Marker; 2：BMEII0036; 3：DK63_1659; 4：DK63_628; 5：DK_631023; 6：DK63_129; 7：VCSM13d3; 8：BMEI124图5 感染/阳性血清的 Western-Blot 结果Fig.5 Result of Western-Blot

3 讨 论

布鲁氏菌病新型诊断抗原的研究主要集中在两个方面。LPS作为传统的诊断抗原，一直不断被试图改造[9-12]。LPS含有M和A两个表位，其中A表位是引起交叉反应的主要原因，而这两个表位还不能被分离[13]。因此新合成的LPS只含有M 表位或者含有被改造的A表位。但化学方法合成的LPS在生物学活性上，可能会大大降低。本研究通过利用噬菌粒载体pYW01及辅助噬菌体VCSM13构建了噬菌体展示布鲁氏菌表面蛋白文库，使目的蛋白能与噬菌体的pⅢ蛋白融合，共同展示在噬菌体表面。后续利用靶分子即可对文库进行高通量筛选，并且该技术还可以将基因型与表型联系起来。因此，噬菌体展示技术在肿瘤标记物的识别、新型抗毒血清治疗、疫苗候选株筛选、药物开发、蛋白质组学研究等方面得到广泛应用[14-17]。本研究所用噬菌体展示系统，是Jasna教授等人于2013年构建，该系统能降低外源蛋白对于宿主菌(大肠杆菌)的毒性，提高展示效率等特性[18]。此系统用于构建布鲁氏菌表面蛋白文库还是首次，为布鲁氏菌新型诊断抗原的筛选奠定基础。

致谢本研究得到梅西大学Jasna Rakonjac教授，海军总医院周丽君教授的无私帮助。

利益冲突：无

引用本文格式：王阔鹏，于凌娇，刘倩宏,等.噬菌体展示布鲁氏菌蛋白文库构建及差减筛选融合蛋白[J]. 中国人兽共患病学报,2019,35(5):376-381.DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2019.00.056