高 昆,崔妮妮
(1.山西大同大学生命科学学院,山西大同037009;2.山西大同大学设施农业技术研发中心,山西大同037009;3.山西大同大学生命科学学院2018届学生,山西大同037009)
土壤盐渍化是世界性生态环境问题之一,是影响农、林业生产的主要因素。盐胁迫影响植物的发芽、生长,最终导致农作物减产[1]。我国的盐渍化土地面积占国土面积的1/4,是我国重要的土地资源[2]。选择适宜的粮食作物在盐碱地上种植,既可以有效提高盐碱地土壤质量,又可以充分利用土地资源,提高粮食产量。
谷子因其粮饲兼用、抗旱耐瘠薄、营养丰富均衡等特点,在农业供给侧结构性改革、节水、生态农业发展的背景下,将发挥重要作用[3]。豫谷18是国家谷子糜子产业技术体系“十二五”规划重大研发成果,具有优质、高产特点,是第一个同时适应华北、西北、东北三大主产区的谷子品种[4],本试验选用豫谷18为试验材料,研究复合盐胁迫对其生理指标和光合指标的影响,进一步分析谷子的抗盐机理和适应机制,为在盐碱地种植谷子和提高产量提供依据。
试验选用豫谷18幼苗为材料。
本试验在2017年6月到9月在山西大同大学生命科学学院植物生理实验室中完成。用12个花盆播种谷子,每盆装入蛭石1 kg,挑选籽粒成熟且饱满的种子,播种在花盆中,浇水使其发芽生长,待其长至7~8片叶片时,挑除长势不良的幼苗。用浓度为0%、0.3%、0.6%、0.9%的复合盐(复合盐质量配比为MgCl2∶MgSO4=2∶1)溶液进行胁迫处理,胁迫期间适当浇水,以补充水分。以0.0%(即用蒸馏水浇灌)盐浓度下生长的豫谷18幼苗为对照,胁迫2周后取样测定并记录生理指标和光合指标[5]。每个浓度的复合盐胁迫处理设3次重复。
电导率:用电导率仪测定。
光合指标:用便携式光合蒸腾仪Yaxin-1102测定。
POD:用愈创木酚法进行测定。
SOD:用氮蓝四唑比色法进行测定。
试验数据用Excel2010和SPSS24.0统计软件统计分析。
盐胁迫后植物细胞膜会发生许多变化,进而影响植物体内的各种代谢过程,从而影响植物的生长发育[6]。相对电导率代表了植株的伤害率,而伤害率代表其细胞膜透性。由图1可知,豫谷18谷子幼苗的电导率随复合盐浓度的增加呈上升趋势,用蒸馏水处理的幼苗的相对电导率最小,为23.18%,用0.9%浓度的复合盐处理的相对电导率最大,为54.83%。在0%~0.3%,0.6%~0.9%的上升趋势较快,在0.3%~0.6%时上升速度较慢。不同浓度复合盐胁迫下的相对电导率进行方差分析,如表1所示,不同复合盐浓度胁迫下植物的相对电导率呈现显著差异,说明随复合盐浓度的升高,对幼苗的伤害率提高。
图1 复合盐胁迫下植株的相对电导率
表1 不同浓度复合盐胁迫对相对电导率影响的差异性分析结果
光合作用是绿色植物在体内积累有机物的生化过程,其对环境因子变化的感受极其敏感[7]。因此,本试验测量了在不同复合盐胁迫下植株的几项光合指标,包括Pn、E、Gs、CO2int,并分析它们的变化规律。
2.2.1 复合盐胁迫对净光合速率(Pn)的作用
由图2可知,豫谷18幼苗的Pn值伴随着复合盐浓度的升高而下降,其中,在复合盐浓度0%~0.3%时下降较快,0.3%~0.6%,0.6%~0.9%时下降趋势减缓,且用蒸馏水处理的幼苗Pn值最大,为0.046 μmol/cm2·s,用0.9%浓度处理的幼苗Pn值最小,为 0.009 μmol/cm2·s。对不同浓度复合盐胁迫下的Pn进行方差分析,如表2所示,不同复合盐浓度胁迫下植物的Pn呈现显著差异。净光合速率代表植株有机物的积累,由图可见,植株通过对减少有机物的积累来实现对盐胁迫的适应。
图2 复合盐胁迫下豫谷18幼苗的Pn值
表2 不同浓度复合盐胁迫对豫谷18幼苗Pn值影响的差异性分析结果
2.2.2 复合盐胁迫对蒸腾速率(E)的影响
植物根系和体内水分和养分的转移主要通过蒸腾作用实现,蒸腾作用关系到土壤水分和养分的运输[8]。由图3可知,豫谷18谷子幼苗的E值随复合盐浓度的升高而降低,且复合盐浓度在0%~0.3%时下降幅度较大,0.6%~0.9%时下降幅度较小。在蒸馏水处理的水平取最大值0.045 mmol/cm2·s,在0.9%复合盐浓度时取最小值0.010 mmol/cm2·s。对不同浓度复合盐胁迫下的E进行方差分析,如表3所示,不同复合盐浓度胁迫下植物的E呈现显著差异。蒸腾速率随胁迫浓度的升高而降低,说明植株通过降低蒸腾速率来对盐胁迫做出反应。
图3 不同浓度复合盐胁迫下豫谷18幼苗的E值
表3 不同浓度复合盐胁迫对豫谷18幼苗E值影响的差异性分析结果
2.2.3 复合盐胁迫对气孔导度(Gs)的影响
气孔导度指的是气孔传输CO2和水的快慢,气孔导度关系着植物的蒸腾作用和光合作用。由图4可知,用蒸馏水处理的幼苗气孔导度最大,为0.442 mmol/cm2·s,用0.9%的复合盐胁迫处理的幼苗气孔导度最小,为0.077 mmol/cm2·s。幼苗的Gs值随复合盐浓度的升高而降低,且在0%~0.3%时下降较快,在0.3%~0.6%,0.6%~0.9%时下降速度缓慢。对不同浓度复合盐胁迫下的Gs进行方差分析,如表4所示,不同复合盐浓度胁迫下植物的Gs呈现显著差异,即盐胁迫下的气孔开度降低,幼苗通过降低蒸腾作用和呼吸作用来适应盐胁迫条件。
图4 不同浓度复合盐胁迫下豫谷18幼苗的Gs值
表4 不同浓度复合盐胁迫对豫谷18幼苗Gs影响的差异性分析结果
2.2.4 复合盐胁迫对细胞间隙CO2浓度(CO2int)的影响
细胞间隙CO2会直接影响碳的固定,从而影响其光合作用的速率和有机物的积累,进而影响植物的生长发育[9]。由图5可知,幼苗的CO2int值随复合盐浓度的升高而下降,且在用蒸馏水处理的达到最大值23.62 mg/L,而在0.9%处理组为最小值2.84 mg/L。在0%~0.3%时下降幅度快,在0.3%~0.6%,0.6%~0.9%时下降幅度减缓。对不同浓度复合盐胁迫下的CO2int进行方差分析,如表5所示,不同复合盐浓度胁迫下植物的CO2int呈现显著差异,即随复合盐浓度的升高,光合作用减慢,有机物的积累减少。
图5 不同浓度复合盐胁迫下豫谷18幼苗的CO2int值
表5 不同浓度复合盐胁迫对豫谷18幼苗CO2int影响的差异性分析结果
植物的保护酶在抵抗盐胁迫方面有着突出的作用,它们通过减少活性氧来减少不利环境对植物的伤害。SOD和POD是植物体内重要的保护酶,其活性大小代表了植物对不利条件的抵抗能力[9]。
2.3.1 复合盐胁迫对幼苗POD的影响
由图6可见,伴随复合盐浓度的升高,谷子幼苗的POD活性显著增加,复合盐浓度从0%~0.6%,从0.6%~0.9%时,POD活性的增加幅度小,从0.3%~0.6%时,上升幅度大。在0%浓度时的POD活性最低,是4 874.67 μ/g·min;在0.9%浓度时取最大值12 562.66 μ/g·min。对不同浓度复合盐胁迫下的POD进行方差分析,如表6所示,不同复合盐浓度胁迫下植物的POD呈现显著差异。随着复合盐浓度的升高,植株体内产生较多危害有机体的自由基,所以POD的活性显著增强。
图6 不同浓度复合盐胁迫下豫谷18幼苗的POD值
表6 不同浓度复合盐胁迫对豫谷18幼苗POD影响的差异性分析结果
2.3.2 复合盐胁迫对幼苗SOD活性的影响
由图7可知,伴随着复合盐浓度的升高,幼苗的SOD活性显著增加,复合盐浓度从0%~0.3%,从0.6%~0.9%时,POD活性增加速度快,从0.3%~0.6%时,增大速度减缓。在0%处取最小值136.76μ/g,在0.9%浓度处理下取最大值251.27μ/g。对不同浓度复合盐胁迫下的SOD进行方差分析,如表7所示,不同复合盐浓度胁迫下植物的SOD呈现显著差异。说明盐胁迫使植物体内产生大量自由基,幼苗通过增加SOD的活性进行清除自由基,保护幼苗。
图7 不同浓度复合盐胁迫下豫谷18幼苗的SOD值
表7 不同浓度复合盐胁迫对豫谷18幼苗SOD影响的差异性分析结果
1)随着复合盐浓度的升高,相对电导率增加,即对谷子的膜结构的伤害率呈增大趋势,说明在盐碱地会破坏谷子细胞膜结构,从而影响膜对物质和能量的吸收和转运,进而影响幼苗的生长。
2)不同浓度的复合盐对豫谷18幼苗的光合指标有着重要影响。随着复合盐浓度的上升,幼苗的Pn、E、Gs、CO2int都下降。本试验中,幼苗的CO2int下降,Gs的下降,说明了Pn的下降主要是由气孔因素引起的。
3)谷子幼苗的POD、SOD的活性随着复合盐胁迫的升高呈上升趋势。随着酶活性显著升高,植物体内抗氧化保护酶系统随被激活,从而使其对盐胁迫有一定的耐受能力。
植株在不同浓度盐胁迫下会产生响应,其反应涉及细胞膜的破环,光合作用的下降,渗透胁迫、抗氧化酶活性升高等。由本试验可知,盐胁迫会使植物细胞膜结构改变,蒸腾速率下降,导致物质运输速率减缓;由于气孔因素使得Pn下降,有机物积累减少;POD,SOD活性升高,清除代谢产生的自由基速率增快,使细胞免受损伤。因此,可以从保护膜的结构方面增加植物的抗性,培育和改良新品种。