王芳芳 白宝宝 曾 迪 楚 轶 李 雪
中国人民解放军空军军医大学第二附属医院心内科,陕西西安 710038
目前,心血管疾病,尤其是心肌缺血所导致的大量功能性心肌细胞死亡、损伤等,已成为威胁人类健康的首要杀手[1-3]。研究显示,自我更新和多向分化的干细胞能够分化再生成心肌细胞,这为心血管疾病的治疗带来了新的希望[4-7]。诱导性多能干细胞(induced pluripotent stem cell,iPSC),可从自体细胞逆分化获得,在避免伦理学争议的同时也解决了免疫排斥反应等难题[8-10]。然而,iPSC定向诱导分化目前还存在着靶细胞定向分化效率不高、分化机制尚未明确、靶细胞功能未趋向成熟等问题,阻碍了其在心肌组织工程再生中的应用。
microRNA(miRNA)是广泛存在于真核细胞内的一类内源性非编码小RNA,可调节mRNA的翻译,但不负责编码蛋白质,其序列高度保守,生物功能较广。其通过降解mRNA抑制蛋白质翻译表达,进而调控细胞的生长、分化、迁移、凋亡及组织发育。大量实验表明,已有40余种miRNA参与调控心肌生理和病理活动,其中miRNA-1和miRNA-133已被证实参与了胚胎期心肌生成及发育过程,且在肌组织中表达丰富。本研究旨在为进一步研究miRNA-1和miRNA-133在调控iPSC定向分化为心肌细胞过程中的作用,为促使iPSC更有效地向心肌细胞定向分化提供更为可靠的参考资料。
美国国家癌症研究所(ICR)孕鼠来源自解放军空军军医大学第二附属医院动物中心,2周龄,10只,体重 9~12 g,合格证号 SCXK(陕)2017-0002,使用许可证号20170611。适应性饲养条件:配置好饲料、饮水、垫料,做好通风,12 h/12 h明暗交替,温度26℃,湿度50%~70%。iPSC购自中科院实验中心;miRNA-mimic、miRNA-1mimic、miRNA-133amimic购自德国 miScript;所有细胞培养基及血清均购自Invitrogen公司。OpenArray®实时荧光定量PCR、Invitrogen E-Gel Imager凝胶成像系统购自法国Vilber Lourmat;CKX41倒置相差显微镜及显微照相系统均购自奥林巴斯公司。本研究已得到医院医学伦理委员会同意及动物伦理批准。
1.2.1 小鼠胚胎成纤维细胞的前期培养 取2周龄ICR孕鼠胚胎,加入含乙二胺四乙酸(EDTA)的胰酶(0.5 g/L)进行消化接种,传代3代后利用丝裂霉素处理,冻存备用。
1.2.2 小鼠诱导性多能干细胞(miPSC)的培养 复苏冻存的miPSC,并接种于丝裂霉素处理后的胚胎成纤维细胞上,接种密度为0.5×106个/皿,37℃孵育。观察细胞的生长情况,定期更换培养液。将来源于胚胎成纤维细胞上的miPSC进行消化传代,种于8.7 μg/cm2Matrigel覆盖的培养皿内,培养2 d,除去饲养层细胞;再次消化,以2×106个/mL的密度重悬于iPSC培养基,种于1 g/L明胶覆盖的培养皿内,37℃孵育至细胞铺满培养皿80%的范围;更换培养基为miPSC分化培养基。
1.2.3 miPSC的miRNA转染及分化效率的检测 利用LipofectamineTM2000方法,在利用分化培养基培养的miPSC细胞中分别加入对照miRNA(U6)(记为对照组)、miRNA-1(10 nmol/L,记为 miRNA-1 组)、miRNA-133(10 nmol/L,记为 miRNA-133组)及 miRNA-1和miRNA-133(分别为 10 nmol/L,记为 miRNA-1+133 组),转染24 h后PBS洗涤,观察每日miPSC的分化情况,采用CKX41倒置相差显微镜10倍观察miPSC形态学特征,捕获出现跳动的心肌合胞体的数量,计算细胞博动率并以细胞搏动率评判分化效率,两者趋势一致。细胞搏动率(%)=搏动群落数/细胞群落总数×100%,重复3次,取平均值
1.2.4 RT-PCR检测miPSC的miRNA-1、miRNA-133及心肌肌钙蛋白(cTnT)表达 收集miPSC细胞,提取总 RNA,以总体积 20 μL、RNA 样品 1 μg的体系,反转录合成cDNA(参照试剂盒进行),利用RT-PCR测定 miRNA-1、miRNA-133和 cTnT的表达。RTPCR 反应体系:SYBR® Premix Ex TaqTMⅡ 10 μL,PCR上下游引物各 1.0 μL,cDNA 模板 2.0 μL,ddH2O 6.2 μL。引物序列:cTnT的正向引物序列为5′-CAGAGGAGGC CAACGTAGAAG-3′,反向引物序列为 5′-TCGATCAGAGTCTGTAGCTCATT-3′;GADPH的正向引物序列为 5′-TGTGTCCGTCGTGGATCT-3′,反向引物序列为5′-TTGCTGTTGAAGTCGCAG-3′;miRNA-1 的正向引物序列为 5′-TACACCATGGCAACGTAGAAT-3′,反向引物序列为 5′-ATGTGGTACCGTCGCATCTTA-3′;miRNA-133的正向引物序列为5′-CACCAGACCAGAGGCAGATG-3′,反向引物序列为5′-GTGGTCTGGTCTCCGTCTAC-3′;miRNA(U6)的正向引物序列为 5′-CACAGGATTCCGGCGTGGAG-3′,反向引物序列为 5′-GTGTCCTAAGGCCGCACCTC-3′。显示的结果为与miRNA(U6)相比的相对值(以 2-ΔΔCt法进行计算分析)。PCR引物序列由赫澎(上海)生物科技有限公司提供。实验重复3次。
采用SPSS 18.0软件进行数据处理,正态分布的计量资料以均数±标准差(±s)表示,多组间比较采用方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验。以P<0.05为差异有统计学意义。
miPSC细胞形态为呈集落突起状的卵/椭圆形,集落边缘光滑,细胞排列紧密,增殖较快,倍增时间较短。随着细胞的不断分化及陆续平铺,聚集成团,团块边缘衍生出梭形或多边形细胞,并交织成网,形成细胞团/细胞簇。见图1。
图1 光学显微镜下miPSC形态学特征(10×)
与对照组比较,miRNA-1组及miRNA-1+133组的 miRNA-1相对表达量升高,miRNA-133组及miRNA-1+133组的miRNA-133相对表达量升高,差异有高度统计学意义(P<0.01)。见图2。
图2 各组miRNA-1、miRNA-133转染效率比较(n=3)
未分化的miPSC中较少表达cTnT,与分化0 d时比较,分化5 d后miRNA-1组及miRNA-133组内cTnT的表达明显升高(P<0.05),而在分化10 d时升高更明显(P < 0.01)。分化 10 d时,miRNA-1+133组 cTnT表达水平较miRNA-1组及miRNA-133组更高(P<0.01)。 见图 3。
图3 不同分化时间下cTnT在miPSC中的相对表达量变化(n=3)
与对照组比较,miRNA-1组及miRNA-133组细胞搏动率无变化(P>0.05),miRNA-1+133组搏动率显著提高(P<0.01)。见图4。
miRNA作为一类非编码的短链RNA,长度为18~22 nt,能够结合基因的3′UTR来进行靶基因mRNA的翻译调控[11-13]。资料显示,许多miRNA在心肌细胞分化、心脏发育等过程中发挥重要的调节功能,miRNA-1、miRNA-133尤甚,其在肌肉组织中的表达具有高丰度特点,在心脏发育、心律失常、心肌肥厚等心脏生理病理过程中发挥作用,且miRNA-1和miRNA-133作为关键调节因子参与干细胞分化形成心肌的过程[14-17]。miRNA-1和miRNA-133隶属同一基因簇,在受血清应答因子、成肌分化因子等调控特异miRNAs的过程中均有表达且可以同时被转录,但miRNA-1和miRNA-133功能截然不同,前者是加速成肌细胞分化,抑制其增殖;后者相反,两者平衡存在。
图4 过表达miRNA-1和miRNA-133对miPSC分化效率的影响(n=3)
iPSC具有强大的增殖能力及分化能力,利用iPSC技术可获得患者或者疾病所需的特异多能干细胞,减少免疫排斥反应[18]。但目前iPSC在心肌定向分化、心肌再生领域中的研究尚不成熟[19-21]。本研究结果显示,未分化的miPSC较少表达cTnT,分化5 d后miRNA-1组及miRNA-133组内cTnT的表达明显升高,而在分化10 d时升高更明显,且miRNA-1+133组中cTnT表达水平较miRNA-1组及miRNA-133组更高;另外,单独过表达miRNA-1和miRNA-133,细胞分化效率及细胞搏动率未见增长;但过表达miRNA-1+133后,搏动率显著提高,提示二者可能在促进miPSC向心肌分化的过程中存在协同作用,可能与二者同时过表达后诱导分化形成的心肌细胞骨架更明显、形态更伸展、细胞结构更成熟、分化效率更高等有关。Takaya 等[22]提出,miRNA-1、miRNA-133 参 与 胚 胎细胞二维分化,与本研究观点有所不同,原因可能是本研究采用的是成纤维细胞,具体机制还需进一步探讨。
综上所述,miRNA-1与miRNA-133单独作用对心肌分化无促进作用,但共表达miRNA-1和miRNA-133后,可显著提高miPSCs向心肌细胞定向分化的效率,这一过程可能是通过协同作用来完成的。本研究为揭示miPSCs分化过程中miRNA-1和miRNA-133的协同分子机制研究提供了实验基础。