钱 钊,董增祥,郭美华,鲁 静,刘 亮,高春璐,茆俊东,海 鑫(哈尔滨医科大学附属第一医院药学部,黑龙江 哈尔滨 150001)
LC-20A高效液相色谱仪(日本岛津公司);5430R高速低温离心机(德国Eppendorf公司);MS3DS25涡旋混合器(德国IKA公司);KQ-600数控超声波清洗器(中国昆山市超声仪器有限公司)。
利奈唑胺对照品(上海麦克林生化科技有限公司,批号201424,纯度99%),奥卡西平对照品(中国食品药品检定研究院,批号201105,纯度99.7%),甲醇(Thermo Fisher Scientific公司,批号145176,色谱纯),水为超纯水(实验室自制),其他试剂均为分析纯。
收集2016年12月- 2017年4月在我院就诊并使用利奈唑胺抗感染治疗的门诊及住院部患者血样,共计7例。血液样本的采集时间是在患者连续用药5次,达稳态后给药前30 min内采集静脉血2 mL(EDTA抗凝),样品收集后,分离血浆且注明信息于- 20 ℃下保存。空白血浆由志愿者提供。所有血浆样品均经我院伦理委员会审定并批准使用。
2.1.1 色谱条件色谱柱:依利特Hypersil ODS C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流动相:甲醇-水(40∶60,v∶v);流速:1.0 mL·min-1;检测波长:254 nm;进样量:20 μL;柱温:35 ℃。
2.1.2 标准对照品溶液和内标溶液的制备精密称取利奈唑胺对照品49.93 mg,用适量甲醇配制成浓度为1980 mg·L-1的储备液;取适量储备液,用甲醇依次稀释配制成500、200、100、50、25、10、5 mg·L-1的7个浓度对照品溶液,同时配制高、中、低三个质控样品溶液(quality control,QC),浓度依次为400、200、20 mg·L-1,以上溶液均密封避光保存在4 ℃冰箱中。
精密称取7.42 mg的奥卡西平对照品(oxcarbazepine,OXD)作为内标(internal standard,IS),用适量甲醇配制成740 mg·L-1的储备液。取适量的奥卡西平标准溶液配制成200 mg·L-1的内标溶液,密封避光保存在4 ℃冰箱中。
2.1.3 血浆样品预处理精密吸取180 μL空白血浆和20 μL利奈唑胺对照品溶液,置于1.5 mL离心管中,加入20 μL内标溶液,涡旋30 s,加入600 μL甲醇沉淀蛋白,涡旋1 min,离心5 min,取上层清液,过0.22 μm滤膜后,待分析。
2.2.1 专属性配制五组血浆样品,分别为空白血浆200 μL + 甲醇20 μL、空白血浆180 μL +LZD 20 μL + 甲醇20 μL、空白血浆200 μL + IS 20 μL、空白血浆180 μL +LZD 20 μL + IS 20 μL、患者血浆200 μL + IS 20 μL,按照“2.1.3”项下方法处理,进样分析,记录色谱图。从图1可以看出,LZD的保留时间为7.83 min,IS的保留时间为15.66 min,二者的峰形、分离度均良好,无干扰峰。
2.2.2 标准曲线取5、10、25、50、100、200、500 mg·L-1的利奈唑胺对照品溶液,按“2.1.3”项下方法进行处理,进样分析,记录LZD和IS色谱峰面积。以LZD浓度值为横坐标X,以LZD与IS峰面积比值为纵坐标Y,绘制标准曲线,得线性回归方程为:Y =9.97×10-2X + 2.24×10-2(r2= 0.999,n = 7),线性范围是0.5 ~ 50.0 mg·L-1。
2.2.3 回收率1)方法回收率:取高、中、低三个浓度的QC(n = 5),按照“2.1.3”项下方法处理,进样分析,记录LZD和IS色谱峰面积,根据线性回归方程得出实际值;方法回收率为:实际值/理论值×100%。2)提取回收率:取高、中、低三个浓度的QC(n = 5),按照“2.1.3”项下方法处理,取上清液500 μL,加入40 μL甲醇,混合后进样分析,得到LZD与IS的峰面积比值,记为S1;取180 μL空白血浆,加入640 μL甲醇,混匀离心后取上清液500 μL,再加入20 μL QC和20 μL IS(n = 5),混匀后进样分析,得到LZD与IS的峰面积比值,记为S2;提取回收率为:S1/S2×100%。
在高、中、低三个浓度中,LZD的方法回收率在91.69% ~ 115.39%之间,提取回收率在81.50% ~117.31%之间。
图1 高效液相色谱图A - 空白血浆,B - 空白血浆 + LZD,C - 空白血浆 + 内标,D - 空白血浆 + LZD +内标,E - 患者血浆 + 内标;1 - LZD,2 - 内标(OXD)Fig 1 HPLC chromatogramsA - blank plasma, B - blank plasma + LZD, C - blank plasma + IS, D -blank plasma + LZD + IS, E - patient's plasma + IS; 1 - LZD, 2 - IS(OXD)
2.2.4 精密度1)日内精密度:在一天内,取高、中、低三个浓度的QC(n = 5),按照“2.1.3”项下方法处理,进样分析,记录LZD和IS色谱峰和峰面积,计算日内RSD。2)日间精密度:连续5 d,取高、中、低三个浓度的QC(n = 5),按照“2.1.3”项下方法处理,进样分析,记录LZD和IS色谱峰和峰面积,计算日间RSD。结果见表1。
2.2.5 稳定性实验取高、中、低三个浓度的QC(n= 10)20 μL,每份均加入180 μL空白血浆,涡旋混匀后密封保存在 - 20 ℃冰箱中。长期稳定性:60 d后取出5份,按照“2.1.3”项下方法处理,进样分析,记录LZD和IS色谱峰和峰面积,计算长期稳定性的RSD。冻融稳定性:一周后取出5份,室温融化,反复冻融3次,按照“2.1.3”项下方法处理,进样分析,记录LZD和IS色谱峰和峰面积,计算冻融稳定性RSD。室温稳定性:取高、中、低三个浓度的QC(n = 5),按照“2.1.3”项下方法处理,在室温下放置12 h后进样分析,记录LZD和IS色谱峰和峰面积,计算室温稳定性RSD。
表1 利奈唑胺在患者血浆中的日内、日间精密度. n = 5Tab 1 Intraday, interday precision of LZD in human plasma. n = 5
在 - 20℃条件下保存60 d,反复冻融3次后,其稳定性良好,均符合稳定性要求;具体结果如表2所示。
表2 利奈唑胺在患者血浆中的稳定性. n = 5Tab 2 The stability of LZD in human plasma. n = 5
2.2.6 患者利奈唑胺血药浓度的测定取临床患者血浆样本,按照“2.1.3”项下方法处理,进样分析,记录LZD和IS色谱峰和峰面积,根据线性回归方程得出患者血浆中的利奈唑胺浓度。检测收集的7例患者的血浆样本,其中有5例患者的血浆药物浓度在2 ~ 7 mg·L-1范围内,有2例小于2 mg·L-1,可结合临床症状评价治疗效果,个体化调整药物剂量。
目前,临床用于治疗药物监测的检测方法[5]主要有免疫法[6]、HPLC法[7-8]、HPLC-MS/MS[9]等。免疫法需要使用昂贵的试剂盒,且国内尚无用于LZD检测的试剂盒;HPLC-MS/MS因其设备昂贵,并非广泛普及的仪器;而HPLC作为一个常规的药物分析仪器,价格低廉,且易于操作,普及性较广;故本研究建立了LZD的HPLC检测方法。有研究表明利奈唑胺的有效浓度为2 ~ 7 mg·L-1[10-11],本方法建立的线性范围为0.5 ~ 50.0 mg·L-1,可以满足日常LZD药物浓度检测。
本研究选择的流动相为最常见、最简单的甲醇-水,成本低廉,且不需要繁琐的操作过程(如各种缓冲盐)[7,12];实验过程中考察了流动相比例对LZD和内标保留时间和分离的影响,最终确定甲醇与水的比例为40∶60,在此条件下分离较好且没有内源性物质的干扰,二者在20 min内完成出峰。本研究前处理方法采用常规蛋白沉淀法,沉淀剂为流动相中的有机相,较张伦等[13]的前处理方法操作更简单、易于记忆,且提取回收率、峰形均满足要求。
本研究采用的HPLC法为内标法,较外标法的定量更为准确;内标物质选择奥卡西平,是新型的抗癫痫药,同为本实验室治疗药物监测的项目,标准品易于获得,且奥卡西平在254 nm处有最大吸收。
自利奈唑胺在我国上市以来,临床应用中多为经验给药,均按说明书推荐的600 mg,bid的给药方案,从疗效评价的角度,多数患者并未达到最佳的治疗效果[14];因此,需要对利奈唑胺进行治疗药物监测。本方法的临床应用中共检测了7例患者的血样,其中有5例患者的血药浓度在有效范围内,5例中有2例低于3.5 mg·L-1,另外2例低于LZD有效范围,提示药物浓度偏低,可结合临床症状进行药物剂量的调整。
综上所述,本研究建立的HPLC法简单、快速、准确、易操作,便于临床检验;为临床对利奈唑胺的TDM提供了方法学基础,为剂量调整提供参考,为最终实现个体化治疗方案及合理用药提供强有力的依据。